Puertas (electrofisiología)

Una representación animada de la estructura molecular de un canal iónico simple.

En electrofisiología , el término "gating" se refiere a la apertura ( activación ) o cierre (por desactivación o inactivación) de los canales iónicos . [1] Este cambio en la conformación es una respuesta a los cambios en el voltaje transmembrana. [2]

Cuando los canales iónicos están en un estado "cerrado" (no conductor), son impermeables a los iones y no conducen corriente eléctrica. Cuando los canales iónicos están en su estado abierto, conducen la corriente eléctrica al permitir que tipos específicos de iones pasen a través de ellos y, por lo tanto, a través de la membrana plasmática de la célula . La activación es el proceso por el cual un canal iónico pasa de su estado abierto a su estado cerrado. [3]

Una variedad de cambios celulares pueden desencadenar la activación, dependiendo del canal iónico, incluidos los cambios en el voltaje a través de la membrana celular ( canales iónicos activados por voltaje ), las sustancias químicas que interactúan con el canal iónico ( canales iónicos activados por ligando ), los cambios de temperatura, [4] el estiramiento o la deformación de la membrana celular, la adición de un grupo fosfato al canal iónico ( fosforilación ) y la interacción con otras moléculas en la célula (por ejemplo, proteínas G ). [5] La velocidad a la que ocurre cualquiera de estos procesos de activación en respuesta a estos desencadenantes se conoce como cinética de activación. Algunos fármacos y muchas toxinas de los canales iónicos actúan como "modificadores de la activación" de los canales iónicos activados por voltaje al cambiar la cinética de la activación. [6]

Los canales iónicos dependientes del voltaje del potencial de acción se describen a menudo como que tienen cuatro procesos de activación: activación, desactivación, inactivación y reactivación (también llamado "recuperación de la inactivación"). La activación es el proceso de apertura de la compuerta de activación, que ocurre en respuesta a que el voltaje dentro de la membrana celular (el potencial de membrana ) se vuelve más positivo con respecto al exterior de la célula ( despolarización ), y la "desactivación" es el proceso opuesto al cierre de la compuerta de activación en respuesta a que el interior de la membrana se vuelve más negativo (repolarización). La "inactivación" es el cierre de la compuerta de inactivación y ocurre en respuesta a que el voltaje dentro de la membrana se vuelve más positivo, pero más lentamente que la activación. La "reactivación" es lo opuesto a la inactivación y es el proceso de reapertura de la compuerta de inactivación. [7]

Estos cambios de función dependientes del voltaje son críticos para una gran cantidad de procesos en células excitables y no excitables. [2]

Activación

Canales iónicos dependientes del voltaje

Canal iónico dependiente del voltaje. Cuando la membrana se polariza, el dominio de detección de voltaje del canal se desplaza y abre el canal al flujo de iones (los iones se representan con círculos amarillos).

Los canales iónicos dependientes de voltaje se abren y se cierran en respuesta al potencial eléctrico a través de la membrana celular. Porciones del dominio del canal actúan como sensores de voltaje. A medida que cambia el potencial de membrana, esto da como resultado cambios en las fuerzas electrostáticas , moviendo estos dominios de detección de voltaje. Esto cambia la conformación de otros elementos del canal a la posición abierta o cerrada. [8] Cuando se mueven de la posición cerrada a la posición abierta, esto se llama "activación". Los canales iónicos dependientes de voltaje subyacen a muchos de los comportamientos eléctricos de la célula, incluidos los potenciales de acción, los potenciales de membrana en reposo y la transmisión sináptica. [9]

Los canales iónicos regulados por voltaje suelen ser específicos de iones como Na + , K + , Ca2 + y Cl− . Cada uno de estos iones desempeña un papel importante en el comportamiento eléctrico de la célula. [9] Las compuertas también tienen propiedades únicas con importantes implicaciones fisiológicas. Por ejemplo, los canales de Na + se abren y cierran rápidamente, mientras que las compuertas de K + se abren y cierran mucho más lentamente. La diferencia de velocidad entre estos canales subyace a las fases de despolarización y repolarización del potencial de acción. [10]

