Venopunción

En medicina, la venopunción o venopunción es el proceso de obtener un acceso intravenoso con el fin de tomar muestras de sangre venosa (también llamada flebotomía ) o realizar una terapia intravenosa . En el ámbito sanitario, este procedimiento lo realizan científicos de laboratorio médico , médicos , algunos técnicos en emergencias médicas , paramédicos , flebotomistas , técnicos en diálisis y otro personal de enfermería. ^[1] En medicina veterinaria , el procedimiento lo realizan veterinarios y técnicos veterinarios .

Es esencial seguir un procedimiento estándar para la recolección de muestras de sangre a fin de obtener resultados de laboratorio precisos. Cualquier error en la recolección de sangre o en el llenado de los tubos de ensayo puede dar lugar a resultados de laboratorio erróneos. ^[2]

La venopunción es uno de los procedimientos invasivos que se realizan con mayor frecuencia y se lleva a cabo por cualquiera de cinco razones:

1. para obtener sangre con fines de diagnóstico;
2. para controlar los niveles de componentes sanguíneos; ^[3]
3. administrar tratamientos terapéuticos, incluidos medicamentos, nutrición o quimioterapia;
4. para eliminar sangre debido al exceso de niveles de hierro o eritrocitos ( glóbulos rojos ); o
5. para recolectar sangre para usos posteriores, principalmente transfusión ya sea en el donante o en otra persona .

El análisis de sangre es una herramienta de diagnóstico importante disponible para los médicos en el ámbito de la atención médica.

La sangre se obtiene más comúnmente de las venas superficiales de la extremidad superior. ^[1] La vena cubital media , que se encuentra dentro de la fosa cubital anterior al codo, está cerca de la superficie de la piel sin muchos nervios grandes ubicados cerca. Otras venas que se pueden utilizar en la fosa cubital para la venopunción incluyen las venas cefálica , basílica y antebraquial media . ^[4]

Se pueden extraer pequeñas cantidades de sangre mediante una punción en el dedo y recolectarlas de los bebés mediante una punción en el talón o de las venas del cuero cabelludo con una aguja de infusión con alas .

La flebotomía (incisión en una vena) también es el tratamiento de ciertas enfermedades como la hemocromatosis y la policitemia primaria y secundaria .

Un estudio de 1996 sobre donantes de sangre (en la donación de sangre se utiliza una aguja más grande que en la venopunción de rutina) encontró que 1 de cada 6.300 donantes sufría una lesión nerviosa. ^[5]

Los riesgos y efectos secundarios pueden incluir una variedad de cosas: mareos, sudoración y una caída en la frecuencia cardíaca y la presión arterial. [1] ^[6]

Hay muchas maneras de extraer sangre de una vena y el método utilizado depende de la edad de la persona, el equipo disponible y el tipo de pruebas necesarias.

La mayor parte de la extracción de sangre en los EE. UU., el Reino Unido, Canadá y Hong Kong se realiza con un sistema de tubo de vacío. Dos sistemas comunes son Vacutainer (Becton, Dickinson and Company) y Vacuette (Greiner Bio-One). El equipo consta de un adaptador de plástico, también conocido como tubo o soporte/conector de aguja, una aguja hipodérmica y un tubo de vacío. En determinadas circunstancias, se puede utilizar una jeringa, a menudo con una aguja mariposa , que es un catéter de plástico conectado a una aguja corta. En el mundo en desarrollo, el sistema de tubo de vacío es el método preferido para extraer sangre. ^{[ cita requerida ]}

Greiner Bio-One fabricó el primer tubo de extracción de sangre de plástico al vacío en 1985 bajo la marca VACUETTE. Hoy en día, muchas empresas venden tubos de vacío, ya que la patente de este dispositivo es de dominio público. Estos tubos se fabrican con un volumen específico de gas extraído del tubo sellado. Cuando se inserta una aguja de un dispositivo de transferencia en el tapón, el vacío del tubo aspira automáticamente el volumen de sangre necesario. ^{[ cita requerida ]}

