Biosensor

Sonda que prueba moléculas biológicas

Un biosensor es un dispositivo analítico, utilizado para la detección de una sustancia química, que combina un componente biológico con un detector fisicoquímico . [1] [2] [3] [4] El elemento biológico sensible , por ejemplo tejido, microorganismos, orgánulos , receptores celulares , enzimas , anticuerpos , ácidos nucleicos , etc., es un material de origen biológico o componente biomimético que interactúa con, se une con o reconoce el analito en estudio. Los elementos biológicamente sensibles también pueden crearse mediante ingeniería biológica . El transductor o el elemento detector , que transforma una señal en otra, funciona de forma fisicoquímica: óptica, piezoeléctrica , electroquímica, electroquimioluminiscencia etc., resultante de la interacción del analito con el elemento biológico, para medir y cuantificar fácilmente. El dispositivo lector del biosensor se conecta con la electrónica asociada o procesadores de señales que son los principales responsables de la visualización de los resultados de forma sencilla para el usuario. [5] Esto a veces representa la parte más cara del dispositivo sensor, sin embargo es posible generar una pantalla fácil de usar que incluye un transductor y un elemento sensible ( sensor holográfico ). Los lectores suelen estar diseñados y fabricados a medida para adaptarse a los diferentes principios de funcionamiento de los biosensores.

Sistema de biosensores

Un biosensor consta típicamente de un biorreceptor (enzima/anticuerpo/célula/ácido nucleico/aptámero), un componente transductor (material semiconductor/nanomaterial) y un sistema electrónico que incluye un amplificador de señal , un procesador y una pantalla. [6] Los transductores y la electrónica se pueden combinar, por ejemplo, en sistemas de microsensores basados ​​en CMOS . [7] [8] El componente de reconocimiento, a menudo llamado biorreceptor, utiliza biomoléculas de organismos o receptores modelados a partir de sistemas biológicos para interactuar con el analito de interés. Esta interacción se mide mediante el biotransductor que emite una señal medible proporcional a la presencia del analito objetivo en la muestra. El objetivo general del diseño de un biosensor es permitir una prueba rápida y conveniente en el punto de interés o atención donde se obtuvo la muestra. [1] [9] [10]

Biorreceptores

Biosensores utilizados para el cribado de bibliotecas combinatorias de ADN

En un biosensor, el biorreceptor está diseñado para interactuar con el analito específico de interés para producir un efecto medible por el transductor. Una alta selectividad para el analito entre una matriz de otros componentes químicos o biológicos es un requisito clave del biorreceptor. Si bien el tipo de biomolécula utilizada puede variar ampliamente, los biosensores se pueden clasificar de acuerdo con los tipos comunes de interacciones de biorreceptores que involucran: anticuerpo/antígeno, [11] enzimas/ligandos, ácidos nucleicos/ADN, estructuras celulares/células o materiales biomiméticos. [12] [13]

Interacciones anticuerpo/antígeno

Un inmunosensor utiliza la afinidad de unión muy específica de los anticuerpos para un compuesto o antígeno específico . La naturaleza específica de la interacción anticuerpo-antígeno es análoga a un ajuste de llave y cerradura en el que el antígeno solo se unirá al anticuerpo si tiene la conformación correcta. Los eventos de unión dan como resultado un cambio fisicoquímico que, en combinación con un trazador, como moléculas fluorescentes, enzimas o radioisótopos, puede generar una señal. Existen limitaciones con el uso de anticuerpos en sensores: 1. La capacidad de unión del anticuerpo depende en gran medida de las condiciones del ensayo (por ejemplo, pH y temperatura), y 2. la interacción anticuerpo-antígeno es generalmente robusta, sin embargo, la unión puede verse alterada por reactivos caotrópicos , solventes orgánicos o incluso radiación ultrasónica. [14] [15]

Las interacciones anticuerpo-antígeno también se pueden utilizar para las pruebas serológicas o la detección de anticuerpos circulantes en respuesta a una enfermedad específica. Es importante destacar que las pruebas serológicas se han convertido en una parte importante de la respuesta global a la pandemia de COVID-19 . [16]

Proteínas de unión artificiales

El uso de anticuerpos como componente de bioreconocimiento de biosensores tiene varios inconvenientes. Tienen pesos moleculares altos y estabilidad limitada, contienen enlaces disulfuro esenciales y son costosos de producir. En un enfoque para superar estas limitaciones, se han diseñado fragmentos de unión recombinantes ( Fab , Fv o scFv ) o dominios (VH, VHH ) de anticuerpos. [17] En otro enfoque, se han diseñado pequeños andamios de proteínas con propiedades biofísicas favorables para generar familias artificiales de proteínas de unión a antígeno (AgBP), capaces de unirse específicamente a diferentes proteínas objetivo mientras conservan las propiedades favorables de la molécula original. Los elementos de la familia que se unen específicamente a un antígeno objetivo dado, a menudo se seleccionan in vitro mediante técnicas de visualización: visualización de fagos , visualización de ribosomas , visualización de levaduras o visualización de ARNm . Las proteínas de unión artificiales son mucho más pequeñas que los anticuerpos (normalmente menos de 100 residuos de aminoácidos), tienen una fuerte estabilidad, carecen de enlaces disulfuro y pueden expresarse con un alto rendimiento en entornos celulares reductores como el citoplasma bacteriano, al contrario de los anticuerpos y sus derivados. [18] [19] Por lo tanto, son especialmente adecuadas para crear biosensores. [20] [21]

Interacciones enzimáticas

Las capacidades de unión específicas y la actividad catalítica de las enzimas las convierten en biorreceptores populares. El reconocimiento de analitos se habilita a través de varios mecanismos posibles: 1) la enzima convierte el analito en un producto que es detectable por el sensor, 2) detecta la inhibición o activación enzimática por el analito, o 3) monitorea la modificación de las propiedades de la enzima resultante de la interacción con el analito. [15] Las principales razones para el uso común de enzimas en biosensores son: 1) capacidad para catalizar una gran cantidad de reacciones; 2) potencial para detectar un grupo de analitos (sustratos, productos, inhibidores y moduladores de la actividad catalítica); y 3) idoneidad con varios métodos de transducción diferentes para detectar el analito. En particular, dado que las enzimas no se consumen en las reacciones, el biosensor se puede usar fácilmente de forma continua. La actividad catalítica de las enzimas también permite límites de detección más bajos en comparación con las técnicas de unión comunes. Sin embargo, la vida útil del sensor está limitada por la estabilidad de la enzima.

Receptores de unión por afinidad

Los anticuerpos tienen una constante de unión alta , superior a 10^8 L/mol, lo que representa una asociación casi irreversible una vez que se ha formado la pareja antígeno-anticuerpo. Para ciertas moléculas de analito, como la glucosa, existen proteínas de unión por afinidad que se unen a su ligando con una alta especificidad como un anticuerpo, pero con una constante de unión mucho menor, del orden de 10^2 a 10^4 L/mol. La asociación entre analito y receptor es entonces de naturaleza reversible y, junto a la pareja entre ambos, también sus moléculas libres se presentan en una concentración medible. En el caso de la glucosa, por ejemplo, la concanavalina A puede funcionar como receptor de afinidad que exhibe una constante de unión de 4x10^2 L/mol. [22] El uso de receptores de unión por afinidad para fines de biodetección ha sido propuesto por Schultz y Sims en 1979 [23] y posteriormente se configuró en un ensayo fluorescente para medir la glucosa en el rango fisiológico relevante entre 4,4 y 6,1 mmol/L. [24] El principio del sensor tiene la ventaja de que no consume el analito en una reacción química como ocurre en los ensayos enzimáticos.

Interacciones de ácidos nucleicos

Los biosensores que emplean receptores basados ​​en ácidos nucleicos pueden basarse en interacciones de apareamiento de bases complementarias denominadas genosensores o imitadores de anticuerpos basados ​​en ácidos nucleicos específicos (aptámeros) como aptasensores. [25] En el primero, el proceso de reconocimiento se basa en el principio de apareamiento de bases complementarias , adenina:timina y citosina:guanina en ADN . Si se conoce la secuencia de ácido nucleico diana, se pueden sintetizar secuencias complementarias, etiquetarlas y luego inmovilizarlas en el sensor. El evento de hibridación se puede detectar ópticamente y determinar la presencia de ADN/ARN diana. En el segundo, los aptámeros generados contra la diana lo reconocen a través de la interacción de interacciones no covalentes específicas y ajuste inducido. Estos aptámeros se pueden etiquetar con un fluoróforo/nanopartículas metálicas fácilmente para la detección óptica o se pueden emplear para plataformas de detección electroquímicas o basadas en voladizos sin etiqueta para una amplia gama de moléculas diana o dianas complejas como células y virus. [26] [27] Además, los aptámeros se pueden combinar con enzimas de ácidos nucleicos, como las ADNzimas que escinden ARN, lo que proporciona tanto reconocimiento de objetivos como generación de señales en una sola molécula, lo que muestra posibles aplicaciones en el desarrollo de biosensores multiplex. [28]

