Tabla de hiperacumuladores – 3

Esta lista cubre hiperacumuladores , especies de plantas que acumulan o son tolerantes a radionucleidos ( Cd , Cs-137 , Co , Pu-238 , Ra , Sr , U-234 , 235 , 238 ), hidrocarburos y solventes orgánicos ( Benceno , BTEX , DDT , Dieldrina , Endosulfán , Fluoranteno , MTBE , PCB , PCNB , TCE y subproductos) y compuestos inorgánicos ( Ferrocianuro de potasio ).

Ver también:

Hiperacumuladores y contaminantes: radionucleidos, hidrocarburos y disolventes orgánicos – tasas de acumulación
ContaminanteTasas de acumulación (en mg/kg de peso seco)Nombre en latínNombre en inglésH-Hiperacumulador o A-Acumulador P-Precipitador T-ToleranteNotasFuentes
CdAthyrium yokoscense(¿Falso bazo japonés?)Cd(A), Cu(H), Pb(H), Zn(H)Origen Japón[1]
Cd>100Avena strigosa Escritura.Nuevo- Avena
Avena desnivelada o Avena de cerdas		[2]
CdH-Bacopa monnieriHisopo de agua suave, hisopo de agua, brahmi, gratiola de hojas de tomillo, hisopo de aguaCr(H), Cu(H), Hg(A), Pb(A)Origen India; especie acuática emergente[1] [3]
CdBrasicáceasMostazas, flores de mostaza, crucíferas o, familia de las colesCd(H), Cs(H), Ni(H), Sr(H), Zn(H)Fitoextracción[4]
CdA-Hierbas de la familia Brassica juncea L.Mostaza indiaCr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), U(A), Zn(H)cultivado[1] [4] [5]
CdH-Vallisneria americanaCinta de hierbaCr(A), Cu(H), Pb(H)Orígenes: Europa y norte de África; se cultiva ampliamente en el comercio de acuarios.[1]
Cd>100Crotalaria junceaCáñamo sunn o sunnAltas cantidades de fenoles solubles totales[2]
CdH-Eichhornia crassipesJacinto de aguaCr(A), Cu(A), Hg(H), Pb(H), Zn(A). También Cs, Sr, U [6] y pesticidas [7]Pantropical/Subtropical, 'la maleza problemática'[1]
CdHelianthus annuusGirasolFitoextracción y rizofiltración[1] [4] [8]
CdH-Hidrilla verticillataHidrillaCr(A), Hg(H), Pb(H)[1]
CdH-Lemna menorLenteja de aguaPb(H), Cu(H), Zn(A)Originaria de América del Norte y muy extendida.[1]
CdT-Pistia stratiotesLechuga de aguaCu(T), Hg(H), Cr(H)Pantropical, origen sur de EE. UU.; hierba acuática[1]
CdSalix viminalis L.Mimbre común , mimbre de cestaAg, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos; [4] Pb, U, Zn ( S. viminalix ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Perclorato (halofitas de humedales)[8]
CdSpirodela polyrhizaLenteja de agua giganteCr(H), Pb(H), Ni(H), Zn(A)Originario de América del Norte[1] [10] [11]
Cd>100Tagetes erecta L.Africano-altoSolo tolerancia. El nivel de peroxidación lipídica aumenta; se reducen las actividades de las enzimas antioxidantes como la superóxido dismutasa, la ascorbato peroxidasa, la glutatión reductasa y la catalasa.[2]
CdThlaspi caerulescensPennycress alpinoCr(A), Co(H), Cu(H), Mo, Ni(H), Pb(H), Zn(H)Fitoextracción. La población bacteriana de su rizosfera es menos densa que la de Trifolium pratense pero más rica en bacterias resistentes a metales específicos. [12][1] [4] [10] [13] [14] [15] [16]
Cd1000Vallisneria espiralisHierba anguila37 registros de plantas; origen India[10] [17]
Cs-137Acer rubrum , Acer pseudoplatanusArce rojo , arce sicómoroPu-238, Sr-90Hojas: mucha menos absorción en el alerce y el arce sicómoro que en la picea. [18][6]
Cs-137Especie de Agrostis .Especie de Agrostis.Especies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137hasta 3000 Bq kg-1 [19]Amaranthus retroflexus (variedad Belozernii, aureus, Pt-95)Amaranto de raíz rojaCd(H), Cs(H), Ni(H), Sr(H), Zn(H) [4]Fitoextracción. Puede acumular radionucleidos , nitrato de amonio y cloruro de amonio como agentes quelantes. [6] La concentración máxima se alcanza después de 35 días de crecimiento. [19]