El sistema básico de tubos de vacío (ETS) consta de una aguja, un soporte para tubos y los tubos de vacío. El flebotomista fija la aguja al soporte para tubos antes de la recolección, o puede venir del fabricante como una unidad. La aguja sobresale por el extremo del soporte para tubos y tiene una aguja en cada extremo. Después de limpiar primero el sitio de la venopunción y aplicar un torniquete, el flebotomista destapa la aguja fijada al soporte para tubos, inserta la aguja en la vena y luego desliza los tubos de vacío en el soporte para tubos, donde el extremo posterior de la aguja perfora el tapón del tubo. El vacío en el tubo luego extrae automáticamente la sangre necesaria directamente de la vena. Se pueden conectar y quitar varios tubos de vacío a su vez de una sola aguja, lo que permite obtener múltiples muestras de un solo procedimiento. Esto es posible gracias a la funda para múltiples muestras, que es un accesorio de goma flexible sobre el extremo posterior de la cánula de la aguja que sella la aguja hasta que se empuja hacia afuera. Esto evita que la sangre se drene libremente por la parte posterior de la aguja insertada en la vena, a medida que se extrae cada tubo de ensayo y se clava el siguiente. Las normas de seguridad de la OSHA exigen que las agujas o los soportes de tubos vengan equipados con un dispositivo de seguridad para cubrir la aguja después del procedimiento y así evitar lesiones accidentales por pinchazos de aguja. ^[7]

También se encuentran disponibles accesorios y adaptadores que se utilizan para llenar tubos de vacío a partir de kits de agujas de mariposa y jeringas. ^{[ cita requerida ]}

Hay varios calibres de aguja entre los que puede elegir un flebotomista. Los más utilizados son los siguientes: aguja de 21 g (tapa verde), aguja de 22 g (tapa negra), aguja mariposa de 21 g (etiqueta verde), aguja mariposa de 23 g (etiqueta azul claro) y aguja mariposa de 25 g (etiqueta naranja o azul oscuro) (sin embargo, esta aguja solo se utiliza en pediatría o casos extremos, ya que es tan pequeña que a menudo puede provocar la hemólisis de la muestra de sangre). También hay una variedad de tamaños y volúmenes de tubos y botellas para diferentes requisitos de prueba. ^[8]

Los tubos de ensayo en los que se recoge la sangre pueden contener uno o más de varios aditivos. En general, las pruebas que requieren sangre completa requieren muestras de sangre recogidas en tubos de ensayo que contienen alguna forma del anticoagulante EDTA . El EDTA quela el calcio para evitar la coagulación. El EDTA es preferido para las pruebas de hematología porque causa un daño mínimo a la morfología celular. El citrato de sodio es el anticoagulante utilizado en las muestras recogidas para las pruebas de coagulación. La mayoría de las pruebas químicas e inmunológicas se realizan en suero, que se produce coagulando y luego separando la muestra de sangre mediante centrifugación. Estas muestras se recogen en un tubo sin aditivos o en uno que contiene un activador de coagulación . Este activador de coagulación puede interferir con algunos ensayos , por lo que se recomienda un tubo simple en estos casos, pero retrasará la prueba. Los tubos que contienen heparina de litio o heparina de sodio también se utilizan comúnmente para una variedad de pruebas químicas, ya que no requieren coagulación y se pueden centrifugar inmediatamente después de la recolección. Para las pruebas de glucosa se utiliza una combinación de fluoruro de sodio y oxalato de potasio, ya que estos aditivos previenen la coagulación y detienen la glicólisis, de modo que los niveles de glucosa en sangre se conservan después de la recolección. ^[9] Otro tubo especial es un tubo de color ámbar opaco que se utiliza para recolectar sangre para analitos sensibles a la luz, como la bilirrubina . ^{[ cita requerida ]}

Los tubos de ensayo están etiquetados con el aditivo que contienen, pero el tapón de cada tubo también está codificado por colores según el aditivo. Si bien los colores varían entre los fabricantes, los colores del tapón generalmente están asociados con cada aditivo, como se detalla a continuación. Debido a que los aditivos de cada tubo pueden dejarse en la aguja que se utiliza para llenar los tubos, deben extraerse en un orden específico para garantizar que la contaminación cruzada no afecte negativamente la prueba de las muestras si se extraen varios tubos a la vez. El "orden de extracción" varía según el método de recolección. A continuación, en el orden de extracción que generalmente se requiere para el método de recolección del Sistema de Tubos de Evacuación (ETS), se encuentran los tubos más comunes, que enumeran el aditivo y el color: ^{[10] [11]}

El uso de ionoforesis con lidocaína es eficaz para reducir el dolor y aliviar la angustia durante la venopunción en niños. ^[19] Se ha demostrado que un sistema de administración de lidocaína en polvo sin agujas disminuye el dolor de la venopunción en niños. ^{[20] [21]} Se puede lograr una anestesia dérmica rápida mediante la infiltración de anestésico local, pero puede provocar ansiedad en los niños asustados por las agujas o distorsionar la piel, dificultando el acceso vascular y aumentando el riesgo de exposición a las agujas para los trabajadores de la salud. La anestesia dérmica también se puede lograr sin agujas mediante la aplicación tópica de anestésicos locales o mediante ionoforesis con lidocaína. Por el contrario, la anestesia dérmica no invasiva se puede establecer en 5 a 15 minutos sin distorsionar los tejidos subyacentes mediante ionoforesis con lidocaína, donde una corriente eléctrica directa facilita la penetración dérmica de moléculas de lidocaína cargadas positivamente cuando se colocan debajo del electrodo positivo. ^{[ cita requerida ]}