Epigenética

Se ha propuesto que los resonadores ópticos integrados optimizados adecuadamente se pueden explotar para detectar modificaciones epigenéticas (por ejemplo, metilación del ADN, modificaciones postraduccionales de histonas) en fluidos corporales de pacientes afectados por cáncer u otras enfermedades. [29] En la actualidad, se están desarrollando biosensores fotónicos con ultrasensibilidad a nivel de investigación para detectar fácilmente células cancerosas dentro de la orina del paciente. [30] Diferentes proyectos de investigación tienen como objetivo desarrollar nuevos dispositivos portátiles que utilicen cartuchos desechables económicos y respetuosos con el medio ambiente que solo requieran un manejo simple sin necesidad de procesamiento, lavado o manipulación adicionales por parte de técnicos expertos. [31]

Organelos

Los orgánulos forman compartimentos separados dentro de las células y generalmente realizan funciones de forma independiente. Diferentes tipos de orgánulos tienen varias vías metabólicas y contienen enzimas para cumplir su función. Los orgánulos comúnmente utilizados incluyen lisosomas, cloroplastos y mitocondrias. El patrón de distribución espacio-temporal del calcio está estrechamente relacionado con la vía de señalización ubicua. Las mitocondrias participan activamente en el metabolismo de los iones de calcio para controlar la función y también modular las vías de señalización relacionadas con el calcio. Los experimentos han demostrado que las mitocondrias tienen la capacidad de responder a altas concentraciones de calcio generadas en su proximidad abriendo los canales de calcio. [32] De esta manera, las mitocondrias se pueden utilizar para detectar la concentración de calcio en el medio y la detección es muy sensible debido a la alta resolución espacial. Otra aplicación de las mitocondrias se utiliza para la detección de la contaminación del agua. La toxicidad de los compuestos detergentes dañará la célula y la estructura subcelular, incluidas las mitocondrias. Los detergentes causarán un efecto de hinchazón que podría medirse mediante un cambio de absorbancia. Los datos experimentales muestran que la tasa de cambio es proporcional a la concentración de detergente, lo que proporciona un alto estándar para la precisión de detección. [33]

Células

Las células se utilizan a menudo en biorreceptores porque son sensibles al entorno circundante y pueden responder a todo tipo de estimulantes. Las células tienden a adherirse a la superficie para que puedan inmovilizarse fácilmente. En comparación con los orgánulos, permanecen activas durante un período más largo y la reproducibilidad las hace reutilizables. Se utilizan comúnmente para detectar parámetros globales como condiciones de estrés, toxicidad y derivados orgánicos. También se pueden utilizar para monitorear el efecto del tratamiento de medicamentos. Una aplicación es utilizar células para determinar los herbicidas que son los principales contaminantes acuáticos. [34] Las microalgas se atrapan en una microfibra de cuarzo y la fluorescencia de clorofila modificada por los herbicidas se recoge en la punta de un haz de fibras ópticas y se transmite a un fluorímetro. Las algas se cultivan continuamente para obtener una medición optimizada. Los resultados muestran que el límite de detección de ciertos herbicidas puede alcanzar un nivel de concentración inferior a ppb. Algunas células también se pueden utilizar para monitorear la corrosión microbiana. [35] Pseudomonas sp. se aísla de la superficie del material corroído y se inmoviliza en una membrana de acetilcelulosa. La actividad respiratoria se determina midiendo el consumo de oxígeno. Existe una relación lineal entre la corriente generada y la concentración de ácido sulfúrico . El tiempo de respuesta está relacionado con la carga de las células y el entorno circundante y se puede controlar a no más de 5 minutos.

Tejido

Los tejidos se utilizan como biosensores para la abundancia de enzimas existentes. Las ventajas de los tejidos como biosensores incluyen las siguientes: [36]

  • Más fácil de inmovilizar en comparación con las células y los orgánulos.
  • La mayor actividad y estabilidad derivadas del mantenimiento de las enzimas en el entorno natural.
  • La disponibilidad y el bajo precio
  • la evitación del tedioso trabajo de extracción, centrifugación y purificación de enzimas
  • Existen cofactores necesarios para que una enzima funcione.
  • La diversidad que ofrece una amplia gama de opciones respecto a diferentes objetivos.

También existen algunas desventajas de los tejidos, como la falta de especificidad debido a la interferencia de otras enzimas y un mayor tiempo de respuesta debido a la barrera de transporte.

Biosensores microbianos

Los biosensores microbianos aprovechan la respuesta de las bacterias a una sustancia determinada. Por ejemplo, el arsénico se puede detectar utilizando el operón ars presente en varios taxones bacterianos. [37]

Fijación superficial de los elementos biológicos

Detección de exosomas cargados negativamente unidos a una superficie de grafeno

Una parte importante de un biosensor es la fijación de los elementos biológicos (pequeñas moléculas/proteínas/células) a la superficie del sensor (ya sea de metal, polímero o vidrio). La forma más sencilla es funcionalizar la superficie para recubrirla con los elementos biológicos. Esto se puede hacer con polilisina, aminosilano, epoxisilano o nitrocelulosa en el caso de chips de silicio/vidrio de sílice. Posteriormente, el agente biológico unido también se puede fijar, por ejemplo, mediante la deposición capa por capa de recubrimientos de polímeros con carga alternativa. [38]

Como alternativa, se pueden utilizar redes tridimensionales ( hidrogel / xerogel ) para atraparlos química o físicamente (por lo que químicamente atrapado se entiende que el elemento biológico se mantiene en su lugar mediante un enlace fuerte, mientras que físicamente se mantiene en su lugar al no poder pasar a través de los poros de la matriz del gel). El hidrogel más comúnmente utilizado es el sol-gel , sílice vítrea generada por polimerización de monómeros de silicato (añadidos como ortosilicatos de tetraalquilo, como TMOS o TEOS ) en presencia de los elementos biológicos (junto con otros polímeros estabilizadores, como PEG ) en el caso de atrapamiento físico. [39]

Otro grupo de hidrogeles, que se fijan en condiciones adecuadas para las células o las proteínas, son los hidrogeles de acrilato , que se polimerizan tras la iniciación radicalaria . Un tipo de iniciador radical es un radical peróxido , normalmente generado mediante la combinación de un persulfato con TEMED ( los geles de poliacrilamida también se utilizan habitualmente para la electroforesis de proteínas ), [40] alternativamente, se puede utilizar luz en combinación con un fotoiniciador, como DMPA ( 2,2-dimetoxi-2-fenilacetofenona ). [41] Los materiales inteligentes que imitan los componentes biológicos de un sensor también se pueden clasificar como biosensores utilizando solo el sitio activo o catalítico o configuraciones análogas de una biomolécula. [42]

Biotransductor

Clasificación de biosensores según el tipo de biotransductor

Los biosensores se pueden clasificar según el tipo de biotransductor que contienen. Los tipos de biotransductores más comunes que se utilizan en los biosensores son:

  • biosensores electroquímicos
  • biosensores ópticos
  • biosensores electronicos
  • biosensores piezoeléctricos
  • biosensores gravimétricos
  • biosensores piroeléctricos
  • biosensores magnéticos

Electroquímica

Los biosensores electroquímicos se basan normalmente en la catálisis enzimática de una reacción que produce o consume electrones (tales enzimas se denominan correctamente enzimas redox). El sustrato del sensor normalmente contiene tres electrodos : un electrodo de referencia , un electrodo de trabajo y un contraelectrodo. El analito objetivo está involucrado en la reacción que tiene lugar en la superficie del electrodo activo, y la reacción puede causar la transferencia de electrones a través de la doble capa (produciendo una corriente) o puede contribuir al potencial de doble capa (produciendo un voltaje). Podemos medir la corriente (la tasa de flujo de electrones ahora es proporcional a la concentración de analito) a un potencial fijo o el potencial puede medirse a corriente cero (esto da una respuesta logarítmica). Tenga en cuenta que el potencial del electrodo de trabajo o activo es sensible a la carga espacial y esto se usa a menudo. Además, la detección eléctrica directa y sin etiqueta de pequeños péptidos y proteínas es posible por sus cargas intrínsecas utilizando transistores de efecto de campo sensibles a iones biofuncionalizados . [43]

Otro ejemplo, el biosensor potenciométrico (potencial producido a corriente cero) da una respuesta logarítmica con un alto rango dinámico. Estos biosensores se fabrican a menudo mediante la serigrafía de los patrones de electrodos sobre un sustrato de plástico, recubierto con un polímero conductor y luego se le adhiere una proteína (enzima o anticuerpo). Tienen solo dos electrodos y son extremadamente sensibles y robustos. Permiten la detección de analitos a niveles que antes solo se podían lograr mediante HPLC y LC/MS y sin una preparación rigurosa de la muestra. Todos los biosensores suelen implicar una preparación mínima de la muestra, ya que el componente de detección biológica es altamente selectivo para el analito en cuestión. La señal se produce por cambios electroquímicos y físicos en la capa de polímero conductor debido a los cambios que ocurren en la superficie del sensor. Dichos cambios pueden atribuirse a la fuerza iónica, el pH, la hidratación y las reacciones redox, estas últimas debidas a la etiqueta enzimática que gira sobre un sustrato. [44] Los transistores de efecto de campo, en los que la región de compuerta se ha modificado con una enzima o anticuerpo, también pueden detectar concentraciones muy bajas de varios analitos, ya que la unión del analito a la región de compuerta del FET provoca un cambio en la corriente de drenaje-fuente.

