OGG1 es la enzima principal responsable de la escisión de 8-oxoguanina (8-oxoG), un subproducto de base mutagénica que se produce como resultado de la exposición a especies reactivas de oxígeno (ROS). OGG1 es una glicosilasa bifuncional, ya que es capaz de escindir el enlace glucosídico de la lesión mutagénica y causar una rotura de cadena en la estructura principal del ADN. El empalme alternativo de la región C-terminal de este gen clasifica las variantes de empalme en dos grupos principales, tipo 1 y tipo 2, dependiendo del último exón de la secuencia. Las variantes de empalme alternativo de tipo 1 terminan con el exón 7 y las de tipo 2 terminan con el exón 8. Un conjunto de formas empalmadas se designan 1a, 1b, 2a a 2e. [5] Todas las variantes tienen la región N-terminal en común. Se han descrito muchas variantes de empalme alternativo para este gen, pero no se ha determinado la naturaleza de longitud completa de cada variante. En eucariotas, el extremo N-terminal de este gen contiene una señal de localización mitocondrial, esencial para la localización mitocondrial. [6] Sin embargo, OGG1-1a también tiene una señal de localización nuclear en su extremo C-terminal que suprime la localización mitocondrial y hace que OGG1-1a se localice en el núcleo. [5] La forma principal de OGG1 que se localiza en las mitocondrias es OGG1-2a. [5] Un dominio N-terminal conservado aporta residuos al bolsillo de unión de 8-oxoguanina . Este dominio está organizado en una sola copia de un pliegue similar a TBP . [7]
A pesar de la presunta importancia de esta enzima, se han generado ratones que carecen de Ogg1 y se ha descubierto que tienen una esperanza de vida normal, [8] y los ratones knock out de Ogg1 tienen una mayor probabilidad de desarrollar cáncer, mientras que la alteración del gen MTH1 suprime concomitantemente el desarrollo de cáncer de pulmón en ratones Ogg1-/-. [9] Se ha demostrado que los ratones que carecen de Ogg1 son propensos a un mayor peso corporal y obesidad, así como a una resistencia a la insulina inducida por una dieta rica en grasas . [10] Existe cierta controversia sobre si la eliminación de Ogg1 realmente conduce a un aumento de los niveles de 8-oxo-2'-desoxiguanosina (8-oxo-dG): el ensayo de cromatografía líquida de alto rendimiento con detección electroquímica (HPLC-ECD) sugiere que la eliminación puede conducir a un nivel hasta 6 veces mayor de 8-oxo-dG en el ADN nuclear y un nivel 20 veces mayor en el ADN mitocondrial, mientras que el ensayo de ADN-fapy glicosilasa no indica cambios en los niveles de 8-oxo-dG. [ cita requerida ]
El aumento del estrés oxidativo inactiva temporalmente OGG1, que recluta factores de transcripción como NFkB y, por lo tanto, activa la expresión de genes inflamatorios. [11]
OGG1Deficiencia y aumento de 8-oxo-dG en ratones
Los ratones sin un gen OGG1 funcional tienen un nivel aproximadamente 5 veces mayor de 8-oxo-dG en sus hígados en comparación con los ratones con OGG1 de tipo salvaje . [9] Los ratones defectuosos en OGG1 también tienen un mayor riesgo de cáncer. [9] Kunisada et al. [13] irradiaron ratones sin un gen OGG1 funcional (ratones knock-out OGG1) y ratones de tipo salvaje tres veces por semana durante 40 semanas con luz UVB a una dosis relativamente baja (no suficiente para causar enrojecimiento de la piel). Ambos tipos de ratones tenían altos niveles de 8-oxo-dG en sus células epidérmicas tres horas después de la irradiación. Después de 24 horas, más de la mitad de la cantidad inicial de 8-oxo-dG estaba ausente de las células epidérmicas de los ratones de tipo salvaje, pero el 8-oxo-dG permaneció elevado en las células epidérmicas de los ratones knock-out OGG1 . Los ratones knock-out de OGG1 irradiados desarrollaron más del doble de incidencia de tumores de piel en comparación con los ratones de tipo salvaje irradiados, y la tasa de malignidad dentro de los tumores fue mayor en los ratones knock-out de OGG1 (73%) que en los ratones de tipo salvaje (50%).