Cs-137BrasicáceasMostazas, flores de mostaza, crucíferas o, familia de las colesCd(H), Cs(H), Ni(H), Sr(H), Zn(H)Fitoextracción. Nitrato de amonio y cloruro de amonio como agentes quelantes. [6][4]
Cs-137Brassica junceaMostaza indiaContiene de 2 a 3 veces más Cs-137 en sus raíces que en la biomasa sobre el suelo [19] Nitrato de amonio y cloruro de amonio como agentes quelantes.[6]
Cs-137Cerastium fontanumPamplina grandeEspecies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Beta vulgaris , Chenopodiaceae , Kail ? y/o Salsola ?Remolacha , Quinua , Cardo rusoSr-90, Cs-137Especies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Cocos nuciferapalma de cocoÁrbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Eichhornia crassipesJacinto de aguaU, Sr (alto porcentaje de absorción en pocos días [6] ). También Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb, Zn(A) [1] y pesticidas. [7][6]
Cs-137Eragrostis bahiensis
( Eragrostis )		Hierba del amor de BahíaGlomus mosseae como enmienda. Aumenta la superficie de las raíces de las plantas, permitiendo que éstas adquieran más nutrientes, agua y, por lo tanto, más radionucleidos disponibles en la solución del suelo.[6]
Cs-137Eucalipto tereticornisEucalipto rojo del bosqueSr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Festuca arundinaceaFestuca altaEspecies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Festuca rubraPunteroEspecies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Glomus mosseae como agente quelante
( Glomus (hongo) )		Hongos micorrízicosGlomus mosseae como enmienda. Aumenta la superficie de las raíces de las plantas, permitiendo que éstas adquieran más nutrientes, agua y, por lo tanto, más radionucleidos disponibles en la solución del suelo.[6]
Cs-137Glomus intradices
( Glomus (hongo) )		Hongos micorrízicosGlomus mosseae como agente quelante. Aumenta la superficie de las raíces de las plantas, permitiendo que éstas adquieran más nutrientes, agua y, por lo tanto, más radionucleidos disponibles en la solución del suelo.[6]
Cs-1374900-8600 [20]Helianthus annuusGirasolU, Sr (alto porcentaje de absorción en pocos días [6] )Acumula hasta 8 veces más Cs-137 que el fleo o la cola de zorro. Contiene de 2 a 3 veces más Cs-137 en sus raíces que en la biomasa sobre el suelo. [19][1] [6] [10]
Cs-137LarixAlerceHojas: la absorción en el alerce y el arce sicómoro fue mucho menor que en el abeto. El 20% del cesio translocado a las hojas nuevas fue resultado de la absorción por las raíces 2,5 años después del accidente de Chernóbil. [18]
Cs-137Liquidámbar styracifluaLiquidámbar americanoPu-238, Sr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Liriodendron tulipiferaÁrbol de tulipánPu-238, Sr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Cs-137Lolium multiflorumRaigrás italianoSrMicorrizas: acumulan mucho más Cs-137 y Sr-90 cuando crecen en turba de Sphagnum que en cualquier otro medio, incluidos arcilla, arena, limo y compost. [21][6]
Cs-137Lolium perenneRaigrás perennePuede acumular radionucleidos[6]
Cs-137Panicum virgatumPasto varilla[6]
Cs-137Phaseolus acutifoliusFrijoles TepariCd(H), Cs(H), Ni(H), Sr(H), Zn(H) [4]Fitoextracción. Nitrato de amonio y cloruro de amonio como agentes quelantes [6]
Cs-137Hierba de San Juan L.Hierba canariaCd(H), Cs(H), Ni(H), Sr(H), Zn(H) [4] Nitrato de amonio y cloruro de amonio como agentes quelantes. [6]Fitoextracción
Cs-137Picea abiesPiceaLa concentración es aproximadamente 25 veces mayor en la corteza que en la madera y entre 1,5 y 4,7 veces mayor en las hachas de ramas directamente contaminadas que en las hojas. [18]