El desarrollo de biosensores basados ​​en espectroscopia de impedancia ha ido ganando terreno en la actualidad y muchos de estos dispositivos/desarrollos se encuentran en el ámbito académico y en la industria. Se ha demostrado que un dispositivo de este tipo, basado en una celda electroquímica de 4 electrodos, que utiliza una membrana de alúmina nanoporosa, detecta bajas concentraciones de trombina alfa humana en presencia de un alto nivel de albúmina sérica. [45] También se han utilizado electrodos entrelazados para biosensores de impedancia. [46]

Interruptor de canal iónico

ICS – canal abierto
ICS – canal cerrado

Se ha demostrado que el uso de canales iónicos ofrece una detección altamente sensible de moléculas biológicas objetivo. [47] Al incorporar los canales iónicos en membranas bicapa soportadas o ancladas (t-BLM) unidas a un electrodo de oro, se crea un circuito eléctrico. Las moléculas de captura, como los anticuerpos, se pueden unir al canal iónico de modo que la unión de la molécula objetivo controle el flujo de iones a través del canal. Esto da como resultado un cambio mensurable en la conducción eléctrica que es proporcional a la concentración del objetivo.

Se puede crear un biosensor de cambio de canal iónico (ICS) utilizando gramicidina, un canal peptídico dimérico, en una membrana bicapa anclada. [48] Un péptido de gramicidina, con anticuerpo unido, es móvil y el otro es fijo. La ruptura del dímero detiene la corriente iónica a través de la membrana. La magnitud del cambio en la señal eléctrica aumenta considerablemente al separar la membrana de la superficie metálica utilizando un espaciador hidrofílico.

Se ha demostrado la detección cuantitativa de una amplia clase de especies objetivo, incluidas proteínas, bacterias, fármacos y toxinas, utilizando diferentes configuraciones de membrana y captura. [49] [50] El proyecto de investigación europeo Greensense desarrolla un biosensor para realizar una detección cuantitativa de drogas de abuso como el THC, la morfina y la cocaína [51] en saliva y orina.

Biosensor fluorescente sin reactivos

Un biosensor sin reactivos puede monitorizar un analito objetivo en una mezcla biológica compleja sin reactivo adicional. Por lo tanto, puede funcionar de forma continua si se inmoviliza sobre un soporte sólido. Un biosensor fluorescente reacciona a la interacción con su analito objetivo mediante un cambio de sus propiedades de fluorescencia. Un biosensor fluorescente sin reactivos (biosensor RF) se puede obtener integrando un receptor biológico, que se dirige contra el analito objetivo, y un fluoróforo solvatocrómico , cuyas propiedades de emisión son sensibles a la naturaleza de su entorno local, en una única macromolécula. El fluoróforo transduce el evento de reconocimiento en una señal óptica medible. El uso de fluoróforos extrínsecos, cuyas propiedades de emisión difieren ampliamente de las de los fluoróforos intrínsecos de las proteínas, el triptófano y la tirosina, permite detectar y cuantificar inmediatamente el analito en mezclas biológicas complejas. La integración del fluoróforo debe realizarse en un sitio donde sea sensible a la unión del analito sin perturbar la afinidad del receptor.

Los anticuerpos y las familias artificiales de proteínas de unión a antígenos (AgBP) son muy adecuados para proporcionar el módulo de reconocimiento de los biosensores de RF, ya que pueden dirigirse contra cualquier antígeno (véase el párrafo sobre biorreceptores). Se ha descrito un enfoque general para integrar un fluoróforo solvatocrómico en una AgBP cuando se conoce la estructura atómica del complejo con su antígeno, y así transformarlo en un biosensor de RF. [20] Se identifica un residuo de la AgBP en la vecindad del antígeno en su complejo. Este residuo se transforma en una cisteína mediante mutagénesis dirigida al sitio. El fluoróforo se acopla químicamente a la cisteína mutante. Cuando el diseño es exitoso, el fluoróforo acoplado no impide la unión del antígeno, esta unión protege al fluoróforo del solvente y puede detectarse mediante un cambio de fluorescencia. Esta estrategia también es válida para fragmentos de anticuerpos. [52] [53]

Sin embargo, en ausencia de datos estructurales específicos, se deben aplicar otras estrategias. Los anticuerpos y las familias artificiales de AgBPs están constituidas por un conjunto de posiciones de residuos hipervariables (o aleatorizadas), ubicadas en una única subregión de la proteína, y soportadas por un andamiaje polipeptídico constante. Los residuos que forman el sitio de unión para un antígeno dado, se seleccionan entre los residuos hipervariables. Es posible transformar cualquier AgBP de estas familias en un biosensor de RF, específico del antígeno diana, simplemente acoplando un fluoróforo solvatocrómico a uno de los residuos hipervariables que tienen poca o ninguna importancia para la interacción con el antígeno, después de convertir este residuo en cisteína por mutagénesis. Más específicamente, la estrategia consiste en convertir individualmente los residuos de las posiciones hipervariables en cisteína a nivel genético, en acoplar químicamente un fluoróforo solvatocrómico con la cisteína mutante, y luego en mantener los conjugados resultantes que tienen la mayor sensibilidad (un parámetro que involucra tanto la afinidad como la variación de la señal de fluorescencia). [21] Este enfoque también es válido para familias de fragmentos de anticuerpos. [54]

Estudios a posteriori han demostrado que los mejores biosensores fluorescentes sin reactivos se obtienen cuando el fluoróforo no realiza interacciones no covalentes con la superficie del biorreceptor, lo que aumentaría la señal de fondo, y cuando interactúa con un bolsillo de unión en la superficie del antígeno objetivo. [55] Los biosensores de RF que se obtienen mediante los métodos anteriores pueden funcionar y detectar analitos objetivo dentro de células vivas. [56]

Biosensores magnéticos

Los biosensores magnéticos utilizan partículas paramagnéticas o supraparamagnéticas, o cristales, para detectar interacciones biológicas. Algunos ejemplos podrían ser la inductancia de la bobina, la resistencia u otras propiedades magnéticas. Es común utilizar nanopartículas o micropartículas magnéticas. En la superficie de dichas partículas se encuentran los biorreceptores, que pueden ser ADN (complementario a una secuencia o aptámeros), anticuerpos u otros. La unión del biorreceptor afectará algunas de las propiedades de las partículas magnéticas que se pueden medir mediante susceptometría de CA, [57] un sensor de efecto Hall, [58] un dispositivo de magnetorresistencia gigante, [59] u otros.

Otros

Los sensores piezoeléctricos utilizan cristales que sufren una deformación elástica cuando se les aplica un potencial eléctrico. Un potencial alterno (CA) produce una onda estacionaria en el cristal a una frecuencia característica. Esta frecuencia depende en gran medida de las propiedades elásticas del cristal, de modo que si un cristal está recubierto con un elemento de reconocimiento biológico, la unión de un analito objetivo (de gran tamaño) a un receptor producirá un cambio en la frecuencia de resonancia, lo que da una señal de unión. En un modo que utiliza ondas acústicas de superficie (SAW), la sensibilidad aumenta considerablemente. Esta es una aplicación especializada de la microbalanza de cristal de cuarzo como biosensor.

La electroquimioluminiscencia (ECL) es hoy en día una técnica líder en biosensores. [60] [61] [62] Dado que las especies excitadas se producen con un estímulo electroquímico en lugar de con una fuente de excitación luminosa, la ECL muestra una relación señal-ruido mejorada en comparación con la fotoluminiscencia, con efectos minimizados debido a la dispersión de la luz y al fondo de luminiscencia. En particular, la ECL correactiva que opera en una solución acuosa tamponada en la región de potenciales positivos (mecanismo de reducción oxidativa) impulsó definitivamente la ECL para el inmunoensayo, como lo confirman muchas aplicaciones de investigación y, aún más, por la presencia de importantes empresas que desarrollaron hardware comercial para análisis de inmunoensayos de alto rendimiento en un mercado que vale miles de millones de dólares cada año.

Los biosensores termométricos son raros.

