Polifenol oxidasa

Enzima implicada en el pardeamiento de la fruta
Catecol oxidasa
Identificadores
N.º CE1.10.3.2
Nombres alternativosPolifenol oxidasa
Bases de datos
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Instituto Nacional de BiologíaProteínas

La polifenol oxidasa ( PPO ; también polifenol oxidasa I, cloroplástica ), una enzima involucrada en el pardeamiento de la fruta , es un tetrámero que contiene cuatro átomos de cobre por molécula. [1]

La PPO puede aceptar monofenoles y/o o -difenoles como sustratos. [2] La enzima funciona catalizando la o - hidroxilación de moléculas de monofenol en las que el anillo de benceno contiene un único sustituyente hidroxilo en o -difenoles ( moléculas de fenol que contienen dos sustituyentes hidroxilo en las posiciones 1, 2, sin carbono entre ellas). [3] También puede catalizar aún más la oxidación de o -difenoles para producir o -quinonas . [4] La PPO cataliza la polimerización rápida de o -quinonas para producir pigmentos negros, marrones o rojos ( polifenoles ) que causan el pardeamiento de la fruta .

El aminoácido tirosina contiene un solo anillo fenólico que puede oxidarse por la acción de las PPO para formar o -quinona. Por lo tanto, las PPO también pueden denominarse tirosinasas . [5]

Los alimentos comunes que producen la enzima incluyen hongos ( Agaricus bisporus ), [6] [7] manzanas ( Malus domestica ), [8] [9] aguacates ( Persea americana ) y lechuga ( Lactuca sativa ). [10]

Estructura y función

La PPO se clasifica como una morfeína , una proteína que puede formar dos o más homooligómeros diferentes (formas de morfeína), pero debe separarse y cambiar de forma para convertirse en una forma diferente. Existe como monómero , trímero, tetrámero , octámero o dodecámero , [11] [12] creando múltiples funciones . [13]

En las plantas, la PPO es una enzima plastídica cuya síntesis y función no están claras. En los cloroplastos funcionales, puede estar involucrada en la química del oxígeno, como la mediación de la fotofosforilación pseudocíclica . [14]

La nomenclatura enzimática diferencia entre las enzimas monofenol oxidasas ( tirosinasas ) y las enzimas o -difenol:oxigeno oxidorreductasas ( catecol oxidasas ). La preferencia de sustrato de las tirosinasas y las catecol oxidasas está controlada por los aminoácidos que rodean a los dos iones de cobre en el sitio activo . [15]

Distribución y aplicaciones

Una mezcla de enzimas monofenol oxidasas y catecol oxidasas está presente en casi todos los tejidos vegetales, y también se puede encontrar en bacterias, animales y hongos. En los insectos, están presentes polifenol oxidasas cuticulares [16] y sus productos son responsables de la tolerancia a la desecación .

El producto de reacción de la uva (ácido 2-S glutatiónil caftárico) es un compuesto de oxidación producido por la acción de la PPO sobre el ácido caftárico y que se encuentra en el vino. Esta producción de compuestos es responsable del menor nivel de pardeamiento en ciertos vinos blancos. [ cita requerida ]

Las plantas utilizan la polifenol oxidasa como parte de un conjunto de defensas químicas contra los parásitos . [17]

Inhibidores

Existen dos tipos de inhibidores de la PPO: los que compiten con el oxígeno en el sitio de cobre de la enzima y los que compiten con los fenólicos. La tentoxina también se ha utilizado en investigaciones recientes para eliminar la actividad de la PPO de las plántulas de plantas superiores. [18] La tropolona es un inhibidor de la polifenol oxidasa de la uva . [19] Otro inhibidor de esta enzima es el metabisulfito de potasio . [20] La actividad de la PPO de la raíz del plátano está fuertemente inhibida por el ditiotreitol y el metabisulfito de sodio , [21] al igual que la PPO del fruto del plátano por compuestos similares que contienen azufre , como el ditionito de sodio y la cisteína , además del ácido ascórbico (vitamina C). [22]