N / A+Canales

Los canales de sodio (Na + ) dependientes del voltaje son importantes para la propagación de potenciales de acción en neuronas y otras células excitables, y se utilizan principalmente para la propagación de potenciales de acción en axones, fibras musculares y el compartimento somatodendrítico neuronal. [11] Los canales de sodio (Na + ) son algunos de los principales canales iónicos responsables de los potenciales de acción. [9] Al ser complejos, están formados por subunidades α más grandes que luego se emparejan con dos subunidades β más pequeñas. [11] Contienen segmentos transmembrana conocidos como S1-6. Los segmentos S4 cargados son los sensores de voltaje de los canales. Cuando se exponen a una determinada diferencia de potencial mínima, los segmentos S4 se mueven a través de la membrana. [12] Esto provoca el movimiento del conector S4-S5, lo que hace que el conector S5-S6 se tuerza y ​​abra el canal. [13]

K+Canales

Los canales de potasio (K + ) desempeñan un papel importante en el establecimiento del potencial de membrana en reposo. [9] Cuando la membrana celular se despolariza, la parte intracelular del canal se carga positivamente, lo que hace que la configuración abierta del canal se convierta en un estado más estable que la configuración cerrada. Existen algunos modelos de activación del canal de potasio:

  • El modelo de hélice deslizante postula que el canal de potasio se abre debido a un movimiento de giro de su hélice S4.
  • El modelo de paleta postula que las hélices S3 y S4 del canal forman "paletas" que se mueven a través de la membrana despolarizada y alejan la hélice S5 de la abertura del canal.
  • El modelo de transporte postula que un campo eléctrico enfocado hace que las partículas cargadas se muevan a través del canal con solo un pequeño movimiento de la hélice S4.
  • El modelo de movimiento coordinado de hélices postula que las hélices S4 y S5 giran y el conector S4-S5 hace que la hélice S6 se mueva, abriendo el canal.
  • El modelo de consenso es un promedio de los modelos anteriores que ayuda a conciliarlos con los datos experimentales. [14]

California2+Canales

Los canales de calcio (Ca 2+ ) regulan la liberación de neurotransmisores en las sinapsis, controlan la forma de los potenciales de acción generados por los canales de sodio y, en algunas neuronas, generan potenciales de acción. [9] Los canales de calcio constan de seis hélices transmembrana. S4 actúa como sensor de voltaje al rotar cuando se expone a ciertos potenciales de membrana, abriendo así el canal. [15]

La liberación de calcio provoca una fuerte atracción entre múltiples proteínas, incluidas las proteínas sinaptobrevina y SNARE, para atraer la vesícula del neurotransmisor hacia la membrana y liberar su contenido en la hendidura sináptica.

Los neurotransmisores se almacenan y sintetizan inicialmente en vesículas en la sinapsis de una neurona. Cuando se produce un potencial de acción en una célula, la señal eléctrica llega a la terminal presináptica y la despolarización hace que se abran los canales de calcio, liberando calcio para que viaje a través de su gradiente electroquímico. Esta afluencia de calcio es posteriormente lo que hace que las vesículas de neurotransmisores se fusionen con la membrana presináptica. [16] Los iones de calcio inician la interacción de las proteínas cofactoras obligatorias con las proteínas SNARE para formar un complejo SNARE. [16] Estos complejos SNARE median la fusión de vesículas al juntar las membranas, filtrando los neurotransmisores hacia la hendidura sináptica. Las moléculas de neurotransmisores pueden entonces enviar señales a la siguiente célula a través de receptores en la membrana postsináptica. Estos receptores pueden actuar como canales iónicos o GPCR (receptores acoplados a proteína G). [17] En general, el neurotransmisor puede provocar una respuesta excitatoria o inhibidora, dependiendo de lo que ocurra en el receptor.

ClCanales

Los canales de cloruro son otro grupo de canales iónicos regulados por voltaje, de los cuales se comprenden menos. Están involucrados en procesos como el músculo liso esquelético y cardíaco, la regulación del volumen celular, el ciclo celular y la apoptosis. [18] Una familia importante de proteínas de cloruro se denominan proteínas CLC, que funcionalmente se clasifican en canal o transportador. [19] Comparten una estructura homodímera con una vía de permeación iónica independiente en cada una de las subunidades. [20] Según la caracterización funcional, existen dos mecanismos de regulación conocidos: regulación del protoporo y regulación común. La regulación del protoporo, también conocida como regulación rápida, está asociada con la oclusión del poro a través de una cadena lateral de glutamato conservado. Mientras que la regulación común, también conocida como regulación lenta, inactiva o reactiva ambos poros a través de un mecanismo desconocido. [21] Esta familia transporta dos cloruros por un protón o simplemente permite el flujo a lo largo de su gradiente electroquímico. [22] Con este canal, la despolarización y repolarización correctas a través de iones de cloruro es esencial para la propagación de un potencial de acción. [18]