Biosensor MOSFET (BioFET)

El MOSFET inventado en Bell Labs entre 1955 y 1960, [63] [64] [65 ] [66] [67] [68] Más tarde, Leland C. Clark y Champ Lyons inventaron el primer biosensor en 1962. [69] [70] Los MOSFET biosensores (BioFET) se desarrollaron más tarde y desde entonces se han utilizado ampliamente para medir parámetros físicos , químicos , biológicos y ambientales . [71]

El primer BioFET fue el transistor de efecto de campo sensible a iones (ISFET), inventado por Piet Bergveld para aplicaciones electroquímicas y biológicas en 1970. [72] [73] el FET de adsorción (ADFET) fue patentado por PF Cox en 1974, y un MOSFET sensible al hidrógeno fue demostrado por I. Lundstrom, MS Shivaraman, CS Svenson y L. Lundkvist en 1975. [71] El ISFET es un tipo especial de MOSFET con una compuerta a una cierta distancia, [71] y donde la compuerta de metal se reemplaza por una membrana sensible a iones , una solución electrolítica y un electrodo de referencia . [74] El ISFET se usa ampliamente en aplicaciones biomédicas , como la detección de hibridación de ADN , detección de biomarcadores en sangre , detección de anticuerpos , medición de glucosa , detección de pH y tecnología genética . [74]

A mediados de la década de 1980, se habían desarrollado otros BioFET, incluido el FET de sensor de gas (GASFET), el FET de sensor de presión (PRESSFET), el transistor de efecto de campo químico (ChemFET), el ISFET de referencia (REFET), el FET modificado por enzimas (ENFET) y el FET modificado inmunológicamente (IMFET). [71] A principios de la década de 2000, se habían desarrollado BioFET como el transistor de efecto de campo de ADN (DNAFET), el FET modificado genéticamente (GenFET) y el BioFET de potencial celular (CPFET). [74]

Colocación de biosensores

La colocación adecuada de los biosensores depende de su campo de aplicación, que puede dividirse a grandes rasgos en biotecnología , agricultura , tecnología alimentaria y biomedicina .

En biotecnología, el análisis de la composición química del caldo de cultivo se puede realizar en línea, en línea, en línea y fuera de línea. Como lo describe la Administración de Alimentos y Medicamentos de los EE. UU. ( FDA ), la muestra no se retira del flujo de proceso para los sensores en línea, mientras que se desvía del proceso de fabricación para las mediciones en línea. Para los sensores en línea, la muestra se puede retirar y analizar muy cerca del flujo de proceso. [75] Un ejemplo de esto último es el monitoreo de la lactosa en una planta de procesamiento de lácteos. [76] Los biosensores fuera de línea se comparan con las técnicas bioanalíticas que no operan en el campo, sino en el laboratorio. Estas técnicas se utilizan principalmente en agricultura, tecnología alimentaria y biomedicina.

En aplicaciones médicas, los biosensores generalmente se clasifican como sistemas in vitro e in vivo . Una medición in vitro del biosensor se lleva a cabo en un tubo de ensayo, una placa de cultivo, una placa de microtitulación o en otro lugar fuera de un organismo vivo. El sensor utiliza un biorreceptor y un transductor como se describe anteriormente. Un ejemplo de un biosensor in vitro es un biosensor enzimático-conductimétrico para el control de la glucosa en sangre . Existe un desafío para crear un biosensor que funcione según el principio de prueba en el punto de atención , es decir, en el lugar donde se necesita la prueba. [77] [78] El desarrollo de biosensores portátiles se encuentra entre dichos estudios. [79] La eliminación de las pruebas de laboratorio puede ahorrar tiempo y dinero. Una aplicación de un biosensor POCT puede ser la prueba del VIH en áreas donde es difícil que los pacientes se hagan la prueba. Un biosensor se puede enviar directamente a la ubicación y se puede utilizar una prueba rápida y sencilla.

Implante de biosensor para monitorización de glucosa en tejido subcutáneo (59x45x8 mm). Los componentes electrónicos están herméticamente encerrados en una carcasa de titanio, mientras que la antena y la sonda del sensor están moldeadas en el cabezal de epoxi. [80]

Un biosensor in vivo es un dispositivo implantable que funciona dentro del cuerpo. Por supuesto, los implantes de biosensores tienen que cumplir con las estrictas regulaciones sobre esterilización para evitar una respuesta inflamatoria inicial después de la implantación. La segunda preocupación se relaciona con la biocompatibilidad a largo plazo , es decir, la interacción inocua con el entorno corporal durante el período de uso previsto. [81] Otro problema que surge es el fallo. Si hay un fallo, el dispositivo debe retirarse y reemplazarse, lo que provoca una cirugía adicional. Un ejemplo de aplicación de un biosensor in vivo sería el control de la insulina dentro del cuerpo, que aún no está disponible.

Los implantes de biosensores más avanzados se han desarrollado para el control continuo de la glucosa. [82] [83] La figura muestra un dispositivo, para el cual se utiliza una carcasa de Ti y una batería como las establecidas para implantes cardiovasculares como marcapasos y desfibriladores . [80] Su tamaño está determinado por la batería, ya que se requiere para una vida útil de un año. Los datos de glucosa medidos se transmitirán de forma inalámbrica fuera del cuerpo dentro de la banda MICS 402-405 MHz, tal como se aprobó para implantes médicos.

Los biosensores también pueden integrarse en sistemas de telefonía móvil, haciéndolos fáciles de usar y accesibles para un gran número de usuarios. [84]

Aplicaciones

Biodetección del virus de la gripe mediante un diamante dopado con boro modificado con anticuerpos

Existen muchas aplicaciones potenciales para los biosensores de distintos tipos. Los principales requisitos para que un método basado en biosensores sea valioso en términos de investigación y aplicaciones comerciales son la identificación de una molécula objetivo, la disponibilidad de un elemento de reconocimiento biológico adecuado y la posibilidad de que los sistemas de detección portátiles desechables sean preferibles a las técnicas sensibles de laboratorio en algunas situaciones. Algunos ejemplos son:

  • Monitorización de la glucosa en pacientes diabéticos , otros objetivos médicos relacionados con la salud,
  • Aplicaciones ambientales, por ejemplo, la detección de pesticidas , la detección y determinación de organofosforados y contaminantes del agua de los ríos, como iones de metales pesados, [85]
  • teledetección de bacterias transportadas por el aire , por ejemplo en actividades antibioterroristas,
  • Teledetección de la calidad del agua en aguas costeras mediante la descripción en línea de diferentes aspectos de la etología de las almejas (ritmos biológicos, tasas de crecimiento, registros de desove o muerte) en grupos de bivalvos abandonados en todo el mundo, [86]
  • detección de patógenos,
  • determinación de los niveles de sustancias tóxicas antes y después de la biorremediación ,
  • Medición analítica de rutina de ácido fólico , biotina , vitamina B12 y ácido pantoténico como alternativa al análisis microbiológico.
  • determinación de residuos de medicamentos en alimentos, como antibióticos y promotores del crecimiento , en particular carne y miel,
  • descubrimiento de fármacos y evaluación de la actividad biológica de nuevos compuestos,
  • Ingeniería de proteínas en biosensores, [87] y
  • detección de metabolitos tóxicos como micotoxinas .

Un ejemplo común de un biosensor comercial es el biosensor de glucosa en sangre , que utiliza la enzima glucosa oxidasa para descomponer la glucosa en sangre. Para ello, primero oxida la glucosa y utiliza dos electrones para reducir el FAD (un componente de la enzima) a FADH 2 . Este, a su vez, es oxidado por el electrodo en una serie de pasos. La corriente resultante es una medida de la concentración de glucosa. En este caso, el electrodo es el transductor y la enzima es el componente biológicamente activo.

Un canario en una jaula , como los que utilizan los mineros para advertir de la presencia de gases, podría considerarse un biosensor. Muchas de las aplicaciones actuales de los biosensores son similares, ya que utilizan organismos que reaccionan ante sustancias tóxicas en concentraciones mucho más bajas que las que los humanos pueden detectar para advertir de su presencia. Dichos dispositivos se pueden utilizar en la vigilancia medioambiental , [86] la detección de trazas de gases y en instalaciones de tratamiento de agua.

Monitoreo de glucosa

Los monitores de glucosa disponibles comercialmente se basan en la detección amperométrica de la glucosa por medio de la glucosa oxidasa , que oxida la glucosa produciendo peróxido de hidrógeno que es detectado por el electrodo. Para superar la limitación de los sensores amperométricos, existe una oleada de investigaciones sobre nuevos métodos de detección, como los biosensores de glucosa fluorescentes . [88]

Sensor de imágenes por reflectancia interferométrica

El sensor de imágenes por reflectancia interferométrica (IRIS) se basa en los principios de la interferencia óptica y consta de un sustrato de silicio-óxido de silicio, óptica estándar y LED coherentes de baja potencia. Cuando se ilumina la luz a través de un objetivo de bajo aumento sobre el sustrato de silicio-óxido de silicio en capas, se produce una firma interferométrica. A medida que la biomasa, que tiene un índice de refracción similar al óxido de silicio, se acumula en la superficie del sustrato, se produce un cambio en la firma interferométrica y el cambio se puede correlacionar con una masa cuantificable. Daaboul et al. utilizaron IRIS para producir una sensibilidad sin etiqueta de aproximadamente 19 ng/mL. [89] Ahn et al. mejoraron la sensibilidad de IRIS mediante una técnica de etiquetado de masa. [90]

Desde su publicación inicial, IRIS se ha adaptado para realizar varias funciones. En primer lugar, IRIS integró una capacidad de obtención de imágenes de fluorescencia en el instrumento de obtención de imágenes interferométricas como una forma potencial de abordar la variabilidad de los microarrays de proteínas de fluorescencia. [91] En resumen, la variación en los microarrays de fluorescencia se deriva principalmente de la inmovilización inconsistente de las proteínas en las superficies y puede causar diagnósticos erróneos en los microarrays de alergia. [92] Para corregir cualquier variación en la inmovilización de las proteínas, los datos adquiridos en la modalidad de fluorescencia se normalizan a continuación con los datos adquiridos en la modalidad sin etiqueta. [92] IRIS también se ha adaptado para realizar el recuento de nanopartículas individuales simplemente cambiando el objetivo de bajo aumento utilizado para la cuantificación de biomasa sin etiqueta a un objetivo de mayor aumento. [93] [94] Esta modalidad permite la discriminación de tamaño en muestras biológicas humanas complejas. Monroe et al. utilizaron IRIS para cuantificar los niveles de proteínas añadidos a la sangre completa y el suero humanos y determinaron la sensibilización a los alérgenos en muestras de sangre humana caracterizadas utilizando el procesamiento de muestra cero. [95] Otros usos prácticos de este dispositivo incluyen la detección de virus y patógenos. [96]

Análisis de alimentos

Existen diversas aplicaciones de los biosensores en el análisis de alimentos. [97] [98] [99] [100] En la industria alimentaria, se utilizan comúnmente ópticas recubiertas con anticuerpos para detectar patógenos y toxinas alimentarias. Comúnmente, el sistema de luz en estos biosensores es la fluorescencia, ya que este tipo de medición óptica puede amplificar en gran medida la señal.