Como analizaron Valavanidis et al. [14] , los niveles elevados de 8-oxo-dG en un tejido pueden servir como biomarcador del estrés oxidativo. También observaron que los niveles elevados de 8-oxo-dG se encuentran con frecuencia durante la carcinogénesis.
En la figura que muestra ejemplos de epitelio colónico de ratón, se encontró que el epitelio colónico de un ratón con una dieta normal tenía un nivel bajo de 8-oxo-dG en sus criptas colónicas (panel A). Sin embargo, se encontró que un ratón que probablemente estaba experimentando tumorigénesis colónica (debido al desoxicolato agregado a su dieta [12] ) tenía un nivel alto de 8-oxo-dG en su epitelio colónico (panel B). El desoxicolato aumenta la producción intracelular de oxígeno reactivo, lo que resulta en un mayor estrés oxidativo, [15] > [16] y esto puede conducir a tumorigénesis y carcinogénesis.
Control epigenético
En un estudio sobre el cáncer de mama, se encontró que el nivel de metilación del promotor OGG1 estaba correlacionado negativamente con el nivel de expresión del ARN mensajero OGG1. [17] Esto significa que la hipermetilación estaba asociada con una baja expresión de OGG1 y la hipometilación estaba correlacionada con la sobreexpresión de OGG1 . Por lo tanto, la expresión de OGG1 está bajo control epigenético . Los cánceres de mama con niveles de metilación del promotor OGG1 que estaban más de dos desviaciones estándar por encima o por debajo de lo normal se asociaron cada uno con una supervivencia reducida del paciente. [17]
En los cánceres
OGG1 es la enzima principal responsable de la escisión de 8-oxo-dG. Incluso cuando la expresión de OGG1 es normal, la presencia de 8-oxo-dG es mutagénica, ya que OGG1 no es 100% eficaz. Yasui et al. [18] examinaron el destino de 8-oxo-dG cuando este derivado oxidado de desoxiguanosina se insertó en un gen específico en 800 células en cultivo. Después de la replicación de las células, 8-oxo-dG se restauró a G en el 86% de los clones, probablemente reflejando una reparación precisa de la escisión de la base de OGG1 o una síntesis de translesión sin mutación. Las transversiones de G:C a T:A ocurrieron en el 5,9% de los clones, deleciones de una sola base en el 2,1% y transversiones de G:C a C:G en el 1,2%. En conjunto, estas mutaciones fueron las más comunes, representando el 9,2% del 14% de las mutaciones generadas en el sitio de inserción del gen 8-oxo-dG. Entre las otras mutaciones en los 800 clones analizados, también se encontraron 3 deleciones más grandes, de tamaños de 6, 33 y 135 pares de bases. Por lo tanto, el gen 8-oxo-dG puede causar directamente mutaciones, algunas de las cuales pueden contribuir a la carcinogénesis .
En un estudio prospectivo de 582 veteranos militares estadounidenses, con una edad media de 72 años, se midieron los niveles de metilación de OGG1 en las células sanguíneas y se hizo un seguimiento de ellos durante 13 años. La metilación elevada de OGG1 en una región promotora particular se asoció con un mayor riesgo de cualquier tipo de cáncer, y en particular de cáncer de próstata. [23]
Se espera que un efecto importante sobre el cáncer se derive de la mejora drástica de la expresión genética de ciertos genes de inmunidad, que regula OGG1. [26]
^ abc GRCh38: Lanzamiento de Ensembl 89: ENSG00000114026 – Ensembl , mayo de 2017
^ abc GRCm38: Lanzamiento de Ensembl 89: ENSMUSG00000030271 – Ensembl , mayo de 2017
^ "Referencia de PubMed humana:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU .
^ "Referencia PubMed de ratón:". Centro Nacional de Información Biotecnológica, Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU . .
^ abc Nishioka K, Ohtsubo T, Oda H, Fujiwara T, Kang D, Sugimachi K, Nakabeppu Y (mayo de 1999). "Expresión y localización intracelular diferencial de dos formas principales de la ADN glicosilasa de 8-oxoguanina humana codificada por ARNm OGG1 empalmados alternativamente". Biología molecular de la célula . 10 (5): 1637–1652. doi :10.1091/mbc.10.5.1637. PMC 30487 . PMID 10233168.