Canales iónicos controlados por ligando

Los canales iónicos regulados por ligando se encuentran en las neuronas postsinápticas. Por defecto, adoptan su conformación cerrada. Cuando la neurona presináptica libera neurotransmisores al final de un potencial de acción, estos se unen a los canales iónicos regulados por ligando. Esto hace que los canales adopten su conformación abierta, lo que permite que los iones fluyan a través de ellos en función de su gradiente de concentración. Los canales iónicos regulados por ligando son responsables de la transmisión sináptica rápida en el sistema nervioso y en la unión neuromuscular. [23] Cada canal iónico regulado por ligando tiene una amplia gama de receptores con diferentes propiedades biofísicas, así como patrones de expresión en el sistema nervioso. [24]

Inactivación

La inactivación se produce cuando el flujo de iones se bloquea por un mecanismo distinto al cierre del canal. [8] Un canal en su estado abierto puede dejar de permitir el flujo de iones, o un canal en su estado cerrado puede inactivarse preventivamente para evitar el flujo de iones. [25] La inactivación ocurre típicamente cuando la membrana celular se despolariza y finaliza cuando se restablece el potencial de reposo . [8]

En los canales de sodio, la inactivación parece ser el resultado de las acciones de las hélices III-VI, donde la III y la IV actúan como una especie de tapa articulada que bloquea el canal. El mecanismo exacto no se conoce bien, pero parece depender de una partícula que tiene una alta afinidad por el interior expuesto del canal abierto. [26] La inactivación rápida permite que el canal detenga el flujo de sodio muy poco después de asumir su conformación abierta. [27]

Inactivación de bola y cadena

Canal iónico dependiente de voltaje en sus estados cerrado, abierto e inactivado. El canal inactivado todavía está en su estado abierto, pero el dominio en forma de bola bloquea la permeación de iones.

El modelo de bola y cadena , también conocido como inactivación de tipo N o inactivación de tapa articulada, es un mecanismo de activación de algunos canales iónicos activados por voltaje. Los canales iónicos activados por voltaje están compuestos por 4 [ dudosodiscutir ] subunidades α, una o más de las cuales tendrán un dominio de bola ubicado en su extremo N citoplasmático . [28] El dominio de bola es atraído electrostáticamente al dominio del canal interno. Cuando se activa el canal iónico, el dominio del canal interno queda expuesto y, en milisegundos, la cadena se doblará y la bola ingresará al canal, ocluyendo la permeación iónica. [29] El canal regresa a su estado cerrado, bloqueando el dominio del canal, y la bola sale del poro. [30]

Desactivación

A medida que el potencial de membrana vuelve a su valor de reposo, el diferencial de voltaje no es suficiente para mantener el canal en su estado abierto, lo que provoca que el canal se cierre.

La desactivación es el retorno de un canal iónico a su conformación cerrada. En el caso de los canales regulados por voltaje, esto ocurre cuando el diferencial de voltaje que originalmente provocó la apertura del canal vuelve a su valor de reposo. [31]

En los canales de sodio dependientes de voltaje, la desactivación es necesaria para recuperarse de la inactivación. [26]

En los canales de potasio dependientes del voltaje, ocurre lo contrario y la desactivación ralentiza la recuperación del canal tras su activación. [32] La conformación cerrada se asume por defecto e implica el enderezamiento parcial de la hélice VI por el enlace IV-V. Los mecanismos que provocan la apertura y el cierre no se comprenden por completo. La conformación cerrada parece ser una conformación de mayor energía que la conformación abierta, lo que también puede ayudar a explicar cómo se activa el canal iónico. [33]

Cuantificación

La carga de activación se puede calcular resolviendo la ecuación de Poisson . Estudios recientes han sugerido un método basado en simulación de dinámica molecular para determinar la carga de activación midiendo las propiedades de los condensadores eléctricos de las proteínas embebidas en la membrana. [2] La actividad de los canales iónicos ubicados en la membrana plasmática se puede medir simplemente uniendo un electrodo capilar de vidrio de manera continua con la membrana. [34] Otros canales iónicos ubicados en las membranas de las mitocondrias, los lisosomas y el aparato de Golgi se pueden medir mediante una técnica emergente que implica el uso de una membrana lipídica bicapa artificial unida a un dispositivo de 16 electrodos que mide la actividad eléctrica. [34]