Se ha desarrollado una gama de ensayos de unión de ligandos e inmunoensayos para la detección y medición de moléculas pequeñas, como vitaminas solubles en agua y contaminantes químicos ( residuos de fármacos ), como sulfonamidas y beta-agonistas , para su uso en sistemas de sensores basados ​​en SPR , a menudo adaptados de ELISA existentes u otros ensayos inmunológicos. Estos se utilizan ampliamente en la industria alimentaria.

Detección/monitoreo de contaminantes

Los biosensores podrían utilizarse para monitorear contaminantes del aire , el agua y el suelo, como pesticidas, sustancias potencialmente cancerígenas, mutagénicas y/o tóxicas y productos químicos disruptores endocrinos. [101] [102]

Por ejemplo, los bionanotecnólogos desarrollaron un biosensor viable, ROSALIND 2.0 , que puede detectar niveles de diversos contaminantes del agua . [103] [104]

Medición de ozono

Debido a que el ozono filtra la radiación ultravioleta dañina, el descubrimiento de agujeros en la capa de ozono de la atmósfera terrestre ha suscitado preocupación sobre la cantidad de luz ultravioleta que llega a la superficie terrestre. Son de especial preocupación las cuestiones de hasta qué profundidad penetra la radiación ultravioleta en el agua del mar y cómo afecta a los organismos marinos , especialmente al plancton (microorganismos flotantes) y a los virus que atacan al plancton. El plancton forma la base de las cadenas alimentarias marinas y se cree que afecta a la temperatura y al clima de nuestro planeta mediante la absorción de CO2 para la fotosíntesis.

Deneb Karentz, investigadora del Laboratorio de Radiobiología y Salud Ambiental ( Universidad de California, San Francisco ), ha ideado un método sencillo para medir la penetración y la intensidad de la radiación ultravioleta. En el océano Antártico, sumergió a distintas profundidades unas bolsas de plástico delgadas que contenían cepas especiales de E. coli que son casi totalmente incapaces de reparar los daños causados ​​por la radiación ultravioleta en su ADN. Se compararon las tasas de muerte bacteriana en estas bolsas con las tasas en bolsas de control no expuestas del mismo organismo. Los "biosensores" bacterianos revelaron un daño ultravioleta significativo y constante a profundidades de 10 m y, con frecuencia, a 20 y 30 m. Karentz planea realizar estudios adicionales sobre cómo la radiación ultravioleta puede afectar a las floraciones estacionales de plancton (brotes de crecimiento) en los océanos. [105]

Detección de células cancerosas metastásicas

La metástasis es la propagación del cáncer de una parte del cuerpo a otra a través del sistema circulatorio o del sistema linfático. [106] A diferencia de las pruebas de imagenología radiológica (mamografías), que envían formas de energía (rayos X, campos magnéticos, etc.) a través del cuerpo para tomar solo imágenes interiores, los biosensores tienen el potencial de probar directamente el poder maligno del tumor. La combinación de un elemento biológico y detector permite un pequeño requisito de muestra, un diseño compacto, señales rápidas, detección rápida, alta selectividad y alta sensibilidad para el analito que se está estudiando. En comparación con las pruebas de imagenología radiológica habituales, los biosensores tienen la ventaja no solo de descubrir cuánto se ha propagado el cáncer y verificar si el tratamiento es efectivo, sino que también son formas más económicas y eficientes (en tiempo, costo y productividad) de evaluar la metástasis en etapas tempranas del cáncer.

Los investigadores en ingeniería biológica han creado biosensores oncológicos para el cáncer de mama. [107] El cáncer de mama es el cáncer más común entre las mujeres en todo el mundo. [108] Un ejemplo sería una microbalanza de cristal de cuarzo (QCM) de transferrina. Como biosensor, las microbalanzas de cristal de cuarzo producen oscilaciones en la frecuencia de la onda estacionaria del cristal a partir de un potencial alterno para detectar cambios de masa de nanogramos. Estos biosensores están diseñados específicamente para interactuar y tienen una alta selectividad para los receptores en las superficies de las células (cancerosas y normales). Idealmente, esto proporciona una detección cuantitativa de células con este receptor por área de superficie en lugar de una detección de imagen cualitativa dada por las mamografías.

Seda Atay, investigadora de biotecnología en la Universidad Hacettepe, observó experimentalmente esta especificidad y selectividad entre un QCM y células de mama MDA-MB 231 , células MCF 7 y células MDA-MB 231 hambrientas in vitro. [107] Con otros investigadores, ideó un método para lavar estas células metastásicas de diferentes niveles sobre los sensores para medir los cambios de masa debido a diferentes cantidades de receptores de transferrina. En particular, el poder metastásico de las células de cáncer de mama se puede determinar mediante microbalanzas de cristal de cuarzo con nanopartículas y transferrina que potencialmente se unirían a los receptores de transferrina en las superficies de las células cancerosas. Existe una selectividad muy alta para los receptores de transferrina porque están sobreexpresados ​​en las células cancerosas. Si las células tienen una alta expresión de receptores de transferrina, lo que muestra su alto poder metastásico, tienen mayor afinidad y se unen más al QCM que mide el aumento de masa. Dependiendo de la magnitud del cambio de masa en nanogramos, se puede determinar el poder metastásico.

Además, en los últimos años, se ha prestado una atención significativa a la detección de biomarcadores de cáncer de pulmón sin biopsia. En este sentido, los biosensores son herramientas muy atractivas y aplicables para proporcionar detecciones rápidas, sensibles, específicas, estables, rentables y no invasivas para el diagnóstico temprano del cáncer de pulmón. Por lo tanto, los biosensores de cáncer consisten en moléculas de biorreconocimiento específicas, como anticuerpos, sondas de ácidos nucleicos complementarios u otras biomoléculas inmovilizadas en la superficie de un transductor. Las moléculas de biorreconocimiento interactúan específicamente con los biomarcadores (objetivos) y las respuestas biológicas generadas son convertidas por el transductor en una señal analítica medible. Dependiendo del tipo de respuesta biológica, se utilizan varios transductores en la fabricación de biosensores de cáncer, como transductores electroquímicos, ópticos y basados ​​en masa. [109]

Detección de patógenos

Los biosensores podrían utilizarse para la detección de organismos patógenos. [102]

Se han desarrollado biosensores integrados para firmas patógenas, como el SARS-CoV-2 , que son portátiles , como mascarillas faciales con pruebas incorporadas . [110] [111] Véase también: I+D del transporte público contra la COVID-19

Los nuevos tipos de chips biosensores podrían permitir métodos novedosos, como sensores de patógenos desplegados por drones que supervisen activamente el aire o las aguas residuales. Los aptámeros de unión a proteínas podrían usarse para realizar pruebas de patógenos de enfermedades infecciosas. [112] Los sistemas de pieles electrónicas (o pieles robóticas) con biosensores (o sensores químicos) incorporados e interfaces hombre-máquina pueden permitir la detección de patógenos (así como de varios materiales peligrosos y percepciones táctiles ) mediante dispositivos portátiles o de detección remota o robóticos . [113] [ cita(s) adicional(es) necesaria(s) ]

Tipos

Biosensores ópticos

Muchos biosensores ópticos se basan en el fenómeno de las técnicas de resonancia plasmónica de superficie (SPR). [114] [115] Esto utiliza una propiedad del oro y otros materiales (metales); [116] específicamente, que una capa delgada de oro sobre una superficie de vidrio de alto índice de refracción puede absorber la luz láser, produciendo ondas de electrones (plasmones de superficie) en la superficie del oro. Esto ocurre solo en un ángulo y longitud de onda específicos de luz incidente y depende en gran medida de la superficie del oro, de modo que la unión de un analito objetivo a un receptor en la superficie del oro produce una señal medible.