Cs-137Pinus radiata , Pinus ponderosaPino de Monterrey , Pino PonderosaSr-90. También hidrocarburos de petróleo, solventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos ( Pinus spp. [4]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos.[6]
Cs-137Sorgo halepenseHierba Johnson[6]
Cs-137Trifolium repensTrébol blancoEspecies de gramíneas o herbáceas capaces de acumular radionucleidos[6]
Cs-137yoZea maysMaízAlta tasa de absorción. Acumula radionucleidos. [16] Contiene de 2 a 3 veces más Cs137 en sus raíces que en la biomasa sobre el suelo. [19][1] [6] [10]
Co1000 a 4304 [22]Haumaniastrum robertii
( Lamiáceas )		Flor de cobre27 registros de plantas; origen África. Nombre vernáculo: 'flor de cobre'. La fanerógama de esta especie es la que tiene el mayor contenido de cobalto. Su distribución podría estar determinada por el cobalto en lugar del cobre. [22][10] [14]
CoH-Thlaspi caerulescensPennycress alpinoCd(H), Cr(A), Cu(H), Mo, Ni(H), Pb(H), Zn(H)Fitoextracción[1] [4] [10] [12] [13] [14] [15]
Pu-238Acer rubroArce rojoCs-137, Sr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Pu-238Liquidámbar styracifluaLiquidámbar americanoCs-137, Sr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Pu-238Liriodendron tulipiferaÁrbol de tulipánCs-137, Sr-90Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Real academia de bellas artesNo se encontraron informes de acumulación[10]
SrAcer rubroArce rojoCs-137, Pu-238Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
SrBrasicáceasMostazas, flores de mostaza, crucíferas o, familia de las colesCd(H), Cs(H), Ni(H), Zn(H)Fitoextracción[4]
SrBeta vulgaris , Chenopodiaceae , Kail ? y/o Salsola ?Remolacha , Quinua , Cardo rusoSr-90, Cs-137Puede acumular radionucleidos[6]
SrEichhornia crassipesJacinto de aguaCs-137, U-234, 235, 238. También Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb, Zn(A) [1] y pesticidas. [7]En pH de 9, acumula altas concentraciones de Sr-90 con aproximadamente 80 a 90% de éste en sus raíces [20][6]
SrEucalipto tereticornisEucalipto rojo del bosqueCs-137Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
Sr¿¿¿C-??Helianthus annuusGirasolAcumula radionucleidos; [16] alta tasa de absorción. Fitoextracción y rizofiltración[1] [4] [6] [10]
SrLiquidámbar styracifluaLiquidámbar americanoCs-137, Pu-238Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
SrLiriodendron tulipiferaÁrbol de tulipánCs-137, Pu-238Árbol capaz de acumular radionucleidos[6]
SrLolium multiflorumRaigrás italianoCsMicorrizas: acumulan mucho más Cs-137 y Sr-90 cuando crecen en turba de Sphagnum que en cualquier otro medio, incluida arcilla, arena, limo y compost. [21][6]
Sr1,5-4,5 % en sus brotesPinus radiata , Pinus ponderosaPino de Monterrey , Pino PonderosaHidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos; [4] Cs-137Fitocontención. Acumulan entre 1,5 y 4,5 % de Sr-90 en sus brotes. [20][6]
SrApiaceae (también conocidas como umbelíferas )Familia de la zanahoria o perejilEspecies más capaces de acumular radionucleidos[6]
SrFabaceae (también conocidas como Leguminosae )Familia de las legumbres , guisantes o frijoles.Especies más capaces de acumular radionucleidos[6]
túAmarantoAmarantoCd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Zn(H)Agente quelante de ácido cítrico [8] y ver nota. Cs : la concentración máxima se alcanza después de 35 días de crecimiento. [19][1] [6]
túBrassica juncea , Brassica chinensis , Brassica narinosaFamilia de la colCd(A), Cr(A), Cu(H), Ni(H), Pb(H), Pb(P), Zn(H)El agente quelante de ácido cítrico aumenta la absorción 1000 veces, [8] [23] y ver nota[1] [4] [6]