Véase también

Referencias

  1. ^ Alberts, Bruce; Bray, Dennis; Lewis, Julian; Raff, Martin; Roberts, Keith; Watson, James D. (1994). Biología molecular de la célula . Nueva York: Garland. págs. 523–547. ISBN 978-0-8153-1620-6.
  2. ^ abc Machtens, Jan-Philipp; Briones, Rodolfo; Alleva, Claudia; de Groot, Bert L.; Fahlke, Christoph (11 de abril de 2017). "Cálculos de carga de compuerta mediante simulaciones de electrofisiología computacional". Revista biofísica . 112 (7): 1396–1405. Bibcode :2017BpJ...112.1396M. doi :10.1016/j.bpj.2017.02.016. ISSN  0006-3495. PMC 5389965 . PMID  28402882. 
  3. ^ Goychuk, Igor; Hänggi, Peter (19 de marzo de 2002). "Control de canales iónicos: un análisis del tiempo de primer paso del tipo Kramers". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 99 (6): 3552–3556. arXiv : physics/0111187 . Bibcode :2002PNAS...99.3552G. doi : 10.1073/pnas.052015699 . ISSN  0027-8424. PMC 122561 . PMID  11891285. 
  4. ^ Cesare P, Moriondo A, Vellani V, McNaughton PA (julio de 1999). "Canales iónicos controlados por calor". Proc. Natl. Sci. USA . 96 (14): 7658–63. Bibcode :1999PNAS...96.7658C. doi : 10.1073/pnas.96.14.7658 . PMC 33597 . PMID  10393876. 
  5. ^ Hille, Bertil (2001). Canales iónicos de membranas excitables . Sunderland, Mass.: Sinauer. ISBN 978-0-87893-321-1.
  6. ^ Waszkielewicz, AM; Gunia, A; Szkaradek, N; Słoczyńska, K; Krupinska, S; Marona, H (abril de 2013). "Canales iónicos como objetivos farmacológicos en los trastornos del sistema nervioso central". Química Medicinal Actual . 20 (10): 1241-1285. doi :10.2174/0929867311320100005. ISSN  0929-8673. PMC 3706965 . PMID  23409712. 
  7. ^ Ahern, Christopher A.; Payandeh, Jian; Bosmans, Frank; Chanda, Baron (enero de 2016). "La guía del autoestopista para la galaxia de canales de sodio dependientes del voltaje". Revista de fisiología general . 147 (1): 1–24. doi :10.1085/jgp.201511492. ISSN  0022-1295. PMC 4692491 . PMID  26712848. 
  8. ^ abc Bähring, Robert; Covarrubias, Manuel (1 de febrero de 2011). "Mecanismos de inactivación en estado cerrado en canales iónicos dependientes del voltaje". Revista de fisiología . 589 (parte 3): 461–479. doi :10.1113/jphysiol.2010.191965. ISSN  0022-3751. PMC 3055536. PMID 21098008  . 
  9. ^ abcde Purves, Dale; Augustine, George J.; Fitzpatrick, David; Katz, Lawrence C.; LaMantia, Anthony-Samuel; McNamara, James O.; Williams, S. Mark (2001). "Canales iónicos dependientes del voltaje". Neurociencia. 2.ª edición .
  10. ^ Grider, Michael H.; Glaubensklee, Carolyn S. (2019), "Fisiología, potencial de acción", StatPearls , StatPearls Publishing, PMID  30844170 , consultado el 29 de octubre de 2019
  11. ^ ab Mantegazza, Massimo; Catterall, William A. (2012), Noebels, Jeffrey L.; Avoli, Massimo; Rogawski, Michael A.; Olsen, Richard W. (eds.), "Canales de Na+ dependientes del voltaje: estructura, función y fisiopatología", Jasper's Basic Mechanisms of the Epilepsies (4.ª ed.), National Center for Biotechnology Information (EE. UU.), PMID  22787615 , consultado el 3 de noviembre de 2019
  12. ^ Sula, Altin; Booker, Jennifer; Ng, Leo CT; Naylor, Claire E.; DeCaen, Paul G.; Wallace, BA (16 de febrero de 2017). "La estructura completa de un canal de sodio abierto activado". Nature Communications . 8 (1): 14205. Bibcode :2017NatCo...814205S. doi :10.1038/ncomms14205. ISSN  2041-1723. PMC 5316852 . PMID  28205548. 