Los sensores de resonancia de plasmón superficial funcionan utilizando un chip sensor que consiste en un casete de plástico que soporta una placa de vidrio, uno de cuyos lados está recubierto con una capa microscópica de oro. Este lado entra en contacto con el aparato de detección óptica del instrumento. El lado opuesto se pone en contacto con un sistema de flujo microfluídico. El contacto con el sistema de flujo crea canales a través de los cuales se pueden pasar reactivos en solución. Este lado del chip sensor de vidrio se puede modificar de varias maneras para permitir la fácil adhesión de moléculas de interés. Normalmente está recubierto de carboximetil dextrano o un compuesto similar.

El índice de refracción en el lado de flujo de la superficie del chip tiene una influencia directa en el comportamiento de la luz reflejada por el lado dorado. La unión al lado de flujo del chip tiene un efecto en el índice de refracción y de esta manera las interacciones biológicas se pueden medir con un alto grado de sensibilidad con algún tipo de energía. El índice de refracción del medio cerca de la superficie cambia cuando las biomoléculas se adhieren a la superficie y el ángulo SPR varía en función de este cambio.

La luz de una longitud de onda fija se refleja en el lado dorado del chip en el ángulo de reflexión interna total y se detecta dentro del instrumento. El ángulo de la luz incidente se varía para que coincida con la velocidad de propagación de la onda evanescente con la velocidad de propagación de los polaritones plasmónicos de la superficie. [117] Esto induce a la onda evanescente a penetrar a través de la placa de vidrio y cierta distancia dentro del líquido que fluye sobre la superficie.

Otros biosensores ópticos se basan principalmente en cambios en la absorbancia o fluorescencia de un compuesto indicador apropiado y no necesitan una geometría de reflexión interna total. Por ejemplo, se ha fabricado un prototipo de dispositivo totalmente operativo que detecta caseína en la leche. El dispositivo se basa en la detección de cambios en la absorción de una capa de oro. [118] Una herramienta de investigación ampliamente utilizada, la micromatriz, también puede considerarse un biosensor.

Biosensores biológicos

Los biosensores biológicos, también conocidos como sensores optogenéticos , a menudo incorporan una forma genéticamente modificada de una proteína o enzima nativa. La proteína está configurada para detectar un analito específico y la señal resultante es leída por un instrumento de detección como un fluorómetro o luminómetro. Un ejemplo de un biosensor desarrollado recientemente es uno para detectar la concentración citosólica del analito cAMP (monofosfato de adenosina cíclico), un segundo mensajero involucrado en la señalización celular desencadenada por ligandos que interactúan con receptores en la membrana celular. [119] Se han creado sistemas similares para estudiar las respuestas celulares a ligandos nativos o xenobióticos (toxinas o inhibidores de moléculas pequeñas). Tales "ensayos" se utilizan comúnmente en el desarrollo del descubrimiento de fármacos por parte de empresas farmacéuticas y biotecnológicas. La mayoría de los ensayos de cAMP en uso actual requieren la lisis de las células antes de la medición de cAMP. Un biosensor de células vivas para cAMP se puede utilizar en células no lisadas con la ventaja adicional de múltiples lecturas para estudiar la cinética de la respuesta del receptor.

Los nanobiosensores utilizan una sonda biorreceptora inmovilizada que es selectiva para las moléculas de analito objetivo. Los nanomateriales son sensores químicos y biológicos sumamente sensibles. Los materiales a escala nanométrica presentan propiedades únicas. Su gran relación área-volumen permite lograr reacciones rápidas y de bajo costo, utilizando una variedad de diseños. [120]

Se han comercializado otros biosensores de ondas evanescentes que utilizan guías de ondas en las que la constante de propagación a través de la guía de ondas cambia con la absorción de moléculas en su superficie. Un ejemplo de ello es la interferometría de polarización dual , que utiliza una guía de ondas enterrada como referencia con la que se mide el cambio en la constante de propagación. Otras configuraciones, como la de Mach-Zehnder, tienen brazos de referencia definidos litográficamente sobre un sustrato. Se pueden lograr niveles más altos de integración utilizando geometrías de resonador en las que la frecuencia de resonancia de un resonador de anillo cambia cuando se absorben moléculas. [121] [122]

Dispositivos electrónicos para la nariz

Recientemente, se han aplicado conjuntos de muchas moléculas detectoras diferentes en los llamados dispositivos de nariz electrónica , donde el patrón de respuesta de los detectores se utiliza para identificar una sustancia. [123] En el detector de olores Wasp Hound , el elemento mecánico es una cámara de vídeo y el elemento biológico son cinco avispas parásitas que han sido condicionadas a agruparse en respuesta a la presencia de una sustancia química específica. [124] Sin embargo, las narices electrónicas comerciales actuales no utilizan elementos biológicos.

Biosensores de ADN

El ADN puede ser el analito de un biosensor, siendo detectado a través de medios específicos, pero también puede utilizarse como parte de un biosensor o, teóricamente, incluso como un biosensor completo.

Existen muchas técnicas para detectar ADN, que normalmente es un medio para detectar organismos que tienen ese ADN en particular. También se pueden utilizar secuencias de ADN como se describió anteriormente. Pero existen enfoques más avanzados, en los que se puede sintetizar ADN para contener enzimas en un gel biológico estable. [125] Otras aplicaciones son el diseño de aptámeros, secuencias de ADN que tienen una forma específica para unirse a una molécula deseada. Los procesos más innovadores utilizan origami de ADN para esto, creando secuencias que se pliegan en una estructura predecible que es útil para la detección. [126] [127]

Los científicos han construido prototipos de sensores para detectar el ADN de los animales a partir del aire aspirado, el "ADN transportado por el aire". [128]

Las "nanoantenas" hechas de ADN –un nuevo tipo de antena óptica a escala nanométrica– pueden unirse a las proteínas y producir una señal a través de fluorescencia cuando estas realizan sus funciones biológicas, en particular para cambios conformacionales específicos . [129] [130]

Biosensor basado en grafeno

El grafeno es una sustancia bidimensional basada en carbono con propiedades ópticas, eléctricas, mecánicas, térmicas y mecánicas superiores. La capacidad de absorber e inmovilizar una variedad de proteínas, particularmente algunas con estructuras de anillo de carbono, ha demostrado que el grafeno es un excelente candidato como transductor de biosensores. Como resultado, se han explorado y desarrollado varios biosensores basados ​​en grafeno en los últimos tiempos. [14] [131] El grafeno se ha empleado como biosensor en varios formatos, especialmente sensores electroquímicos y transistores de efecto de campo. Entre ellos, los transistores de efecto de campo de grafeno (GFET) en particular han demostrado un excelente rendimiento como diagnósticos rápidos en el punto de atención (PoC), como se observa a través de un aumento en el número de artículos de investigación que informan sobre diagnósticos de COVID-19 utilizando GFET. Se ha informado que tienen uno de los límites de detección más bajos, al mismo tiempo que tienen un tiempo de respuesta rápido de unos pocos segundos junto con capacidades de multiplexación. [132] Estas capacidades permiten la detección inmediata de enfermedades, especialmente en casos con síntomas superpuestos que son difíciles de distinguir al principio, lo que permite obtener mejores resultados para los pacientes, especialmente en entornos médicos con recursos limitados.

