SIGLEC6 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Identificadores | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Alias | SIGLEC6 , CD327, CD33L, CD33L1, CD33L2, CDW327, OBBP1, lectina 6 similar a Ig que se une al ácido siálico | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Identificaciones externas | OMIM : 604405; HomoloGene : 130495; Tarjetas genéticas : SIGLEC6; OMA :SIGLEC6 - ortólogos | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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Wikidatos | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
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La lectina 6 similar a Ig que se une al ácido siálico es una proteína que en los humanos está codificada por el gen SIGLEC6 . [3] El gen se denominó originalmente CD33L ( similar a CD33 ) debido a las similitudes entre estos genes, pero más tarde se conoció como OB-BP1 ( proteína 1 de unión a OB [leptina] ) debido a su capacidad para unirse a este factor y, finalmente, SIGLEC6 como el sexto miembro de la familia de receptores SIGLEC en ser identificado. [4] A la proteína también se le ha dado la designación CD CD327. [5]
Se descubrió por primera vez que Siglec-6 se expresaba en el tejido placentario, [3] lo que se confirmó cuando esta proteína se identificó de forma independiente en una prueba de detección de proteínas que se unen a la leptina . [4] Utilizando un anticuerpo monoclonal recién generado contra Siglec-6 para detectar la expresión de la proteína, este último estudio descubrió que Siglec-6 se expresaba en los citotrofoblastos y sinciciotrofoblastos placentarios, así como en varias líneas celulares hematopoyéticas humanas, incluidas las células TF-1 , HEL , U937 y THP-1 . Este anticuerpo monoclonal también se unía a casi todas las células B de sangre periférica humanas , aunque informes más recientes no han replicado este hallazgo. [6] [7] También se ha descubierto que Siglec-6 se expresa en gran medida en los mastocitos humanos , incluidos los mastocitos derivados de células progenitoras CD34 + primarias y la línea celular LAD2. [8] Al examinar el proteoma de los mastocitos de varios tejidos, se determinó que Siglec-6 se expresa de manera consistente en los mastocitos de una variedad de tejidos humanos , incluidos el tejido adiposo , la piel , los pulmones y el colon , en niveles relativamente altos. [7] No se detectó Siglec-6 en ningún leucocitos de sangre periférica . La expresión de Siglec-6 en mastocitos humanos se ha extendido desde entonces a los aislados y cultivados de la piel y las líneas de mastocitos HMC-1.2, LUVA, ROSA KIT WT y ROSA KIT D816V , independientemente del estado de mutación de KIT , incluso cuando se pierde la expresión de la superficie celular del receptor relacionado Siglec-8 . [9] Además, la ARNasa de una sola célula de biopsias esofágicas de pacientes con esofagitis eosinofílica o sujetos de control sanos revela que la transcripción de SIGLEC6 solo se detecta en mastocitos y no en ningún otro tipo de células en este tejido. [9] Además de los mastocitos , se ha detectado la expresión de Siglec-6 en células B similares a tejidos agotadas [6] y en una población menor de células dendríticas (CD) conocidas como CD AXL + SIGLEC6+ (AS). [10]También se ha encontrado Siglec-6 en células de leucemia linfocítica crónica y leucemia mieloide aguda y se está explorando como un objetivo de la terapia con células CAR T. [11] [12] [13]
Siglec-6 se identificó en una prueba de detección de proteínas que se unen a la leptina , aunque interactuó con la leptina con una afinidad reducida en relación con el receptor de leptina . [4] Como miembro de la familia de receptores Siglec con un residuo de arginina conservado necesario para la unión del ácido siálico , se esperaba que Siglec-6 interactuara con sus ligandos de una manera dependiente del ácido siálico . Sin embargo, la leptina no está sialilada, [14] [15] y, por lo tanto, la unión a Siglec-6 debe ser independiente del ácido siálico . No se ha determinado la relevancia fisiológica de esta interacción. Se descubrió que la unión de la glicodelina A a las líneas celulares del trofoblasto dependía del ácido siálico y competía con la unión de la leptina . [16] La