Ensayos

Se desarrollaron varios ensayos para monitorear la actividad de las polifenol oxidasas y evaluar la potencia de inhibición de los inhibidores de la polifenol oxidasa. En particular, los ensayos basados ​​en espectrofotometría ultravioleta/visible (UV/Vis) se aplican ampliamente. [23] El ensayo de espectrofotometría UV/Vis más común implica el monitoreo de la formación de o -quinonas , que son los productos de las reacciones catalizadas por la polifenol oxidasa, o el consumo del sustrato. [24] También se utilizó un método espectrofotométrico alternativo que implica el acoplamiento de o -quinonas con reactivos nucleofílicos como el clorhidrato de 3-metil-2-benzotiazolinonahidrazona (MBTH). [25] También se informaron y utilizaron otras técnicas, como los ensayos de tinción de actividad con el uso de electroforesis en gel de poliacrilamida , [26] ensayos radiactivos basados ​​en tritio , [27] ensayo de consumo de oxígeno, [28] y ensayo basado en resonancia magnética nuclear (RMN). [29]

Pardeamiento enzimático

La polifenol oxidasa es una enzima que se encuentra en todo el reino vegetal y animal, [30] incluyendo la mayoría de las frutas y verduras. [31] La PPO tiene importancia para la industria alimentaria porque cataliza el pardeamiento enzimático cuando el tejido se daña por hematomas, compresión o hendiduras, lo que hace que el producto sea menos comercializable y causa pérdidas económicas. [30] [31] [32] El pardeamiento enzimático debido a la PPO también puede provocar la pérdida del contenido nutricional en frutas y verduras, lo que reduce aún más su valor. [10] [30] [31]

Debido a que los sustratos de estas reacciones de PPO se encuentran en las vacuolas de las células vegetales dañadas principalmente por una cosecha inadecuada , la PPO inicia la cadena de reacciones de pardeamiento. [32] [33] La exposición al oxígeno cuando se corta en rodajas o se hace puré también conduce al pardeamiento enzimático por PPO en frutas y verduras. [31] Los ejemplos en los que la reacción de pardeamiento catalizada por PPO puede ser deseable incluyen aguacates, ciruelas pasas, uvas sultanas, té negro y granos de café verde. [10] [31]

En mango

En los mangos, el pardeamiento enzimático catalizado por PPO es causado principalmente por la quemadura de la savia, que conduce al pardeamiento de la piel. [ cita requerida ] La PPO de tipo catecol oxidasa se encuentra en los cloroplastos de las células de la piel del mango y sus sustratos fenólicos en las vacuolas. Por lo tanto, la quemadura de la savia es el evento iniciador de la PPO en la piel del mango, ya que descompone los compartimentos celulares. [33] La PPO se encuentra en la piel, la savia y la pulpa del mango, con los niveles más altos de actividad en la piel. [31]

En aguacate

El PPO presente en los aguacates provoca un pardeamiento rápido al exponerse al oxígeno, [10] un proceso de varios pasos que implica reacciones de oxidación tanto de monofenoles como de polifenoles, lo que da como resultado productos de o-quinona que posteriormente se convierten de manera irreversible en pigmentos poliméricos marrones ( melaninas ). [34]

En manzana

Presente en los cloroplastos y mitocondrias de todas las partes de una manzana, [31] la PPO es la enzima principal responsable del pardeamiento enzimático de las manzanas. [35] Debido a un aumento en la demanda de los consumidores de frutas y verduras preparadas previamente, una solución para el pardeamiento enzimático ha sido un área objetivo de investigación y desarrollo de nuevos productos. [36] Como ejemplo, las manzanas precortadas son un producto de consumo atractivo, pero cortarlas induce la actividad de la PPO, lo que lleva al pardeamiento de las superficies cortadas y reduce su calidad estética. [36] El pardeamiento también ocurre en los jugos y purés de manzana cuando se manipulan o procesan de manera deficiente. [37]

