C1orf27

Gen humano

La proteína no caracterizada Cromosoma 1 Marco de lectura abierto 27 es una proteína en humanos, codificada por el gen C1orf27 . Su número de acceso es NM_017847. [1] Se trata de una proteína de membrana que tiene una longitud de 3926 pares de bases y la cadena más extensa de aminoácidos tiene una longitud de 454 aa. C1orf27 exhibe expresión citoplasmática en tejidos epidérmicos . [2] Los procesos biológicos asociados predichos del gen incluyen la especificación del destino celular y las propiedades del desarrollo. [ cita requerida ]

Gene

Lugar

Este gen está ubicado en el cromosoma 1 en 1q31.1. [3] Está codificado en la cadena positiva del ADN que abarca desde 186.344.406 hasta 186.390.514.

Diagrama de C1orf27 y genes cercanos en el cromosoma humano 1. [3]

ARNm

Empalme alternativo

Parece haber cuatro isoformas debido al empalme . [4] Dos de ellas están truncadas en el extremo 3' de la proteína desde 266aa y 396aa. La ubicación adicional de los sitios de empalme alternativos es de 79aa a 102aa y de 246aa a 260aa.

Proteína

Propiedades generales

La proteína primaria codificada de C1orf27 consta de 454 residuos de aminoácidos y tiene una longitud de 3926 pares de bases . [1] Consta de 14 exones en total . El peso molecular previsto de la proteína primaria no modificada es de aproximadamente 51,1 kdal .

Alias

Al igual que con muchos otros genes, existen algunos alias comunes que se encuentran con este gen. [ cita requerida ] Esos alias son Lymphocyte-Activation Gene-1 (LAG1) Interacting Protein, Transparent Testa Glabra 1 (TTG1) y Odorant Response Abnormal 4 (ODR4). El alias más común para C1orf27 es ODR4, y este es el que aparece más fácilmente cuando se busca el gen.

Composición

El análisis computacional reveló que el aminoácido más abundante es la leucina, con un 10,1 % de la proteína total. [5] El segundo más abundante fue la serina, que contribuye al 8,6 % de la proteína total. El ácido glutámico fue el tercero más abundante y contribuye al 7,7 % de la proteína. Este análisis también reveló que la proteína parece ser deficiente en triptófano, ya que solo contribuye al 1,1 % de la proteína. [5] Según la distribución de otros tipos de aminoácidos, hubo cinco segmentos hidrofóbicos de alta puntuación. También hubo dos dominios transmembrana ubicados en 82-98aa y 432-449aa.

Modificaciones postraduccionales

InteractuanteNúmero de sitios previstosFunción
N-miristoilación8Componentes clave de las vías de señalización y, por lo general, promueve la unión a la membrana, esencial para la localización de proteínas y/o la función biológica [6]
N-glicosilación4Aumenta la estabilidad de las proteínas disminuyendo la dinámica de las proteínas. [7]
Fosforilación de la proteína quinasa C7Regulación de la actividad enzimática. [8]
Fosforilación de la caseína quinasa II7Función del factor de crecimiento epidérmico. [9]
Fosforilación de la tirosina quinasa2Alteraciones de la conformación estructural. [10]
Fosforilación dependiente de cAMP y cGMP2Coordinación de la conformación del sitio activo y la actividad enzimática.

Se predice que C1orf27 experimentará múltiples modificaciones postraduccionales, como glicosilación , miristoilación y fosforilación . [11]

Interacciones

Hubo ocho interacciones identificadas por Mentha. [12] La primera fue UFSP2 que hidroliza el enlace peptídico en el gly del término C de UFM1, una proteína modificadora similar a la ubiquitina unida a varias proteínas diana. La segunda fue HSCB que actúa como co-chaperona en el ensamblaje del grupo hierro-azufre en las mitocondrias. La tercera fue GRB2 que es una proteína adaptadora que proporciona un enlace crítico entre los receptores del factor de crecimiento de la superficie celular y la vía de señalización Ras. La cuarta fue CYLD que es una proteasa que escinde las cadenas de poliubiquitina unidas a Lys-63, controla la regulación de la supervivencia celular, la proliferación y la diferenciación, y es necesaria para el progreso normal del ciclo celular. La quinta fue ATM que activa la señalización del punto de control tras roturas de doble cadena , apoptosis y estrés genotóxico. La sexta fue FAM177A1 , cuya función se desconoce. Los dos últimos fueron THID2 y Q81kP6, ambos presentes en el bacillus anthracis.

Localización subcelular

Es probable que la proteína c1orf27 sea citoplasmática. [13] Esto se encontró con una confiabilidad del 55,5%. La predicción de K-NN fue k=9/23 y se encontró que la proteína era 55,6% citoplasmática , 11,1% mitocondrial , 11,1% vacuolar , 11,1% citoesquelética y 11,1% golgi .

Estructura

Estructura terciaria prevista de c1orf27. [14]

Las hélices alfa previstas en la proteína c1orf27 están coloreadas en azul en la imagen de arriba. Las láminas beta están representadas por flechas rojas. Las espirales aleatorias son las hebras moradas entre las estructuras.