glicodelina A co-inmunoprecipitó con la proteína quimérica Siglec-6-Fc en este estudio, lo que indica una interacción directa entre las proteínas, que también se redujo tras la eliminación enzimática del ácido siálico de la glicodelina A. No se conocen ni el enlace de ácido siálico relevante ni el resto de la estructura de glicano en la glicodelina A necesaria para la unión de Siglec-6. No se han identificado ligandos fisiológicos de Siglec-6 con conexiones aparentes con la biología de los mastocitos . Los estudios iniciales encontraron que Siglec-6 se une al antígeno sialil-Tn (Neu5Acα2–6GalNAcα) pero no al antígeno Tn (GalNAcα), 6′-sialil-lactosa (Neu5Acα2–6Galβ1–4Glc), o 3′-sialil-lactosa (Neu5Acα2–3Galβ1–4Glc). [4] Una caracterización más detallada de la especificidad de unión de glicano de Siglec-6 reveló que Siglec-6, al igual que otros miembros de la familia Siglec , requiere el grupo carboxilo del ácido siálico , pero es único porque no requiere el grupo glicolilo del ácido siálico para unirse. [17]
Siglec-6 contiene en su dominio citoplasmático dos motivos de señalización conocidos identificados como un motivo inhibidor basado en tirosina del inmunorreceptor (ITIM) y un motivo de cambio basado en tirosina del inmunorreceptor (ITSM). [4] Con base en la presencia de estos motivos, se presumió que Siglec-6 ejerce un efecto inhibidor sobre las cascadas de señalización iniciadas por un receptor portador de un motivo de activación basado en tirosina del inmunorreceptor (ITAM) a través del reclutamiento y activación de fosfatasas de proteína tirosina como SHP-1 / 2 .
Al introducir versiones mutadas de Siglec-6 que carecen de los residuos de tirosina clave en el ITIM , el ITSM o ambos en una línea celular del trofoblasto y tratar la célula con el inhibidor de la fosfatasa pervanadato, se determinó que ambos motivos son capaces de ser fosforilados y que Siglec-6 es capaz de reclutar SHP-2 tras la fosforilación de estos motivos. [18] Además, se encontró que la unión de la glicodelina A a las líneas celulares del trofoblasto reduce la fosforilación de ERK1 / 2 , los niveles de proteína c-Jun y ARNm, los niveles de ARNm de MMP2 y uPA y la invasividad de una manera dependiente del ácido siálico y de Siglec-6, lo que sugiere que Siglec-6 reduce la invasividad del trofoblasto en respuesta al encuentro con la expresión de glicodelina A en el endometrio decidualizado . [16]
La ligadura de anticuerpos de Siglec-6 en mastocitos humanos derivados de progenitores CD34 + inhibió la secreción de GM-CSF y redujo ligeramente la desgranulación en respuesta a la reticulación de IgE , aunque la secreción de IL-8 en respuesta a la estimulación no se vio afectada de manera similar. [19] Esta observación de la función inhibidora de Siglec-6 en mastocitos se expandió a mastocitos humanos derivados de piel y a los receptores acoplados a proteína G MRGPRX2 y C5aR , además del FcεRI portador de ITAM . [9] La ligadura de anticuerpos de Siglec-6 redujo la desgranulación de mastocitos en respuesta a niveles más bajos de los estímulos que actúan a través de estos receptores. Sin embargo, se observó una inhibición mucho más potente mediante la co-reticulación de Siglec-6 y FcεRI mediante el uso de un anticuerpo de reticulación secundario o el uso de tetrámeros basados en estreptavidina de anticuerpos dirigidos a Siglec-6 y FcεRI . [9] Además, el efecto inhibidor de la ligadura de Siglec-6 se mantuvo durante al menos 4,5 horas, quizás debido a la estabilidad observada del receptor en la superficie celular después de la ligadura del anticuerpo, lo que sugiere que el receptor puede seguir participando en la señalización inhibidora durante períodos prolongados de tiempo.
La eliminación de SIGLEC6 mediante ARNi en células B similares a tejidos agotadas de individuos infectados por VIH mejora la capacidad de estas células para proliferar o secretar CCL3 o IL-6 tras estimulación. [6] La falta de un ligando Siglec-6 conocido en este sistema sugiere que Siglec-6 puede estar reduciendo la capacidad de respuesta de estas células a través de la señalización tónica.
Este artículo incorpora texto de la Biblioteca Nacional de Medicina de los Estados Unidos , que se encuentra en el dominio público .