  13. ^ Catterall, William A. (14 de noviembre de 2013). "Estructura y función de los canales de sodio dependientes del voltaje con resolución atómica". Fisiología experimental . 99 (1): 35–51. doi :10.1113/expphysiol.2013.071969. ISSN  0958-0670. PMC 3885250 . PMID  24097157. 
  14. ^ Grizel, AV; Glújov, GS; Sokolova, OS (octubre-diciembre de 2014). "Mecanismos de activación de canales de potasio dependientes de voltaje". Acta Naturae . 6 (4): 10–26. doi :10.32607/20758251-2014-6-4-10-26. PMC 4273088 . PMID  25558391. 
  15. ^ Catterall, William A. (agosto de 2011). "Canales de calcio dependientes del voltaje". Cold Spring Harbor Perspectives in Biology . 3 (8): a003947. doi :10.1101/cshperspect.a003947. ISSN  1943-0264. PMC 3140680 . PMID  21746798. 
  16. ^ ab Südhof, Thomas C. (enero de 2012). "Control de calcio de la liberación de neurotransmisores". Cold Spring Harbor Perspectives in Biology . 4 (1): a011353. doi :10.1101/cshperspect.a011353. ISSN  1943-0264. PMC 3249630 . PMID  22068972. 
  17. ^ Yoon, Tae-Young; Lu, Xiaobing; Diao, Jiajie; Lee, Soo-Min; Ha, Taekjip; Shin, Yeon-Kyun (junio de 2008). "La complexina y el Ca 2+ estimulan la fusión de membranas mediada por SNARE". Nature Structural & Molecular Biology . 15 (7): 707–713. doi :10.1038/nsmb.1446. ISSN  1545-9985. PMC 2493294 . PMID  18552825. 
  18. ^ ab "Canales de cloruro". British Journal of Pharmacology . 158 (Suppl 1): S130–S134. Noviembre de 2009. doi :10.1111/j.1476-5381.2009.00503_6.x (inactivo 2024-07-16). ISSN  0007-1188. PMC 2884561 . {{cite journal}}: CS1 maint: DOI inactivo a partir de julio de 2024 ( enlace )
  19. ^ Kwon, Hwoi Chan; Fairclough, Robert H.; Chen, Tsung-Yu (2022), "Perspectivas biofísicas y farmacológicas de los canales de cloruro de CLC", Canales aniónicos y transportadores , Manual de farmacología experimental, vol. 283, Berlín, Heidelberg: Springer, págs. 1–34, doi :10.1007/164_2022_594, ISBN 978-3-031-51345-9, PMID  35768555 , consultado el 27 de abril de 2023
  20. ^ Park, Eunyong; MacKinnon, Roderick (29 de mayo de 2018). Csanády, László (ed.). "Estructura del canal de cloruro CLC-1 del Homo sapiens". eLife . 7 : e36629. doi : 10.7554/eLife.36629 . ISSN  2050-084X. PMC 6019066 . PMID  29809153. 
  21. ^ Jentsch, Thomas J.; Pusch, Michael (1 de julio de 2018). "Canales y transportadores de cloruro de CLC: estructura, función, fisiología y enfermedad". Physiological Reviews . 98 (3): 1493–1590. doi : 10.1152/physrev.00047.2017 . ISSN  0031-9333. PMID  29845874. S2CID  44165561.
  22. ^ Accardi, Alessio; Picollo, Alessandra (agosto de 2010). "Canales y transportadores CLC: proteínas con personalidades limítrofes". Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranas . 1798 (8): 1457–1464. doi :10.1016/j.bbamem.2010.02.022. ISSN  0006-3002. PMC 2885512 . PMID  20188062. 
  23. ^ Alexander, SPH; Mathie, A; Peters, JA (noviembre de 2011). "Canales iónicos regulados por ligando". British Journal of Pharmacology . 164 (Supl. 1): S115–S135. doi :10.1111/j.1476-5381.2011.01649_4.x. ISSN  0007-1188. PMC 3315629 . 
  24. ^ Alexander, SPH; Mathie, A; Peters, JA (2011). "Canales iónicos regulados por ligando". Br J Pharmacol . 164 (Supl 1): S115–S135. doi :10.1111/j.1476-5381.2011.01649_4.x. PMC 3315629 . 