U-234, 235, 238Eichhornia crassipesJacinto de aguaCs-137, Sr-90. También Cd(H), Cr(A), Cu(A), Hg(H), Pb, Zn(A), [1] y pesticidas. [7][6]
U-234, 235, 23895% de U en 24 horas. [19]Helianthus annuusGirasolAcumula radionucleidos; [16] En un sitio de aguas residuales contaminadas en Ashtabula, Ohio, plantas de 4 semanas pueden eliminar más del 95% del uranio en 24 horas. [19] Fitoextracción y rizofiltración.[1] [4] [6] [8] [10] URL
túJuniperusEnebroAcumula (radionucleidos) U en sus raíces [20][6]
túPicea marianaPicea negraAcumula (radionucleidos) U en sus ramitas [20][6]
túQuercusRobleAcumula (radionucleidos) U en sus raíces [20][6]
tú¿ Kail ? y/o Salsola ?Cardo ruso (hierba rodante)
túSalix viminalisMimbre comúnAg, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos; [4] Cd, Pb, Zn ( S. viminalis ); [8] ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Perclorato (halofitas de humedales)[8]
túSilene vulgaris (también conocida como "Silene cucubalus" )Collegiale de vejiga
túZea maysMaíz
túA-?[10]
RadionucleidosTradescantia bracteataHierba arañaIndicador de radionucleidos: los estambres (normalmente azules o azul violeta) se vuelven rosados ​​cuando se exponen a radionucleidos.[6]
BencenoClorofito comosumplanta araña[24]
BencenoFicus elásticahiguera de caucho, arbusto de caucho, árbol de caucho, planta de caucho o arbusto de caucho indio[24]
BencenoKalanchoe blossfeldianaKalanchoeParece tomar benceno selectivamente sobre tolueno.[24]
BencenoPelargonium x domesticumGermanio[24]
BTEXCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaDDT, dieldrina, endodulfan, pentacloronitrobenceno, PCPFitoestimulación[4]
DDTCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaBTEX, dieldrina, endodulfan, pentacloronitrobenceno, PCPFitoestimulación[4]
DieldrínCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaDDT, BTEX, endodulfan, pentacloronitrobenceno, PCPFitoestimulación[4]
EndosulfánCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaDDT, BTEX, dieldrina, PCP, pentacloronitrobencenoFitoestimulación[4]
FluorantenoCiclotella caspia Ciclotella caspiaTasa aproximada de biodegradación el primer día: 35%; el sexto día: 85％ (tasa de degradación física solamente 5,86％).[25]
HidrocarburosCynodon dactylon (L.) Pers.gramaReducción media de hidrocarburos de petróleo del 68% después de 1 año[26]
HidrocarburosFestuca arundinaceaFestuca altaReducción media de hidrocarburos de petróleo del 62% después de 1 año [8][27]
Hidrocarburosespecies de pinoPino spp.Disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos. [4] También Cs -137, Sr -90 [6]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos ( P. ponderosa , P. radiata ) [6][4]
HidrocarburosEspecie de salix .Mimbre spp.Ag, Cr, Hg, Se, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos; [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Perclorato (halofitas de humedales)[4]
MTBEespecies de pinoPino spp.Hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, TCE y subproductos. [4] También Cs-137, Sr-90 ( Pinus radiata , Pinus ponderosa ) [6]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos ( P. ponderosa , P. radiata ) [6][4]
MTBEEspecie de salix .Mimbre spp.Ag, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, TCE y subproductos; [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción, fitocontención. Perclorato (halofitas de humedales)[4]
Disolventes orgánicosespecies de pinoPino spp.Hidrocarburos de petróleo, MTBE, TCE y subproductos. [4] También Cs-137, Sr-90 ( Pinus radiata , Pinus ponderosa ) [6]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos ( P. ponderosa , P. radiata ) [6][4]
