La proteína de unión al ARN fusionada en sarcoma/translocada en liposarcoma ( FUS/TLS ), también conocida como ribonucleoproteína nuclear heterogénea P2, es una proteína que en los humanos está codificada por el gen FUS . [5] [6] [7] [8] [9] [10]
Descubrimiento
FUS/TLS se identificó inicialmente como una proteína de fusión (FUS-CHOP) producida como resultado de translocaciones cromosómicas en cánceres humanos, especialmente liposarcomas . [6] [9] En estos casos, el promotor y la parte N-terminal de FUS/TLS se translocan al dominio C-terminal de varios factores de transcripción de unión al ADN (por ejemplo, CHOP ) que confieren un fuerte dominio de activación transcripcional a las proteínas de fusión. [11] [12]
FUS/TLS se identificó de forma independiente como la proteína hnRNP P2, una subunidad de un complejo involucrado en la maduración del pre-ARNm . [13]
El extremo N-terminal de FUS parece estar involucrado en la activación transcripcional, mientras que el extremo C-terminal está involucrado en la unión de proteínas y ARN. Además, se han identificado sitios de reconocimiento para los factores de transcripción AP2 , GCF y Sp1 en FUS. [17]
De manera consistente, los estudios in vitro han demostrado que FUS/TLS se une al ARN, al ADN monocatenario y (con menor afinidad) al ADN bicatenario. [7] [9] [18] [19] [20] [21] La especificidad de secuencia de la unión de FUS/TLS al ARN o al ADN no se ha establecido bien; sin embargo, utilizando la selección in vitro (SELEX), se ha identificado un motivo GGUG común en aproximadamente la mitad de las secuencias de ARN unidas por FUS/TLS. [22] Una propuesta posterior fue que el motivo GGUG es reconocido por el dominio de dedo de zinc y no por el RRM (80). Además, se ha descubierto que FUS/TLS se une a una región relativamente larga en la región no traducida (UTR) 3′ del ARNm de la proteína estabilizadora de actina Nd1-L, lo que sugiere que, en lugar de reconocer secuencias cortas específicas, FUS/TLS interactúa con múltiples motivos de unión al ARN o reconoce conformaciones secundarias. [23] También se ha propuesto que FUS/TLS se una al ARN telomérico humano (UUAGGG)4 y al ADN telomérico humano monocatenario in vitro. [24]
Más allá de la unión de ácidos nucleicos, también se encontró que FUS/TLS se asocia con factores proteicos generales y más especializados para influir en el inicio de la transcripción. [25] De hecho, FUS/TLS interactúa con varios receptores nucleares . [26] y con factores de transcripción específicos de genes como Spi-1/PU.1. [27] o NF-κB . [28] También se asocia con la maquinaria transcripcional general y puede influir en el inicio de la transcripción y la selección del promotor al interactuar con la ARN polimerasa II y el complejo TFIID. [29] [30] [31] Recientemente, también se demostró que FUS/TLS reprime la transcripción de genes RNAP III y co-inmunoprecipita con TBP y el complejo TFIIIB. [32]
Reparación del ADN mediada por FUS
El FUS aparece en sitios de daño del ADN muy rápidamente, lo que sugiere que el FUS está orquestando la respuesta de reparación del ADN . [33] La función del FUS en la respuesta al daño del ADN en las neuronas implica una interacción directa con la histona desacetilasa 1 ( HDAC1 ). El reclutamiento de FUS a los sitios de rotura de doble cadena es importante para la señalización de la respuesta al daño del ADN y para la reparación del daño del ADN. [33] La pérdida de función del FUS da como resultado un mayor daño del ADN en las neuronas. Las mutaciones en la secuencia de localización nuclear del FUS deterioran la respuesta al daño del ADN dependiente de la poli (ADP-ribosa) polimerasa (PARP). [34] Este deterioro conduce a la neurodegeneración y a la formación de agregados de FUS. Dichos agregados de FUS son un sello patológico de la enfermedad neurodegenerativa esclerosis lateral amiotrófica (ELA).
En 2009, dos grupos de investigación separados analizaron 26 familias no relacionadas que presentaban un fenotipo de ELA tipo 6 y encontraron 14 mutaciones en el gen FUS . [36] [37]
El mecanismo tóxico por el cual el FUS mutante causa ELA no está claro en la actualidad. Se sabe que muchas de las mutaciones asociadas a la ELA se localizan en su señal de localización nuclear C-terminal, lo que hace que se localice en el citoplasma en lugar de en el núcleo (donde reside principalmente el FUS de tipo salvaje). [42] Esto sugiere que una pérdida de la función nuclear o una ganancia tóxica de la función citoplasmática es responsable del desarrollo de este tipo de ELA. Muchos investigadores creen que el modelo de ganancia tóxica de la función citoplasmática es más probable ya que los modelos de ratón que no expresan FUS y, por lo tanto, tienen una pérdida completa de la función nuclear de FUS, no desarrollan síntomas claros similares a los de la ELA. [43]
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