^ Bjørås M, Seeberg E, Luna L, Pearl LH, Barrett TE (marzo de 2002). "El 'cambio' recíproco subyace al reconocimiento del sustrato y la activación catalítica por la ADN glicosilasa 8-oxo-guanina humana". Journal of Molecular Biology . 317 (2): 171–177. doi :10.1006/jmbi.2002.5400. PMID 11902834.
^ Klungland A, Rosewell I, Hollenbach S, Larsen E, Daly G, Epe B, Seeberg E, Lindahl T, Barnes DE (noviembre de 1999). "Acumulación de lesiones de ADN premutagénicas en ratones defectuosos en la eliminación del daño oxidativo de bases". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 96 (23): 13300–13305. Bibcode :1999PNAS...9613300K. doi : 10.1073/pnas.96.23.13300 . PMC 23942 . PMID 10557315.
^ abc Sakumi K, Tominaga Y, Furuichi M, Xu P, Tsuzuki T, Sekiguchi M, Nakabeppu Y (marzo de 2003). "Tumorigénesis pulmonar asociada a la eliminación de Ogg1 y su supresión por la alteración del gen Mth1". Investigación del cáncer . 63 (5): 902–905. PMID 12615700.
^ Sampath H, Vartanian V, Rollins MR, Sakumi K, Nakabeppu Y, Lloyd RS (diciembre de 2012). "La deficiencia de 8-oxoguanina ADN glicosilasa (OGG1) aumenta la susceptibilidad a la obesidad y la disfunción metabólica". PLOS ONE . 7 (12): e51697. Bibcode :2012PLoSO...751697S. doi : 10.1371/journal.pone.0051697 . PMC 3524114 . PMID 23284747.
^ Pan L, Zhu B, Hao W, Zeng X, Vlahopoulos SA, Hazra TK, Hegde ML, Radak Z, Bacsi A, Brasier AR, Ba X, Boldogh I (2 de diciembre de 2016). "Función de las lesiones de la base de guanina oxidada en la regulación epigenética mediada por la 8-oxoguanina ADN glicosilasa-1 de la expresión génica impulsada por el factor nuclear κB". The Journal of Biological Chemistry . 291 (49): 25553–25566. doi : 10.1074/jbc.M116.751453 . PMC 5207254 . PMID 27756845.
^ ab Prasad AR, Prasad S, Nguyen H, Facista A, Lewis C, Zaitlin B, Bernstein H, Bernstein C (julio de 2014). "Nuevo modelo de cáncer de colon en ratones relacionado con la dieta que es paralelo al cáncer de colon humano". Revista Mundial de Oncología Gastrointestinal . 6 (7): 225–243. doi : 10.4251/wjgo.v6.i7.225 . PMC 4092339 . PMID 25024814.
^ Kunisada M, Sakumi K, Tominaga Y, Budiyanto A, Ueda M, Ichihashi M, Nakabeppu Y, Nishigori C (julio de 2005). "La formación de 8-oxoguanina inducida por la exposición crónica a rayos UVB hace que los ratones deficientes en Ogg1 sean susceptibles a la carcinogénesis cutánea". Cancer Research . 65 (14): 6006–6010. doi :10.1158/0008-5472.CAN-05-0724. PMID 16024598.
^ Valavanidis A, Vlachogianni T, Fiotakis K, Loridas S (agosto de 2013). "Estrés oxidativo pulmonar, inflamación y cáncer: material particulado respirable, polvos fibrosos y ozono como causas principales de carcinogénesis pulmonar a través de mecanismos de especies reactivas de oxígeno". Revista internacional de investigación ambiental y salud pública . 10 (9): 3886–3907. doi : 10.3390/ijerph10093886 . PMC 3799517 . PMID 23985773.
^ Tsuei J, Chau T, Mills D, Wan YJ (noviembre de 2014). "Desregulación de los ácidos biliares, disbiosis intestinal y cáncer gastrointestinal". Experimental Biology and Medicine . 239 (11): 1489–1504. doi :10.1177/1535370214538743. PMC 4357421 . PMID 24951470.