Disolventes orgánicosEspecie de salix .Mimbre spp.Ag, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, MTBE, TCE y subproductos; [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Fitocontención. Perclorato (halofitas de humedales)[4]
Disolventes orgánicosespecies de pinoPino spp.Hidrocarburos de petróleo, MTBE, TCE y subproductos. [4] También Cs-137, Sr-90 ( Pinus radiata , Pinus ponderosa ) [6]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos ( P. ponderosa , P. radiata ) [6][4]
Disolventes orgánicosEspecie de salix .Mimbre spp.Ag, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, MTBE, TCE y subproductos; [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Fitocontención. Perclorato (halofitas de humedales)[4]
PCNBCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaDDT, BTEX, dieldrina, endodulfan, PCPFitoestimulación[4]
Ferrocianuro de potasio8,64% a 15,67% de la masa inicialSalix babylonica L.Sauce llorónAg, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos ( Salix spp.); [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción. Perclorato (halofitas de humedales). No hay ferrocianuro en el aire proveniente de la transpiración de la planta. Una gran fracción de la masa inicial se metabolizó durante el transporte dentro de la planta. [9][9]
Ferrocianuro de potasio8,64% a 15,67% de la masa inicialSalix matsudana Koidz , Salix matsudana Koidz x Salix alba L.Sauce Hankow, sauce híbridoAg, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE, TCE y subproductos ( Salix spp.); [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ). [8]No hay ferrocianuro en el aire proveniente de la transpiración de las plantas.[9]
tarjeta de circuito impresoRosa spp.La rosa escarlata de PaulFitodegradación[4]
PCPCrisosporium de faneroquetoHongo de podredumbre blancaDDT, BTEX, Dieldrín, Endodulfan, PentacloronitrobencenoFitoestimulación[4]
ECTClorofito comosumplanta arañaParece reducir las tasas de eliminación de benceno y metano.[24]
TCE y subproductosespecies de pinoPino spp.Hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE. [4] También Cs-137, Sr-90 ( Pinus radiata , Pinus ponderosa ) [6]Fitocontención. Árbol capaz de acumular radionucleidos ( P. ponderosa , P. radiata ) [6][4]
TCE y subproductosEspecie de salix .Mimbre spp.Ag, Cr, Hg, Se, hidrocarburos de petróleo, disolventes orgánicos, MTBE; [4] Cd, Pb, U, Zn ( S. viminalis ); [8] Ferrocianuro de potasio ( S. babylonica L.) [9]Fitoextracción, fitocontención. Perclorato (halofitas de humedales)[4]
Musa (género)árbol de plátanoSistema radicular extradenso, bueno para la rizofiltración. [28]
Papiro cyperusPapiroSistema radicular extradenso, bueno para la rizofiltración [28]
TarosSistema radicular extradenso, bueno para la rizofiltración [28]
Especie de Brugmansia .Trompeta de ángelSemianaeróbico, bueno para rizofiltración.[29]
CaladioCaladioSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]
Caltha palustrisBotón de oroSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]
Pseudacoro del irisBandera amarilla, iris de color amarillo pálidoSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]
Menta acuáticaMenta acuáticaSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]
Scirpus lacustrisEspadañaSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]
Typha latifoliaTotora de hoja anchaSemianaeróbico y resistente, bueno para la rizofiltración [29]

Notas

  • Uranio : El símbolo del uranio a veces se da como Ur en lugar de U. Según Ulrich Schmidt [8] y otros, la concentración de uranio en las plantas aumenta considerablemente con la aplicación de ácido cítrico , que solubiliza el uranio (y otros metales).