Las manzanas Arctic , un ejemplo de fruta genéticamente modificada diseñada para reducir la actividad de la PPO, son un conjunto de manzanas registradas que contienen un rasgo antipardeamiento derivado del silenciamiento genético para suprimir la expresión de la PPO, inhibiendo así el pardeamiento de la fruta. [38]

En albaricoque

El albaricoque, como fruta climatérica, experimenta una rápida maduración poscosecha . La forma latente de PPO puede activarse espontáneamente durante las primeras semanas de almacenamiento, generando la enzima activa con un peso molecular de 38 kDa. [39] Las combinaciones de ácido ascórbico / proteasa constituyen un método prometedor y práctico contra el pardeamiento, ya que los purés de albaricoque tratados conservaron su color . [40]

En patata

Presente en altas concentraciones en la cáscara del tubérculo de la papa y en 1–2 mm del tejido de la corteza exterior , la PPO se utiliza en la papa como defensa contra la depredación de insectos, lo que lleva al pardeamiento enzimático por daño tisular. [ cita requerida ] El daño en el tejido de la piel del tubérculo de la papa causa una alteración de la compartimentación celular, lo que resulta en el pardeamiento. Los pigmentos marrones o negros se producen a partir de la reacción de los productos de quinona de PPO con grupos de aminoácidos en el tubérculo. [32] En las papas, los genes de PPO no solo se expresan en los tubérculos de papa, sino también en hojas, pecíolos , flores y raíces. [32]

En nogal

En el nogal ( Juglans regia ), se han identificado dos genes diferentes ( jr PPO1 y jr PPO2) que codifican polifenol oxidasas. Las dos isoenzimas prefieren sustratos diferentes , ya que jr PPO1 muestra una mayor actividad hacia los monofenoles , mientras que jr PPO2 es más activa hacia los difenoles . [41] [42]

En álamo negro

Una catecol oxidasa monomérica de Populus nigra convierte el ácido cafeico en quinona y melanina en las células lesionadas . [43] [44]

La profenoloxidasa es una forma modificada de la respuesta del complemento que se encuentra en algunos invertebrados, incluidos insectos , cangrejos y gusanos . [45]

La hemocianina es homóloga a las fenoloxidasas (p. ej., tirosinasa ), ya que ambas enzimas comparten el tipo de coordinación del sitio activo de cobre. La hemocianina también exhibe actividad de PPO, pero con una cinética más lenta debido a un mayor volumen estérico en el sitio activo. La desnaturalización parcial en realidad mejora la actividad de PPO de la hemocianina al proporcionar un mayor acceso al sitio activo. [46]

La aureusidina sintasa es homóloga a la polifenol oxidasa vegetal, pero contiene ciertas modificaciones significativas. [ cita requerida ]

La aurona sintasa [47] cataliza la formación de auronas. La aurona sintasa purificada de Coreopsis grandiflora muestra una actividad tirosinasa débil contra la isoliquiritigenina , pero la enzima no reacciona con los sustratos clásicos de la tirosinasa l - tirosina y tiramina y, por lo tanto, debe clasificarse como catecol oxidasa . [48]