  25. ^ Armstrong, Clay M. (21 de noviembre de 2006). "Inactivación del canal de Na desde estados abiertos y cerrados". Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 103 (47): 17991–17996. Bibcode :2006PNAS..10317991A. doi : 10.1073/pnas.0607603103 . ISSN  0027-8424. PMC 1693860 . PMID  17101981. 
  26. ^ ab Kuo, Chung-Chin; Bean, Bruce P. (1994-04-01). "Los canales de Na+ deben desactivarse para recuperarse de la inactivación". Neuron . 12 (4): 819–829. doi :10.1016/0896-6273(94)90335-2. ISSN  0896-6273. PMID  8161454. S2CID  41285799.
  27. ^ Yu, Frank H; Catterall, William A (2003). "Descripción general de la familia de canales de sodio dependientes de voltaje". Genome Biology . 4 (3): 207. doi : 10.1186/gb-2003-4-3-207 . ISSN  1465-6906. PMC 153452 . PMID  12620097. 
  28. ^ Yang, Kefan; Coburger, Ina; Langner, Johanna M.; Peter, Nicole; Hoshi, Toshinori; Schönherr, Roland; Heinemann, Stefan H. (2019). "Modulación de la inactivación de tipo N del canal K+ por sulfhidratación a través de sulfuro de hidrógeno y polisulfuros". Pflügers Archiv - Revista Europea de Fisiología . 471 (4): 557–571. doi :10.1007/s00424-018-2233-x. PMC 7086210 . PMID  30415410 . Consultado el 22 de noviembre de 2018 . 
  29. ^ Holmgren, M.; Jurman, ME; Yellen, G. (septiembre de 1996). "Inactivación de tipo N y la región S4-S5 del canal Shaker K+". The Journal of General Physiology . 108 (3): 195–206. doi :10.1085/jgp.108.3.195. ISSN  0022-1295. PMC 2229322 . PMID  8882863. 
  30. ^ Bénitah, JP; Chen, Z.; Balser, JR; Tomaselli, GF; Marbán, E. (1999-03-01). "La dinámica molecular del poro del canal de sodio varía con la activación: interacciones entre los movimientos del segmento P y la inactivación". The Journal of Neuroscience . 19 (5): 1577–1585. doi :10.1523/JNEUROSCI.19-05-01577.1999. ISSN  0270-6474. PMC 6782169 . PMID  10024345. 
  31. ^ Bähring, Robert; Covarrubias, Manuel (28 de enero de 2011). "Mecanismos de inactivación en estado cerrado en canales iónicos dependientes del voltaje". Revista de fisiología . 589 (3): 461–479. doi :10.1113/jphysiol.2010.191965. ISSN  0022-3751. PMC 3055536 . PMID  21098008. 
  32. ^ Kuo, Chung-Chin (15 de mayo de 1997). "La desactivación retarda la recuperación de la inactivación en los canales de K+ Shaker". The Journal of Neuroscience . 17 (10): 3436–3444. doi :10.1523/JNEUROSCI.17-10-03436.1997. ISSN  0270-6474. PMC 6573675 . PMID  9133369. 
  33. ^ Fowler, Philip W.; Sansom, Mark SP (21 de mayo de 2013). "El poro de los canales de iones de potasio dependientes del voltaje se tensa cuando está cerrado". Nature Communications . 4 (1): 1872. Bibcode :2013NatCo...4.1872F. doi :10.1038/ncomms2858. ISSN  2041-1723. PMC 3674235 . PMID  23695666. 
  34. ^ ab Kamiya, Koki; Osaki, Toshihisa; Nakao, Kenji; Kawano, Ryuji; Fujii, Satoshi; Misawa, Nobuo; Hayakawa, Masatoshi; Takeuchi, Shoji (30 de noviembre de 2018). "Medición electrofisiológica de canales iónicos en membranas de plasma/orgánulos utilizando un sistema de bicapa lipídica en chip". Scientific Reports . 8 (1): 17498. Bibcode :2018NatSR...817498K. doi :10.1038/s41598-018-35316-4. ISSN  2045-2322. PMC 6269590 . PMID  30504856. 
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