Véase también

Referencias

  1. ^ ab Khalilian, Alireza; Khan, Md. Rajibur Rahaman; Kang, Shin-Won (2017). "Sensor de sabor de fibra óptica pulido lateralmente, altamente sensible y de amplio rango dinámico". Sensors and Actuators B . 249 : 700–707. doi :10.1016/j.snb.2017.04.088.
  2. ^ Turner, Anthony; Wilson, George; Kaube, Isao (1987). Biosensores: Fundamentos y aplicaciones . Oxford, Reino Unido: Oxford University Press. p. 770. ISBN 978-0198547242.
  3. ^ Bănică, Florinel-Gabriel (2012). Sensores químicos y biosensores: fundamentos y aplicaciones . Chichester, Reino Unido: John Wiley & Sons. pág. 576. ISBN 9781118354230.
  4. ^ Dincer, Can; Bruch, Richard; Costa-Rama, Estefanía; Fernández-Abedul, Maria Teresa; Merkoçi, Arben; Manz, Andreas; Urban, Gerald Anton; Güder, Firat (15 de mayo de 2019). "Sensores desechables en diagnóstico, alimentación y monitorización medioambiental". Materiales avanzados . 31 (30): 1806739. Bibcode :2019AdM....3106739D. doi : 10.1002/adma.201806739 . hdl : 10044/1/69878 . ISSN  0935-9648. PMID  31094032.
  5. ^ Cavalcanti A, Shirinzadeh B, Zhang M, Kretly LC (2008). "Arquitectura de hardware de nanorobots para defensa médica" (PDF) . Sensors . 8 (5): 2932–2958. Bibcode :2008Senso...8.2932C. doi : 10.3390/s8052932 . PMC 3675524 . PMID  27879858. 
  6. ^ Kaur, Harmanjit; Shorie, Munish (2019). "Aptasensores basados ​​en nanomateriales para aplicaciones de diagnóstico clínico y ambiental". Nanoscale Advances . 1 (6): 2123–2138. Bibcode :2019NanoA...1.2123K. doi : 10.1039/C9NA00153K . PMC 9418768 . PMID  36131986. 
  7. ^ A. Hierlemann, O. Brand, C. Hagleitner, H. Baltes, "Técnicas de microfabricación para sensores químicos/biosensores", Actas del IEEE 91 (6), 2003, 839–863.
  8. ^ A. Hierlemann, H. Baltes, "Microsensores químicos basados ​​en CMOS", The Analyst 128 (1), 2003, págs. 15-28.
  9. ^ "Biosensors Primer". Archivado desde el original el 2 de enero de 2017. Consultado el 28 de enero de 2013 .
  10. ^ Dincer, Can; Bruch, Richard; Kling, André; Dittrich, Petra S.; Urban, Gerald A. (agosto de 2017). "Pruebas multiplexadas en el punto de atención: xPOCT". Tendencias en biotecnología . 35 (8): 728–742. doi :10.1016/j.tibtech.2017.03.013. PMC 5538621 . PMID  28456344. 
  11. ^ Juzgado, A.; Solda, A.; Ostric, A.; Criado, A.; Valenti, G.; Rapino, S.; Conti, G.; Fracasso, G.; Paolucci, F.; Prato, M. (2017). "Detección por electroquimioluminiscencia de alta sensibilidad de un biomarcador de cáncer de próstata". J. Mater. Química. B . 5 (32): 6681–6687. doi :10.1039/c7tb01557g. PMID  32264431.
  12. ^ Vo-Dinh, T.; Cullum, B. (2000). "Biosensores y biochips: avances en diagnósticos biológicos y médicos". Fresenius' Journal of Analytical Chemistry . 366 (6–7): 540–551. doi :10.1007/s002160051549. PMID  11225766. S2CID  23807719.
  13. ^ Valenti, G.; Rampazzo, E.; Biavardi, E.; Villani, E.; Fracasso, G.; Marcaccio, M.; Bertani, F.; Ramarli, D.; Dalcanale, E.; Paolucci, F.; Prodi, L. (2015). "Un enfoque electroquimioluminiscencia supramolecular para la detección de sarcosina para el diagnóstico temprano del cáncer de próstata". Faraday discutir . 185 : 299–309. Código Bib : 2015FaDi..185..299V. doi :10.1039/c5fd00096c. PMID  26394608.
  14. ^ ab Parizi, Mohammad Salemizadeh; Salemizadehparizi, Fatemeh; Zarasvand, Mahdi Molaei; Abdolhosseini, Saeed; Bahadori-Haghighi, Shahram; Khalilian, Alireza (2022). "Biosensor de alto rendimiento basado en grafeno que utiliza una metasuperficie de discos de silicio asimétricos". Revista de sensores IEEE . 22 (3): 2037-2044. Código Bib : 2022ISenJ..22.2037P. doi :10.1109/JSEN.2021.3134205. S2CID  245069669.
  15. ^ ab Marazuela, M.; Moreno-Bondi, M. (2002). "Biosensores de fibra óptica: una visión general". Química analítica y bioanalítica . 372 (5–6): 664–682. doi :10.1007/s00216-002-1235-9. PMID  11941437. S2CID  36791337.
  16. ^ Stowell, Sean; Guarner, Jeannette (5 de noviembre de 2020). "Papel de la serología en la pandemia de enfermedad por coronavirus 2019". Enfermedades Infecciosas Clínicas . 71 (8): 1935-1936. doi : 10.1093/cid/ciaa510. PMC 7197618 . PMID  32357206. 
  17. ^ Crivianu-Gaita, V; Thompson, M (noviembre de 2016). "Aptámeros, fragmentos scFv de anticuerpos y fragmentos Fab' de anticuerpos: una descripción general y una comparación de tres de los elementos de biorreconocimiento de biosensores más versátiles". Biosens Bioelectron . 85 : 32–45. doi :10.1016/j.bios.2016.04.091. PMID  27155114.
  18. ^ Skrlec, K; Strukelj, B; Berlec, A (julio de 2015). "Andamiajes no inmunoglobulina: un enfoque en sus objetivos". Trends Biotechnol . 33 (7): 408–418. doi :10.1016/j.tibtech.2015.03.012. PMID  25931178.
  19. ^ Jost, C; Plückthun, A (agosto de 2014). "Proteínas diseñadas con especificidad deseada: DARPins, otros andamiajes alternativos e IgG biespecíficas". Curr Opin Struct Biol . 27 : 102–112. doi :10.1016/j.sbi.2014.05.011. PMID  25033247.
  20. ^ ab Brient-Litzler, E; Plückthun, A; Bedouelle, H (abril de 2010). "Diseño basado en el conocimiento de biosensores fluorescentes sin reactivos a partir de una proteína de repetición de anquirina diseñada" (PDF) . Protein Eng Des Sel . 23 (4): 229–241. doi : 10.1093/protein/gzp074 . PMID  19945965.
  21. ^ ab Miranda, FF; Brient-Litzler, E; Zidane, N; Pecorari, F; Bedouelle, Hugues (junio de 2011). "Biosensores fluorescentes sin reactivos a partir de familias artificiales de proteínas de unión a antígenos". Biosens Bioelectron . 26 (10): 4184–4190. doi :10.1016/j.bios.2011.04.030. PMID  21565483.
  22. ^ JS Schultz; S. Mansouri; IJ Goldstein (1982). "Sensor de afinidad: una nueva técnica para desarrollar sensores implantables para glucosa y otros metabolitos". Diabetes Care . 5 (3): 245–253. doi :10.2337/diacare.5.3.245. PMID  6184210. S2CID  20186661.
  23. ^ JS Schultz; G. Sims (1979). "Sensores de afinidad para metabolitos individuales". Biotechnol. Bioeng. Symp . 9 (9): 65–71. PMID  94999.
  24. ^ R. Ballerstadt; JS Schultz (2000). "Un sensor de fibra hueca con afinidad de fluorescencia para la monitorización continua de la glucosa transdérmica". Anal. Chem . 72 (17): 4185–4192. doi :10.1021/ac000215r. PMID  10994982.
  25. ^ Kaur, Harmanjit; Shorie, Munish (29 de abril de 2019). "Aptasensores basados ​​en nanomateriales para aplicaciones de diagnóstico clínico y ambiental". Nanoscale Advances . 1 (6): 2123–2138. Bibcode :2019NanoA...1.2123K. doi : 10.1039/C9NA00153K . PMC 9418768 . PMID  36131986. 
  26. ^ Sefah, Kwame (2010). "Desarrollo de aptámeros de ADN utilizando Cell-SELEX". Nature Protocols . 5 (6): 1169–1185. doi :10.1038/nprot.2010.66. PMID  20539292. S2CID  4953042.
  27. ^ Shorie, Munish; Kaur, Harmanjit (20 de octubre de 2018). "Método Cell-SELEX basado en placa de microtitulación". Bio-Protocol . 8 (20): e3051. doi :10.21769/BioProtoc.3051. PMC 8342047 . PMID  34532522. 
  28. ^ Montserrat Pagès, Aida (2021). "Bioensayo de solo ADN para la detección simultánea de proteínas y ácidos nucleicos". Química analítica y bioanalítica . 413 (20): 4925–4937. doi :10.1007/s00216-021-03458-6. PMC 8238030 . PMID  34184101. 
  29. ^ Donzella, V; Crea, F (junio de 2011). "Biosensores ópticos para analizar nuevos biomarcadores en oncología". J Biophotonics . 4 (6): 442–52. doi :10.1002/jbio.201000123. PMID  21567973. S2CID  5190250.
  30. ^ Vollmer, F; Yang, Lang (octubre de 2012). "Detección sin etiquetas con microcavidades de alto Q: una revisión de los mecanismos de biodetección para dispositivos integrados". Nanophotonics . 1 (3–4): 267–291. Bibcode :2012Nanop...1..267V. doi :10.1515/nanoph-2012-0021. PMC 4764104 . PMID  26918228. 
  31. ^ "Inicio - Proyecto GLAM - Biosensor Multiplexado de Vidrio y Láser". Proyecto GLAM - Biosensor Multiplexado de Vidrio y Láser .
  32. ^ Rizzuto, R.; Pintón, P.; Brini, M.; Chiesa, A.; Filippin, L.; Pozzan, T. (1999). "Las mitocondrias como biosensores de microdominios de calcio". Calcio celular . 26 (5): 193–199. doi :10.1054/ceca.1999.0076. PMID  10643557.