Un estudio concluyó que la administración ionoforética de lidocaína era segura y eficaz para proporcionar anestesia dérmica para venopunción en niños de 6 a 17 años de edad. Esta técnica puede no ser aplicable a todos los niños. Estudios futuros pueden proporcionar información sobre la dosis ionoforética mínima efectiva para la anestesia dérmica en niños y la comparación de la eficacia anestésica y la satisfacción de la ionoforesis de lidocaína con cremas anestésicas tópicas e infiltración subcutánea. ^[19]

Los tratamientos no farmacológicos para el dolor asociado con la venopunción en niños incluyen la hipnosis y la distracción. Estos tratamientos redujeron el dolor informado por los propios pacientes y, cuando se combinaron con la terapia cognitivo-conductual (TCC), la reducción del dolor fue aún mayor. No se ha demostrado que otras intervenciones sean eficaces, como la sugestión, la exhalación de aire y la distracción con orientación de los padres, que no difirieron del control en cuanto al dolor y la angustia. ^[22]

Algunos profesionales de la salud prefieren utilizar una técnica de jeringa -aguja para la venopunción. Sarstedt fabrica un sistema de extracción de sangre (S-Monovette) que utiliza este principio. ^[23] Este método puede ser preferible en ancianos, personas con cáncer, quemaduras graves, obesidad o en casos en que las venas no son confiables o frágiles. Debido a que las jeringas se operan manualmente, la cantidad de succión aplicada puede controlarse fácilmente. Esto es particularmente útil cuando las venas son pequeñas y pueden colapsar bajo la succión de un tubo de vacío. En niños u otras circunstancias en las que la cantidad de sangre obtenida puede ser limitada, puede ser útil saber cuánta sangre se puede obtener antes de distribuirla entre los diversos aditivos que requerirá el laboratorio. Otra alternativa es extraer sangre de cánulas permanentes. ^[24]

Hay ocasiones en las que se requiere la recolección de un hemocultivo. El cultivo determinará si hay patógenos en la sangre. Normalmente, la sangre es estéril. Al extraer sangre de los cultivos, utilice una solución estéril como Betadine en lugar de alcohol . Esto se hace utilizando guantes estériles, sin limpiar la solución quirúrgica, tocar el sitio de punción o comprometer de alguna manera el proceso estéril. Es vital que el procedimiento se realice de la manera más estéril posible, ya que la presencia persistente de comensales de la piel en los hemocultivos podría indicar endocarditis , pero se encuentran con mayor frecuencia como contaminantes. Se recomienda utilizar un método abrasivo de preparación de la piel. Esto elimina las capas superiores de células cutáneas muertas junto con sus bacterias contaminantes. ^[25] Tradicionalmente se ha utilizado povidona yodada, pero en el Reino Unido se prefiere una solución de clorhexidina al 2% en etanol al 70% o alcohol isopropílico y se debe dejar que se seque. Las tapas de los recipientes utilizados para extraer un hemocultivo también deben desinfectarse con una solución similar. Algunos laboratorios desaconsejan activamente el uso de yodo cuando se piensa que éste degrada el tapón de goma por el que la sangre entra en la botella, permitiendo así que entren contaminantes al recipiente. ^{[ cita requerida ]}

La sangre se recoge en frascos de transporte especiales, que son como tubos de vacío pero con una forma diferente. El frasco de hemocultivo contiene un medio de transporte para preservar los microorganismos presentes mientras se transportan al laboratorio para los cultivos. Como se desconoce si los patógenos son anaeróbicos (que viven sin oxígeno) o aeróbicos (que viven con oxígeno), se recoge sangre para analizarlos en busca de ambos. Primero se llena el frasco aeróbico y luego el frasco anaeróbico. Sin embargo, si la recolección se realiza con una jeringa, primero se llena el frasco anaeróbico. Si se utiliza un kit de recolección tipo mariposa, primero se llena el frasco aeróbico, de modo que el aire que haya en el tubo se libere en el frasco que contiene oxígeno. ^{[ cita requerida ]}