^ Ajouz H, Mukherji D, Shamseddine A (mayo de 2014). "Ácidos biliares secundarios: una causa poco reconocida de cáncer de colon". Revista mundial de oncología quirúrgica . 12 : 164. doi : 10.1186/1477-7819-12-164 . PMC 4041630. PMID 24884764 .
^ ab Fleischer T, Edvardsen H, Solvang HK, Daviaud C, Naume B, Børresen-Dale AL, Kristensen VN, Tost J (junio de 2014). "Análisis integrado de perfiles de metilación de ADN de alta resolución, expresión génica, genotipos de línea germinal y criterios de valoración clínicos en pacientes con cáncer de mama". Revista internacional del cáncer . 134 (11): 2615–2625. doi : 10.1002/ijc.28606 . PMID 24395279. S2CID 32537522.
^ Yasui M, Kanemaru Y, Kamoshita N, Suzuki T, Arakawa T, Honma M (marzo de 2014). "Rastreando el destino de los aductos de ADN introducidos en sitios específicos en el genoma humano". Reparación de ADN . 15 : 11–20. doi : 10.1016/j.dnarep.2014.01.003 . PMID 24559511.
^ Mahjabeen I, Kayani MA (2016). "La pérdida de la expresión de genes supresores de tumores mitocondriales se asocia con un resultado clínico desfavorable en el carcinoma de células escamosas de cabeza y cuello: datos de un estudio retrospectivo". PLOS ONE . 11 (1): e0146948. Bibcode :2016PLoSO..1146948M. doi : 10.1371/journal.pone.0146948 . PMC 4718451 . PMID 26785117.
^ Kohno Y, Yamamoto H, Hirahashi M, Kumagae Y, Nakamura M, Oki E, Oda Y (junio de 2016). "Expresión reducida de MUTYH, MTH1 y OGG1 y mutación de TP53 en el adenocarcinoma de tipo difuso del cardias gástrico". Patología humana . 52 : 145–152. doi :10.1016/j.humpath.2016.01.006. PMID 26980051.
^ Jiang Z, Hu J, Li X, Jiang Y, Zhou W, Lu D (diciembre de 2006). "Análisis de expresión de 27 genes de reparación de ADN en astrocitomas mediante matriz de baja densidad TaqMan". Neuroscience Letters . 409 (2): 112–117. doi :10.1016/j.neulet.2006.09.038. PMID 17034947. S2CID 54278905.
^ ab Kubo N, Morita M, Nakashima Y, Kitao H, Egashira A, Saeki H, Oki E, Kakeji Y, Oda Y, Maehara Y (abril de 2014). "Daño oxidativo del ADN en el cáncer de esófago humano: análisis clinicopatológico de la 8-hidroxidesoxiguanosina y su enzima reparadora". Enfermedades del esófago . 27 (3): 285–293. doi :10.1111/dote.12107. hdl : 2324/1441070 . PMID 23902537.
^ Gao T, Joyce BT, Liu L, Zheng Y, Dai Q, Zhang Z, Zhang W, Shrubsole MJ, Tao MH, Schwartz J, Baccarelli A, Hou L (2016). "Metilación del ADN de los genes de estrés oxidativo y riesgo de cáncer en el Estudio del Envejecimiento Normativo". Revista Estadounidense de Investigación del Cáncer . 6 (2): 553–561. PMC 4859680 . PMID 27186424.
^ Paz-Elizur T, Krupsky M, Blumenstein S, Elinger D, Schechtman E, Livneh Z (septiembre de 2003). "Actividad de reparación del ADN para el daño oxidativo y el riesgo de cáncer de pulmón". Revista del Instituto Nacional del Cáncer . 95 (17): 1312–1319. CiteSeerX 10.1.1.335.8063 . doi : 10.1093/jnci/djg033 . PMID 12953085.
^ Paz-Elizur T, Ben-Yosef R, Elinger D, Vexler A, Krupsky M, Berrebi A, Shani A, Schechtman E, Freedman L, Livneh Z (diciembre de 2006). "Reparación reducida del daño oxidativo del ADN causado por la 8-oxoguanina y riesgo de cáncer de cabeza y cuello". Cancer Research . 66 (24): 11683–11689. doi :10.1158/0008-5472.CAN-06-2294. PMID 17178863. S2CID 23247597.