Véase también

Referencias

  1. ^ "Polyphenol Oxidase" (Polifenol oxidasa). Manual de enzimas de Worthington . Consultado el 13 de septiembre de 2011 .
  2. ^ McLarin, Mark-Anthony; Leung, Ivanhoe KH (2020). "Especificidad del sustrato de la polifenol oxidasa". Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 55 (3): 274–308. doi :10.1080/10409238.2020.1768209. PMID  32441137. S2CID  218831573.
  3. ^ A Sánchez-Ferrer; JN Rodríguez López; F García-Cánovas; F García-Carmona (1995). "Tirosinasa: una revisión completa de su mecanismo". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Estructura de proteínas y enzimología molecular . 1247 (1): 1–11. doi :10.1016/0167-4838(94)00204-t. PMID  7873577.
  4. ^ C Eicken; B Krebs; JC Sacchettini (1999). "Catecol oxidasa: estructura y actividad". Current Opinion in Structural Biology . 9 (6): 677–683. doi :10.1016/s0959-440x(99)00029-9. PMID  10607672.
  5. ^ Mayer AM (noviembre de 2006). "Polyphenol oxidases in plants and fungi: going places? A review" (Polifenoles oxidasas en plantas y hongos: ¿llegando a algún lugar? Una revisión). Fitoquímica . 67 (21): 2318–31. Bibcode :2006PChem..67.2318M. doi :10.1016/j.phytochem.2006.08.006. PMID  16973188.
  6. ^ Mauracher SG, Molitor C, Michael C, Kragl M, Rizzi A, Rompel A (marzo de 2014). "La purificación de proteínas de alto nivel permite la determinación inequívoca de polipéptidos de la isoforma latente PPO4 de la tirosinasa de hongos". Fitoquímica . 99 : 14–25. Bibcode :2014PChem..99...14M. doi :10.1016/j.phytochem.2013.12.016. PMC 3969299 . PMID  24461779. 
  7. ^ Mauracher SG, Molitor C, Al-Oweini R, Kortz U, Rompel A (septiembre de 2014). "Tirosinasa de hongos abPPO4 latente y activa cocristalizada con hexatungstotelurato(VI) en un solo cristal". Acta Crystallographica. Sección D, Cristalografía biológica . 70 (Pt 9): 2301–15. doi :10.1107/S1399004714013777. PMC 4157443. PMID  25195745 . 
  8. ^ Kampatsikas I, Bijelic A, Pretzler M, Rompel A (agosto de 2017). "Tres tirosinasas de manzana expresadas de forma recombinante sugieren los aminoácidos responsables de la actividad mono- versus difenolasa en las polifenoloxidasas de plantas". Scientific Reports . 7 (1): 8860. Bibcode :2017NatSR...7.8860K. doi :10.1038/s41598-017-08097-5. PMC 5562730 . PMID  28821733. 
  9. ^ Kampatsikas I, Bijelic A, Pretzler M, Rompel A (mayo de 2019). "Una reacción de autoescisión inducida por péptidos inicia la activación de la tirosinasa". Angewandte Chemie . 58 (22): 7475–7479. doi :10.1002/anie.201901332. PMC 6563526 . PMID  30825403. 
  10. ^ abcd Toledo L, Aguirre C (diciembre de 2017). "Revisión del pardeamiento enzimático en aguacate (Persea americana): historia, avances y perspectivas futuras". Critical Reviews in Food Science and Nutrition . 57 (18): 3860–3872. doi :10.1080/10408398.2016.1175416. PMID  27172067. S2CID  205692816.
  11. ^ Jolley RL, Mason HS (marzo de 1965). "Las múltiples formas de tirosinasa de hongos. Interconversión". The Journal of Biological Chemistry . 240 : PC1489–91. doi : 10.1016/S0021-9258(18)97603-9 . PMID  14284774.
  12. ^ Jolley RL, Robb DA, Mason HS (marzo de 1969). "Las múltiples formas de tirosinasa de hongos. Fenómenos de asociación-disociación". The Journal of Biological Chemistry . 244 (6): 1593–9. doi : 10.1016/S0021-9258(18)91800-4 . PMID  4975157.