  • Radionucleidos : Cs-137 y Sr-90 no se eliminan de los 0,4 metros superiores del suelo incluso con fuertes lluvias, y la tasa de migración desde los primeros centímetros del suelo es lenta. [30]
  • Radionucleidos : Las plantas con asociaciones micorrízicas suelen ser más eficaces que las plantas no micorrízicas en la absorción de radionucleidos. [31]
  • Radionucleidos : En general, los suelos que contienen mayores cantidades de materia orgánica permitirán que las plantas acumulen mayores cantidades de radionucleidos. [30] Véase también la nota sobre Lolium multiflorum en Paasikallio 1984. [21] La absorción por las plantas también aumenta con una mayor capacidad de intercambio catiónico para la disponibilidad de Sr-90 y una menor saturación de bases para la absorción tanto de Sr-90 como de Cs-137. [30]
  • Radionucleidos : la fertilización del suelo con nitrógeno, si es necesario, aumentará indirectamente la absorción de radionucleidos al estimular en general el crecimiento general de la planta y, más específicamente, el crecimiento de las raíces. Pero algunos fertilizantes, como el potasio o el calcio, compiten con los radionucleidos por los sitios de intercambio de cationes y no aumentarán la absorción de radionucleidos. [30]
  • Radionucleidos : Zhu y Smolders, prueba de laboratorio: [32] La absorción de Cs está influenciada principalmente por el suministro de K. La absorción de radiocesio depende principalmente de dos vías de transporte en las membranas celulares de la raíz de la planta: el transportador de K+ y la vía del canal de K+. Es probable que el Cs sea transportado por el sistema de transporte de K+. Cuando la concentración externa de K está limitada a niveles bajos, el transportador de K+ muestra poca discriminación contra Cs+; si el suministro de K es alto, el canal de K+ es dominante y muestra alta discriminación contra Cs+. El cesio es muy móvil dentro de la planta, pero la relación Cs/K no es uniforme dentro de la planta. La fitorremediación como una posible opción para la descontaminación de suelos contaminados con cesio está limitada principalmente por el hecho de que lleva decenas de años y crea grandes volúmenes de desechos.
  • El pennycress alpino o hierba penny alpina se encuentra como pennycrest alpino en (algunos libros).
  • Las referencias hasta el momento proceden en su mayoría de artículos académicos de ensayo, experimentos y, en general, de exploración de ese campo.
  • Radionucleidos : Broadley y Willey [33] encuentran que entre 30 taxones estudiados, las Gramíneas y las Chenopodiaceae muestran la correlación más fuerte entre la concentración de Rb (K) y Cs. Las Chenopodiaceae de rápido crecimiento discriminan aproximadamente 9 veces menos entre Rb y Cs que las Gramíneas de crecimiento lento , y esto se correlaciona con las concentraciones más altas y más bajas alcanzadas respectivamente.
  • Cesio : En la radiactividad derivada de Chernóbil, la cantidad de contaminación depende de la rugosidad de la corteza, de la superficie absoluta de la corteza y de la existencia de hojas durante la deposición. La mayor contaminación de los brotes se debe a la deposición directa sobre los árboles. [18]

Referencias comentadas

  1. ^ abcdefghijklmnopqrstu McCutcheon & Schnoor 2003, Fitorremediación. Nueva Jersey, John Wiley & Sons, pág. 898
  2. ^ abc [1] Shimpei Uraguchi, Izumi Watanabe, Akiko Yoshitomi, Masako Kiyono y Katsuji Kuno, Características de la acumulación y tolerancia al cadmio en nuevos cultivos acumuladores de Cd, Avena strigosa y Crotalaria juncea . Revista de Botánica Experimental 2006 57(12):2955-2965; doi :10.1093/jxb/erl056
  3. ^ Gurta y otros 1994
  4. ^ abcdefghijklmnopqrstu vwxyz aa ab ac ad ae af ag ah ai aj ak al am an ao ap aq ar as en McCutcheon & Schnoor 2003, Fitorremediación. Nueva Jersey, John Wiley & Sons pág. 19
  5. ^ "Análisis de plantas transgénicas de mostaza india para la fitorremediación de relaves mineros contaminados con metales -- Bennett et al. 32 (2): 432 -- Journal of Environmental Quality". Archivado desde el original el 2007-03-10 . Consultado el 2006-10-16 .Lindsay E. Bennetta, Jason L. Burkheada, Kerry L. Halea, Norman Terryb, Marinus Pilona y Elizabeth AH Pilon-Smits, Análisis de plantas transgénicas de mostaza india para la fitorremediación de relaves mineros contaminados con metales . Journal of Environmental Quality 32:432-440 (2003)
  6. ^ abcdefghijklmnopqrstu vwxyz aa ab ac ad ae af ag ah ai aj ak al am an ao ap aq ar as at au av aw ax ay az ba bb bc bd be bf bg bh bi bj [2] Fitorremediación de radionucleidos .