Expresión

Expresión de C1orf27 en tejidos humanos. [15]

En general, la expresión de c1orf27 parece ser ubicua. [16] Los sitios corporales de mayor expresión (>50 TPM) fueron vejiga , médula ósea , riñón , hígado , páncreas , paratiroides y vascular . Los sitios de salud de mayor expresión (>50 TPM) fueron tumores suprarrenales , tumores cervicales y tumores hepáticos. Si bien ambas observaciones tuvieron puntajes de TPM relativamente altos, todavía hubo una ocurrencia relativamente baja. Esto valida la suposición de que la expresión es ubicua. Hubo una expresión moderada (>25 TPM) en el feto humano , y la expresión aumentó con la edad. [16] La expresión estuvo completamente ausente en los oídos, esófago, linfa , nervio, glándulas salivales , tiroides , amígdalas y cordón umbilical . No hubo expresión en carcinoma de vejiga a pesar de que la expresión estaba elevada en la vejiga misma. Hubo una alta expresión en células endoteliales y células neuronales , pero fue indetectable en células gliales y células del neuropilo . La expresión también se localizó en el nucleoplasma y la membrana plasmática en humanos, pero se localiza en el citosol en ratones.

Homología

Parálogos

No se identificaron parálogos de C1orf27 en el genoma humano. [4]

Ortólogos

Se identificaron ortólogos en la mayoría de los animales para los cuales existían datos completos del genoma. [4] Los ortólogos identificados más distantes, pero aún relevantes, fueron invertebrados del filo Cnidaria .

Evolución molecular

Tasa de divergencia de secuencia para C1orf27 en comparación con fibrinógeno y citocromo C en ortólogos.

El valor m , o número de cambios de aminoácidos corregidos por cada 100 residuos, para el gen C1orf27 se graficó contra la divergencia de especies en millones de años. Cuando se comparó con los gráficos de divergencia del fibrinógeno y el citocromo C , se determinó que este gen se asemeja mucho al patrón evolutivo observado en el fibrinógeno, lo que sugiere una tasa de evolución más rápida . Los valores M para C1orf27 se calcularon utilizando el porcentaje de identidad, en comparación con los humanos, observado en las secuencias de ARNm de los ortólogos utilizando la fórmula derivada de la Hipótesis del Reloj Molecular .

Referencias

  1. ^ ab "Homo sapiens odr-4 GPCR localization factor homolog (ODR4), transcript - Nucleotide - NCBI". www.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 5 de febrero de 2018 .
  2. ^ "Expresión tisular de C1orf27 - Resumen - Atlas de proteínas humanas" www.proteinatlas.org . Consultado el 5 de febrero de 2018 .
  3. ^ ab "ODR4 odr-4 GPCR localization factor homolog [Homo sapiens (human)] - Gene - NCBI". www.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 19 de febrero de 2018 .
  4. ^ abc "Protein BLAST: búsqueda de bases de datos de proteínas mediante una consulta de proteínas". blast.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 25 de febrero de 2018 .
  5. ^ ab EMBL-EBI. «SAPS < Sequence Statistics < EMBL-EBI». www.ebi.ac.uk. Consultado el 22 de abril de 2018 .
  6. ^ Wright MH, Heal WP, Mann DJ, Tate EW (marzo de 2010). "Miristoilación de proteínas en la salud y la enfermedad". Journal of Chemical Biology . 3 (1): 19–35. doi :10.1007/s12154-009-0032-8. PMC 2816741 . PMID  19898886. 
  7. ^ "Proteómica/Modificación postraduccional/Glicosilación - Wikilibros, libros abiertos para un mundo abierto". es.wikibooks.org . Consultado el 6 de mayo de 2018 .
  8. ^ Robles-Flores M, Meléndez L, García W, Mendoza-Hernández G, Lam TT, Castañeda-Patlán C, González-Aguilar H (mayo de 2008). "Modificaciones postraduccionales en las isoenzimas de la proteína quinasa c. Efectos de la epinefrina y los ésteres de forbol". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Investigación de células moleculares . 1783 (5): 695–712. doi : 10.1016/j.bbamcr.2007.07.011 . PMID  18295358.
  9. ^ Siomi MC, Higashijima K, Ishizuka A, Siomi H (diciembre de 2002). "La caseína quinasa II fosforila la proteína de retraso mental X frágil y modula sus propiedades biológicas". Biología molecular y celular . 22 (24): 8438–47. doi :10.1128/MCB.22.24.8438-8447.2002. PMC 139871 . PMID  12446764. 
  10. ^ Rahimi N, Costello CE (enero de 2015). "Funciones emergentes de las modificaciones postraduccionales en la transducción de señales y la angiogénesis". Proteomics . 15 (2–3): 300–9. doi :10.1002/pmic.201400183. PMC 4297243 . PMID  25161153. 
  11. ^ "ExPASy - PROSITA". prosite.expasy.org . Consultado el 22 de abril de 2018 .
  12. ^ "mentha: el navegador interactoma". mentha.uniroma2.it . Consultado el 22 de abril de 2018 .
  13. ^ "Predicción PSORT II". psort.hgc.jp . Consultado el 22 de abril de 2018 .
  14. ^ Kelley, Lawrence. "Servidor de reconocimiento de plegamiento de proteínas PHYRE2". www.sbg.bio.ic.ac.uk . Consultado el 6 de mayo de 2018 .
  15. ^ "GDS1402/NM_017847.1_PROBE1". www.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 6 de mayo de 2018 .
  16. ^ ab Group, Schuler. "EST Profile - Hs.371210". www.ncbi.nlm.nih.gov . Consultado el 6 de mayo de 2018 . {{cite web}}: |last=tiene nombre genérico ( ayuda )
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