Los frascos de recolección de hemocultivos especialmente diseñados eliminan la necesidad de utilizar el método de recolección con jeringa o mariposa. Estos frascos especialmente diseñados tienen cuellos largos que encajan en los soportes de tubos de vacío que se utilizan para la recolección por venopunción regular. Estos frascos también permiten la recolección de otras muestras de sangre a través de tubos de vacío, que se pueden recolectar sin necesidad de una venopunción adicional. ^{[ cita requerida ]}

La cantidad de sangre que se recolecta es fundamental para la recuperación óptima de microorganismos. Lo habitual es recolectar hasta 10 ml de sangre, pero puede variar según las recomendaciones del fabricante del frasco de recolección. La recolección de sangre en bebés y niños es de 1 a 5 ml. Si se recolecta muy poca sangre, la proporción de sangre y caldo nutritivo inhibirá el crecimiento de microorganismos. Si se recolecta demasiada sangre, existe el riesgo de una anemia inducida por el hospital y la proporción de sangre y caldo nutritivo se inclinará en la dirección opuesta, lo que tampoco favorece un crecimiento óptimo. ^{[ cita requerida ]}

Los frascos se incuban en unidades especializadas durante 24 horas antes de que un técnico de laboratorio los estudie o analice. Este paso permite que una cantidad muy pequeña de bacterias (posiblemente 1 o 2 organismos) se multiplique hasta un nivel que es suficiente para la identificación +/- prueba de resistencia a los antibióticos. Los frascos de hemocultivo modernos tienen un indicador en la base que cambia de color en presencia de crecimiento bacteriano y puede leerse automáticamente por una máquina. (Por este motivo, las etiquetas con códigos de barras que se encuentran en estos frascos no deben quitarse, ya que son utilizadas por los sistemas automatizados del laboratorio). ^{[ cita requerida ]}

Las muestras de sangre de animales de laboratorio vivos se pueden recolectar utilizando los siguientes métodos: ^{[26] [27]}

• Extracción de sangre que no requiere anestesia:
  • Vena safena (rata, ratón, cobaya)
  • Vena pedal dorsal (rata, ratón)
• Extracción de sangre que requiere anestesia (anestesia local/general):
  • Vena de la cola (rata, ratón)
  • Corte de cola (ratones)
  • Seno orbitario (rata, ratón)
  • Vena yugular (rata, ratón)
  • Cánula temporal (rata, ratón)
  • Canulación de vasos sanguíneos (conejillo de indias, hurón)
  • Vena tarsal (conejillo de indias)
  • Vena o arteria marginal de la oreja (conejo)
• Procedimiento terminal:
  • Punción cardíaca (rata, ratón, cobaya, conejo, hurón)
  • Seno orbitario (rata, ratón)
  • Vena cava posterior (rata, ratón)

El volumen de la muestra de sangre es muy importante en los animales de experimentación. Toda recolección de sangre no terminal sin reposición de líquidos está limitada hasta el 10% del volumen total de sangre circulante en animales adultos sanos y normales en una sola ocasión y la recolección puede repetirse después de tres a cuatro semanas. En caso de que se requieran muestras de sangre repetidas a intervalos cortos, se puede extraer un máximo de 0,6 ml/kg/día o el 1,0% del volumen total de sangre de un animal cada 24 horas. El volumen de sangre estimado en animales adultos es de 55 a 70 ml/kg de peso corporal. Se debe tener cuidado con los animales mayores y obesos. Si el volumen de sangre recolectada excede más del 10% del volumen total de sangre, puede ser necesaria la reposición de líquidos. La solución de Ringer lactato (LRS) es recomendada como la mejor reposición de líquidos por los Institutos Nacionales de Salud (NIH). Si el volumen de sangre recolectada excede más del 30% del volumen total de sangre circulante, se debe tener el cuidado adecuado para que el animal no desarrolle hipovolemia. ^[27]

En general, no es recomendable utilizar alcohol isopropílico para limpiar el sitio de punción venosa cuando se obtiene una muestra para una prueba de alcoholemia . Esto se ha relacionado en gran medida con las posibles implicaciones legales asociadas con el uso de limpiadores a base de alcohol que teóricamente podrían afectar el análisis. Se han comercializado numerosos kits de recolección de alcohol de la policía que incorporan un conservante de fluoruro de sodio/oxalato de potasio y agentes de limpieza sin alcohol para garantizar una recolección adecuada. El uso de agua caliente y jabón o un hisopo con povidona yodada son alternativas recomendables al alcohol isopropílico en este caso. ^{[ cita requerida ]}

• La sangre arterial se extrae de una arteria en lugar de una vena.