  7. ^ abcd "CSA". Archivado desde el original el 20 de mayo de 2011. Consultado el 16 de octubre de 2006 .JK Lan. Desarrollos recientes de fitorremediación .
  8. ^ abcdefghijklmnopq "Mejora de la fitoextracción: el efecto de la manipulación química del suelo sobre la movilidad, la acumulación en las plantas y la lixiviación de metales pesados ​​-- Schmidt 32 (6): 1939 -- Journal of Environmental Quality". Archivado desde el original el 25 de febrero de 2007. Consultado el 16 de octubre de 2006 ., Mejora de la fitoextracción: el efecto de la manipulación química del suelo sobre la movilidad, la acumulación de plantas y la lixiviación de metales pesados , por Ulrich Schmidt.
  9. ^ abcdefghijk [3] Yu XZ, Zhou PH y Yang YM, El potencial de fitorremediación del complejo de cianuro de hierro por parte de Willows.
  10. ^ abcdefghijk McCutcheon & Schnoor 2003, Fitorremediación. Nueva Jersey, John Wiley & Sons, pág. 891
  11. ^ Srivastav 1994
  12. ^ ab "NRC Research Press". Archivado desde el original el 11 de marzo de 2007. Consultado el 28 de octubre de 2006 .TA Delorme, JV Gagliardi, JS Angle y RL Chaney. Influencia del hiperacumulador de cinc Thlaspi caerulescens J. & C. Presl. y del acumulador de no metales Trifolium pratense L. en las poblaciones microbianas del suelo . Conseil National de Recherches du Canada
  13. ^ ab [4] Majeti Narasimha Vara Prasad, Plantas niquelófilas y su importancia en las fitotecnologías . Braz. J. Plant Physiol. Vol. 17 n.º 1 Londrina enero/marzo de 2005
  14. ^ abc Baker y Brooks, 1989
  15. ^ ab "Fitorremediación de suelos contaminados con metales pesados: hiperacumulación natural versus fitoextracción mejorada químicamente - Lombi et al. 30 (6): 1919 - Journal of Environmental Quality". Archivado desde el original el 11 de marzo de 2007. Consultado el 16 de octubre de 2006 .E. Lombi, FJ Zhao, SJ Dunham y SP McGrath, Fitorremediación de suelos contaminados con metales pesados, hiperacumulación natural versus fitoextracción mejorada químicamente .
  16. ^ abcd Árbol de decisiones de fitorremediación, ITRC
  17. ^ Brown y otros 1995
  18. ^ abcd [5], J. Ertel y H. Ziegler, Contaminación por Cs-134/137 y absorción por las raíces de diferentes árboles forestales antes y después del accidente de Chernóbil , Radiation and Environmental Biophysics, junio de 1991, vol. 30, n.° 2, págs. 147-157
  19. ^ abcdefgh Dushenkov, S., A. Mikheev, A. Prokhnevsky, M. Ruchko y B. Sorochinsky, Fitorremediación de suelo contaminado con radiocesio en las cercanías de Chernóbil, Ucrania. Environmental Science and Technology 1999. 33, no. 3: 469-475. Citado en Fitorremediación de radionucleidos .
  20. ^ abcdef Negri, CM y RR Hinchman, 2000. El uso de plantas para el tratamiento de radionucleidos. Capítulo 8 de Fitorremediación de metales tóxicos: uso de plantas para limpiar el medio ambiente , ed. I. Raskin y BD Ensley. Nueva York: Wiley-Interscience Publication. Citado en Fitorremediación de radionucleidos .