  13. ^ Mallette MF, Dawson CR (agosto de 1949). "Sobre la naturaleza de las preparaciones de tirosinasa de hongos altamente purificadas". Archivos de bioquímica . 23 (1): 29–44. PMID  18135760.
  14. ^ Vaughn KC, Duke SO (1984). "Función de la polifenol oxidasa en plantas superiores". Physiologia Plantarum . 60 (1): 106–112. doi :10.1111/j.1399-3054.1984.tb04258.x.
  15. ^ Kampatsikas I, Rompel A (octubre de 2020). "Similar but still Different: Which Amino Acid Residues Are Responsible for Varying Activities in Type-III Copper Enzymes?" (Similares pero aún diferentes: ¿Qué residuos de aminoácidos son responsables de las diferentes actividades en las enzimas de cobre tipo III?). ChemBioChem . 22 (7): 1161–1175. doi : 10.1002/cbic.202000647 . ISSN  1439-4227. PMC 8049008 . PMID  33108057. 
  16. ^ Sugumaran M, Lipke H (mayo de 1983). "Formación de quinona meturo a partir de 4-alquilcatecoles: una nueva reacción catalizada por la polifenol oxidasa cuticular". FEBS Letters . 155 (1): 65–68. doi :10.1016/0014-5793(83)80210-5. S2CID  84630585.
  17. ^ Thaler JS, Karban R, Ullman DE, Boege K, Bostock RM (abril de 2002). "Interacción entre las vías de defensa de las plantas de jasmonato y salicilato: efectos sobre varios parásitos de las plantas". Oecologia . 131 (2): 227–235. Bibcode :2002Oecol.131..227T. doi :10.1007/s00442-002-0885-9. PMID  28547690. S2CID  25912204.
  18. ^ Duke SO, Vaughn KC (abril de 1982). "Falta de participación de la polifenol oxidasa en la ortohidroxilación de compuestos fenólicos en plántulas de frijol mungo". Physiologia Plantarum . 54 (4): 381–385. doi :10.1111/j.1399-3054.1982.tb00696.x.
  19. ^ Valero E, Garcia-Moreno M, Varon R, Garcia-Carmona F (1991). "Inhibición dependiente del tiempo de la polifenol oxidasa de la uva por tropolona". J. Agric. Food Chem . 39 (6): 1043–1046. doi :10.1021/jf00006a007.
  20. ^ Del Signore A, Romeoa F, Giaccio M (mayo de 1997). "Contenido de sustancias fenólicas en basidiomicetos". Investigación micológica . 101 (5): 552–556. doi :10.1017/S0953756296003206.
  21. ^ Wuyts N, De Waele D, Swennen R (2006). "Extracción y caracterización parcial de la polifenol oxidasa de raíces de banano (Musa acuminata Grande naine)". Fisiología vegetal y bioquímica . 44 (5–6): 308–14. doi :10.1016/j.plaphy.2006.06.005. PMID  16814556.
  22. ^ Palmer JK (1963). "Polifenoloxidasa del banano. Preparación y propiedades". Fisiología vegetal . 38 (5). Oxford University Press: 508–513. doi :10.1104/pp.38.5.508. PMC 549964 . PMID  16655824. 
  23. ^ García-Molina F, Muñoz JL, Varón R, Rodríguez-López JN, García-Cánovas F, Tudela J (noviembre de 2007). "Una revisión sobre métodos espectrofotométricos para medir las actividades monofenolasa y difenolasa de la tirosinasa". Journal of Agricultural and Food Chemistry . 55 (24): 9739–49. doi :10.1021/jf0712301. PMID  17958393.
  24. ^ Haghbeen K, Wue Tan E (enero de 2003). "Ensayo espectrofotométrico directo de las actividades monooxigenasa y oxidasa de la tirosinasa de hongos en presencia de sustratos sintéticos y naturales". Analytical Biochemistry . 312 (1): 23–32. doi :10.1016/S0003-2697(02)00408-6. PMID  12479831.
  25. ^ Espín JC, Morales M, Varón R, Tudela J, García-Cánovas F (octubre de 1995). "Un método espectrofotométrico continuo para determinar las actividades monofenolasa y difenolasa de la polifenol oxidasa de manzana". Analytical Biochemistry . 231 (1): 237–46. doi :10.1006/abio.1995.1526. PMID  8678307.