^ Vlahopoulos S, Pan L, Varisli L, Dancik GM, Karantanos T, Boldogh I (diciembre de 2023). "OGG1 como lector epigenético afecta a NFκB: qué significa esto para el cáncer". Cancers (Basilea) . 16 (1): 148. doi : 10.3390/cancers16010148 . PMC 10778025. PMID 38201575 .
^ Marsin S, Vidal AE, Sossou M, Ménissier-de Murcia J, Le Page F, Boiteux S, de Murcia G, Radicella JP (noviembre de 2003). "Papel de XRCC1 en la coordinación y estimulación de la reparación del daño oxidativo del ADN iniciada por la glicosilasa de ADN hOGG1". The Journal of Biological Chemistry . 278 (45): 44068–44074. doi : 10.1074/jbc.M306160200 . PMID 12933815.
^ Dantzer F, Luna L, Bjørås M, Seeberg E (junio de 2002). "La OGG1 humana sufre fosforilación de serina y se asocia con la matriz nuclear y la cromatina mitótica in vivo". Nucleic Acids Research . 30 (11): 2349–2357. doi :10.1093/nar/30.11.2349. PMC 117190 . PMID 12034821.
^ Osorio A, Milne RL, Kuchenbaecker K, Vaclová T, Pita G, Alonso R, et al. (abril de 2014). "Las glicosilasas de ADN implicadas en la reparación por escisión de bases pueden estar asociadas con el riesgo de cáncer en portadores de mutaciones BRCA1 y BRCA2". PLOS Genetics . 10 (4): e1004256. doi : 10.1371/journal.pgen.1004256 . PMC 3974638 . PMID 24698998.
Lectura adicional
Boiteux S, Radicella JP (mayo de 2000). "El gen humano OGG1: estructura, funciones y su implicación en el proceso de carcinogénesis". Archivos de bioquímica y biofísica . 377 (1): 1–8. doi :10.1006/abbi.2000.1773. PMID 10775435.
Park J, Chen L, Tockman MS, Elahi A, Lazarus P (febrero de 2004). "La enzima reparadora del ADN 8-oxoguanina ADN N-glicosilasa 1 (hOGG1) humana y su asociación con el riesgo de cáncer de pulmón". Farmacogenética . 14 (2): 103–109. doi :10.1097/00008571-200402000-00004. PMID 15077011.
Hung RJ, Hall J, Brennan P, Boffetta P (noviembre de 2005). "Polimorfismos genéticos en la vía de reparación por escisión de la base y riesgo de cáncer: una revisión enorme". American Journal of Epidemiology . 162 (10): 925–942. doi : 10.1093/aje/kwi318 . PMID 16221808.
Mirbahai L, Kershaw RM, Green RM, Hayden RE, Meldrum RA, Hodges NJ (febrero de 2010). "Uso de una baliza molecular para rastrear la actividad de la proteína de reparación por escisión de bases OGG1 en células vivas". Reparación de ADN . 9 (2): 144–152. doi :10.1016/j.dnarep.2009.11.009. PMID 20042377.
Wang R, Hao W, Pan L, Boldogh I, Ba X (octubre de 2018). "Los roles de la enzima reparadora por escisión de bases OGG1 en la expresión génica". Ciencias de la vida celular y molecular . 75 (20): 3741–3750. doi :10.1007/s00018-018-2887-8. PMC 6154017 . PMID 30043138.
Vlahopoulos S, Adamaki M, Khoury N, Zoumpourlis V, Boldogh I (2018). "Funciones de la enzima reparadora del ADN OGG1 en la inmunidad innata y su importancia para el cáncer de pulmón". Farmacología y terapéutica . 194 : 59–72. doi :10.1016/j.pharmthera.2018.09.004. PMC 6504182 . PMID 30240635.
Enlaces externos
oxoguanina+glicosilasa+1,+humana en los Encabezados de materias médicas (MeSH) de la Biblioteca Nacional de Medicina de EE. UU.
Este artículo incorpora texto de dominio público de Pfam e InterPro : IPR012904