  21. ^ abc A. Paasikallio, El efecto del tiempo en la disponibilidad de estroncio-90 y cesio-137 para las plantas en suelos finlandeses. Annales Agriculturae Fenniae, 1984. 23: 109-120. Citado en Westhoff99.
  22. ^ ab [6] RR Brooks, Captación de cobre y cobalto por especies de Haumaniustrum .
  23. ^ Huang, JW, MJ Blaylock, Y. Kapulnik y BD Ensley, 1998. Fitorremediación de suelos contaminados con uranio: papel de los ácidos orgánicos en el desencadenamiento de la hiperacumulación de uranio en las plantas. Environmental Science and Technology. 32, no. 13: 2004-2008. Citado en Fitorremediación de radionúclidos .
  24. ↑ abcde [7] JJCornejo, FGMuñoz, CYMa y AJStewart, Estudios sobre la descontaminación del aire por plantas .
  25. ^ "Toxicidad del fluoranteno y su biodegradación por el alga Cyclotella caspia -作者: Yu Liu, Tian-Gang Luan, Ning-Ning Lu, Chong-Yu Lan". Archivado desde el original el 27 de septiembre de 2007 . Consultado el 19 de octubre de 2006 .. Yu Liu, Tian-Gang Luan, Ning-Ning Lu, Chong-Yu Lan, Toxicidad del fluoranteno y su biodegradación por el alga Cyclotella caspia . Revista de biología vegetal integradora, febrero. 2006
  26. ^ "Fitorremediación de lodos de petróleo envejecidos: efecto de fertilizantes inorgánicos -- Hutchinson et al. 30 (2): 395 -- Journal of Environmental Quality". Archivado desde el original el 29 de septiembre de 2007. Consultado el 16 de octubre de 2006 .SL Hutchinson, MK Banks y AP Schwab, Fitorremediación de lodos de petróleo envejecidos, efecto de fertilizantes inorgánicos
  27. ^ [8] SD Siciliano, JJ Germida, K. Banks y CW Greer. Cambios en la composición y función de la comunidad microbiana durante un ensayo de campo de fitorremediación con hidrocarburos poliaromáticos . Applied and Environmental Microbiology, enero de 2003, pág. 483-489, vol. 69, n.º 1
  28. ^ abc [9] "Máquinas vivientes". Erik Alm las describe como "fenómenos" debido a su sistema de raíces sobreabundante incluso en entornos tan ricos en nutrientes. Este es un factor primordial en el tratamiento de aguas residuales: más superficie para adsorción/absorción y un filtro más fino para impurezas más grandes.
  29. ^ abcdefg [10], "Máquinas vivientes". Estas plantas de pantano pueden vivir en ambientes semianaeróbicos y se utilizan en estanques de tratamiento de aguas residuales.
  30. ^ abcd [11] JA Entry, NC Vance, MA Hamilton, D. Zabowski, LS Watrud, DC Adriano. Fitorremediación de suelos contaminados con bajas concentraciones de radionucleidos. Contaminación del agua, el aire y el suelo, 1996. 88: 167-176. Citado en Westhoff99.
  31. ^ JA Entry, PT Rygiewicz, WH Emmingham. Absorción de estroncio-90 por plántulas de Pinus ponderosa y Pinus radiata inoculadas con hongos ectomicorrízicos. Environmental Pollution 1994, 86: 201-206. Citado en Westhoff99.
  32. ^ [12] YG. Zhu y E. Smolders, Absorción de radiocesio por las plantas: una revisión de los mecanismos, la regulación y la aplicación. Journal of Experimental Botany, vol. 51, n.º 351, págs. 1635-1645, octubre de 2000
  33. ^ [13] MR Broadley y NJ Willey. Diferencias en la absorción de cesio radicular por 30 taxones de plantas . Environmental Pollution 1997, Volumen 97, Números 1 y 2, Páginas 11 a 15
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