  26. ^ Rescigno A, Sollai F, Rinaldi AC, Soddu G, Sanjust E (marzo de 1997). "Tinción de la actividad de la polifenol oxidasa en geles de electroforesis de poliacrilamida". Journal of Biochemical and Biophysical Methods . 34 (2): 155–9. doi :10.1016/S0165-022X(96)01201-8. PMID  9178091.
  27. ^ Pomerantz SH (junio de 1964). "Hidroxilación de tirosina catalizada por la tirosinasa de mamíferos: un método de ensayo mejorado". Comunicaciones de investigación bioquímica y biofísica . 16 (2): 188–94. doi :10.1016/0006-291X(64)90359-6. PMID  5871805.
  28. ^ Naish-Byfield S, Riley PA (noviembre de 1992). "Oxidación de sustratos fenólicos monohídricos por tirosinasa. Un estudio oximétrico". The Biochemical Journal . 288 (Pt 1): 63–7. doi :10.1042/bj2880063. PMC 1132080 . PMID  1445282. 
  29. ^ Li Y, Zafar A, Kilmartin PA, Reynisson J, Leung IK (noviembre de 2017). "Desarrollo y aplicación de un ensayo basado en RMN para polifenol oxidasas". ChemistrySelect . 2 (32): 10435–41. doi :10.1002/slct.201702144.
  30. ^ abc Ünal MÜ (2007). "Propiedades de la polifenol oxidasa del banano Anamur (Musa cavendishii)". Química de los alimentos . 100 (3): 909–913. doi :10.1016/j.foodchem.2005.10.048.
  31. ^ abcdefg Vámos-Vigyázó L (1981). "Polifenooxidasa y peroxidasa en frutas y verduras". Critical Reviews in Food Science and Nutrition . 15 (1): 49–127. doi :10.1080/10408398109527312. PMID  6794984.
  32. ^ abcd Thygesen PW, Dry IB, Robinson SP (octubre de 1995). "Polyphenol oxidase in potatoes. A multigene family that displays different expression patterns" (Polifenol oxidasa en la patata. Una familia multigénica que exhibe patrones de expresión diferencial). Plant Physiology (Fisiología de las plantas ). 109 (2): 525–31. doi :10.1104/pp.109.2.525. PMC 157616. PMID 7480344  . 
  33. ^ ab Robinson SP, Loveys BR, Chacko EK (1993). "Enzimas de polifenol oxidasa en la savia y la piel de la fruta del mango". Biología vegetal funcional . 20 (1): 99–107. doi :10.1071/pp9930099. ISSN  1445-4416.
  34. ^ Shelby T. Peres; Kelsey A. Oonk; Kasandra J. Riley (29 de octubre de 2019). "El laboratorio del aguacate: una exploración basada en la investigación de una reacción enzimática de pardeamiento" (PDF) . Rollins College, CourseSource . Consultado el 8 de marzo de 2020 .
  35. ^ Rocha AM, Cano MP, Galeazzi MA, Morais AM (1 de agosto de 1998). "Caracterización de la polifenoloxidasa de manzana 'Starking'". Revista de la ciencia de la alimentación y la agricultura . 77 (4): 527–534. doi :10.1002/(sici)1097-0010(199808)77:4<527::aid-jsfa76>3.0.co;2-e. hdl : 10261/114868 . ISSN  1097-0010.
  36. ^ ab Son SM, Moon KD, Lee CY (abril de 2001). "Efectos inhibidores de varios agentes antipardeamiento en rodajas de manzana". Química alimentaria . 73 (1): 23–30. doi :10.1016/s0308-8146(00)00274-0.
  37. ^ Nicolas JJ, Richard-Forget FC, Goupy PM, Amiot MJ, Aubert SY (1994). "Reacciones de oscurecimiento enzimático en manzanas y productos de manzana". Critical Reviews in Food Science and Nutrition . 34 (2): 109–57. doi :10.1080/10408399409527653. PMID  8011143.
  38. ^ "Información sobre nuevos alimentos: eventos de la manzana ártica GD743 y GS784". Sección de nuevos alimentos, Dirección de alimentos, División de productos y alimentos para la salud, Salud Canadá, Ottawa. 20 de marzo de 2015. Consultado el 5 de noviembre de 2016 .
  39. ^ Derardja AE, Pretzler M, Kampatsikas I, Barkat M, Rompel A (septiembre de 2017). "Purificación y caracterización de la polifenol oxidasa latente del albaricoque (Prunus armeniaca L.)". Revista de química agrícola y alimentaria . 65 (37): 8203–8212. doi :10.1021/acs.jafc.7b03210. PMC 5609118 . PMID  28812349. 
  40. ^ Derardja AE, Pretzler M, Kampatsikas I, Barkat M, Rompel A (diciembre de 2019). "Inhibición de la polifenol oxidasa del albaricoque mediante combinaciones de proteasas vegetales y ácido ascórbico". Química alimentaria . 4 : 100053. doi : 10.1016 /j.fochx.2019.100053. PMC 6804514. PMID  31650127. 
  41. ^ Panis F, Kampatsikas I, Bijelic A, Rompel A (febrero de 2020). "Conversión de la tirosinasa de nuez en una catecol oxidasa mediante mutagénesis dirigida al sitio". Scientific Reports . 10 (1): 1659. Bibcode :2020NatSR..10.1659P. doi :10.1038/s41598-020-57671-x. PMC 6997208 . PMID  32015350. 
  42. ^ Panis F, Rompel A (julio de 2020). "Identificación de la posición de aminoácidos que controla las diferentes actividades enzimáticas en las isoenzimas de tirosinasa de nuez (jrPPO1 y jrPPO2)". Scientific Reports . 10 (1): 10813. Bibcode :2020NatSR..1010813P. doi :10.1038/s41598-020-67415-6. PMC 7331820 . PMID  32616720. 
  43. ^ Trémolières, Michèle; Bieth, Joseph G. (1984). "Aislamiento y caracterización de la polifenoloxidasa de hojas senescentes de álamo negro". Fitoquímica . 23 (3): 501–505. Bibcode :1984PChem..23..501T. doi :10.1016/s0031-9422(00)80367-2. ISSN  0031-9422.
  44. ^ Rompel, Annette; Fischer, Helmut; Meiwes, Dirk; Büldt-Karentzopoulos, K.; Dillinger, Renée; Tuczek, Felix; Witzel, Herbert; Krebs, B. (1999). "Estudios espectroscópicos y de purificación de las catecoloxidasas de Lycopus europaeus y Populus nigra: evidencia de un centro de cobre dinuclear de tipo 3 y similitudes espectroscópicas con la tirosinasa y la hemocianina". Revista de química inorgánica biológica . 4 (1): 56–63. doi :10.1007/s007750050289. ISSN  1432-1327. PMID  10499103. S2CID  29871864.
  45. ^ Beck G, Habicht GS (noviembre de 1996). "Inmunidad y los invertebrados" (PDF) . Scientific American . 275 (5): 60–66. Bibcode :1996SciAm.275e..60B. doi :10.1038/scientificamerican1196-60. PMID  8875808.
  46. ^ Decker H, Tuczek F (agosto de 2000). "Actividad tirosinasa/catecoloxidasa de hemocianinas: base estructural y mecanismo molecular". Tendencias en ciencias bioquímicas . 25 (8): 392–7. doi :10.1016/S0968-0004(00)01602-9. PMID  10916160.
  47. ^ Molitor C, Mauracher SG, Rompel A (marzo de 2016). "La aurona sintasa es una catecol oxidasa con actividad hidroxilasa y proporciona información sobre el mecanismo de las polifenol oxidasas de las plantas". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 113 (13): E1806-15. Bibcode :2016PNAS..113E1806M. doi : 10.1073/pnas.1523575113 . PMC 4822611 . PMID  26976571. 
  48. ^ Molitor C, Mauracher SG, Pargan S, Mayer RL, Halbwirth H, Rompel A (septiembre de 2015). "Aurona sintasa latente y activa de los pétalos de C. grandiflora: una polifenol oxidasa con características únicas". Planta . 242 (3): 519–37. doi :10.1007/s00425-015-2261-0. PMC 4540782 . PMID  25697287. 
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