  33. ^ Bragadin, M.; Manente, S.; Piazza, R.; Scutari, G. (2001). "Las mitocondrias como biosensores para el monitoreo de compuestos detergentes en solución". Analytical Biochemistry . 292 (2): 305–307. doi :10.1006/abio.2001.5097. hdl : 10278/16452 . PMID  11355867.
  34. ^ Védrine, C.; Leclerc, J.-C.; Durrieu, C.; Tran-Minh, C. (2003). "Biosensor óptico de célula completa que utiliza Chlorella vulgaris diseñado para el monitoreo de herbicidas". Biosensores y bioelectrónica . 18 (4): 457–63. CiteSeerX 10.1.1.1031.5904 . doi :10.1016/s0956-5663(02)00157-4. PMID  12604263. 
  35. ^ Dubey, RS; Upadhyay, SN (2001). "Monitoreo de la corrosión microbiana mediante un biosensor microbiano amperométrico desarrollado utilizando células completas de Pseudomonas sp". Biosensores y bioelectrónica . 16 (9–12): 995–1000. doi :10.1016/s0956-5663(01)00203-2. PMID  11679280.
  36. ^ Campàs, M.; Carpentier, R.; Rouillon, R. (2008). "Biosensores basados ​​en tejidos vegetales y fotosíntesis". Avances en biotecnología . 26 (4): 370–378. doi :10.1016/j.biotechadv.2008.04.001. PMID  18495408.
  37. ^ Petänen, T.; Virta, M.; Karp, M.; Romantschuk, M. (2001). "Construcción y uso de plásmidos sensores de mercurio y arsenito de amplio espectro en la bacteria del suelo Pseudomonas fluorescens OS8". Ecología microbiana . 41 (4): 360–368. Bibcode :2001MicEc..41..360P. doi :10.1007/s002480000095. PMID  12032610. S2CID  21147572.
  38. ^ Pickup, JC; Zhi, ZL; Khan, F; Saxl, T; Birch, DJ (2008). "Nanomedicina y su potencial en la investigación y la práctica de la diabetes". Diabetes Metab Res Rev . 24 (8): 604–10. doi :10.1002/dmrr.893. PMID  18802934. S2CID  39552342.
  39. ^ Gupta, R; Chaudhury, NK (mayo de 2007). "Atrapamiento de biomoléculas en una matriz sol-gel para aplicaciones en biosensores: problemas y perspectivas futuras". Biosens Bioelectron . 22 (11): 2387–99. doi :10.1016/j.bios.2006.12.025. PMID  17291744.
  40. ^ Clark, HA; Kopelman, R; Tjalkens, R; Philbert, MA (noviembre de 1999). "Nano sensores ópticos para análisis químico dentro de células vivas individuales. 2. Sensores de pH y calcio y la aplicación intracelular de sensores PEBBLE". Anal. Chem . 71 (21): 4837–43. doi :10.1021/ac990630n. PMID  10565275.
  41. ^ Liao, KC; Hogen-Esch, T; Richmond, FJ; Marcu, L; Clifton, W; Loeb, GE (mayo de 2008). "Sensor percutáneo de fibra óptica para la monitorización crónica de la glucosa in vivo". Biosens Bioelectron . 23 (10): 1458–65. doi :10.1016/j.bios.2008.01.012. PMID  18304798.
  42. ^ Bourzac, Katherine. "Imitación de biosensores corporales". technologyreview.com .
  43. ^ Lud, SQ; Nikolaides, MG; Haase, I.; Fischer, M.; Bausch, AR (2006). "Efecto de campo de cargas apantalladas: detección eléctrica de péptidos y proteínas mediante una resistencia de película delgada". ChemPhysChem . 7 (2): 379–384. doi :10.1002/cphc.200500484. PMID  16404758.
  44. ^ "Multivitamine Kaufberatung: So finden Sie das beste Präparat". Archivado desde el original el 18 de diciembre de 2014.
  45. ^ Gosai, Agnivo; Hau Yeah, Brendan Shin; Nilsen-Hamilton, Marit; Shrotriya, Pranav (2019). "Detección de trombina sin etiqueta en presencia de una alta concentración de albúmina utilizando una membrana nanoporosa funcionalizada con aptámeros". Biosensores y bioelectrónica . 126 : 88–95. doi :10.1016/j.bios.2018.10.010. PMC 6383723 . PMID  30396022. 
  46. ^ Sanguino, P.; Monteiro, T.; Bhattacharyya, SR; Dias, CJ; Igreja, R.; Franco, R. (2014). "Nanobarras de ZnO como capas de inmovilización para inmunosensores capacitivos interdigitados". Sensores y actuadores B-Chemical . 204 : 211–217. doi :10.1016/j.snb.2014.06.141.
  47. ^ Vockenroth I, Atanasova P, Knoll W, Jenkins A, Köper I (2005). "Membranas bicapa unidas funcionales como plataforma de biosensores". IEEE Sensors, 2005. págs. 608–610. doi :10.1109/icsens.2005.1597772. ISBN . 978-0-7803-9056-0.S2CID12490715  .
  48. ^ Cornell BA; BraachMaksvytis VLB; King LG; et al. (1997). "Un biosensor que utiliza interruptores de canales iónicos". Nature . 387 (6633): 580–583. Bibcode :1997Natur.387..580C. doi :10.1038/42432. PMID  9177344. S2CID  4348659.
  49. ^ Oh S; Cornell B; Smith D; et al. (2008). "Detección rápida del virus de la influenza A en muestras clínicas utilizando un biosensor de cambio de canal iónico". Biosensores y bioelectrónica . 23 (7): 1161–1165. doi :10.1016/j.bios.2007.10.011. PMID  18054481.
  50. ^ Krishnamurthy V, Monfared S, Cornell B (2010). "Biosensores de canal iónico, parte I, construcción, operación y estudios clínicos". IEEE Transactions on Nanotechnology . 9 (3): 313–322. Bibcode :2010ITNan...9..313K. doi :10.1109/TNANO.2010.2041466. S2CID  4957312.
  51. ^ "Proyecto Greensense: pruebas de cannabis y detección de fármacos". proyecto-greensense.eu .
  52. ^ Renard, M; Belkadi, L; Hugo, N; England, P; Altschuh, D; Bedouelle, H (abril de 2002). "Diseño basado en el conocimiento de biosensores fluorescentes sin reactivos a partir de anticuerpos recombinantes". J Mol Biol . 318 (2): 429–442. doi :10.1016/S0022-2836(02)00023-2. PMID  12051849.
  53. ^ Renard, M; Bedouelle, H (diciembre de 2004). "Mejora de la sensibilidad y el rango dinámico de los inmunosensores fluorescentes sin reactivos mediante un diseño basado en el conocimiento". Bioquímica . 43 (49): 15453–15462. CiteSeerX 10.1.1.622.3557 . doi :10.1021/bi048922s. PMID  15581357. S2CID  25795463. 
  54. ^ Renard, M; Belkadi, L; Bedouelle, H (febrero de 2003). "Obtención de restricciones topológicas a partir de datos funcionales para el diseño de inmunosensores fluorescentes sin reactivos". J. Mol. Biol . 326 (1): 167–175. doi :10.1016/S0022-2836(02)01334-7. PMID  12547199.
  55. ^ de Picciotto, S; Dickson, PM; Traxlmayr, MW; Marques, BS; Socher, E; Zhao, S; Cheung, S; Kiefer, JD; Wand, AJ; Griffith, LG; Imperiali, B; Wittrup, KD (julio de 2016). "Principios de diseño para biosensores exitosos: unión específica de fluoróforo/analito y minimización de interacciones de fluoróforo/andamio". J Mol Biol . 428 (20): 4228–4241. doi :10.1016/j.jmb.2016.07.004. PMC 5048519. PMID  27448945 . 
  56. ^ Kummer, L; Hsu, CW; Dagliyan, O; MacNevin, C; Kaufholz, M; Zimmermann, B; Dokholyan, NV; Hahn, KM; Plückthun, A (junio de 2013). "Diseño basado en el conocimiento de un biosensor para cuantificar la activación localizada de ERK en células vivas". Chem Biol . 20 (6): 847–856. doi :10.1016/j.chembiol.2013.04.016. PMC 4154710 . PMID  23790495. 
  57. ^ Strömberg, Mattias; Zardán Gómez de la Torre, Teresa; Nilsson, Mats; Svedlindh, Peter; Strømme, Maria (enero de 2014). "Un bioensayo basado en nanopartículas magnéticas proporciona una detección sensible de ADN bacteriano simple y biplex utilizando un susceptómetro de CA portátil". Revista de biotecnología . 9 (1): 137–145. doi :10.1002/biot.201300348. ISSN  1860-6768. PMC 3910167 . PMID  24174315. 
  58. ^ Liu, Paul; Skucha, Karl; Megens, Mischa; Boser, Bernhard (octubre de 2011). "Un sensor de efecto Hall CMOS para la caracterización y detección de nanopartículas magnéticas para aplicaciones biomédicas". IEEE Transactions on Magnetics . 47 (10): 3449–3451. Bibcode :2011ITM....47.3449L. doi :10.1109/TMAG.2011.2158600. ISSN  0018-9464. PMC 4190849 . PMID  25308989. 
  59. ^ Huang, Chih-Cheng; Zhou, Xiahan; Hall, Drew A. (4 de abril de 2017). "Biosensores magnetorresistivos gigantes para magnetorrelaxometría en el dominio del tiempo: una investigación teórica y progreso hacia un inmunoensayo". Scientific Reports . 7 (1): 45493. Bibcode :2017NatSR...745493H. doi :10.1038/srep45493. ISSN  2045-2322. PMC 5379630 . PMID  28374833. 
  60. ^ Zanut, A.; Fiorani, A.; Canola, S.; Saito, T.; Ziebart, N.; Rapino, S.; Rebeccani, S.; Barbon, A.; Irie, T.; Josel, H.; Negri, F.; Marcaccio, M.; Windfuhr, M.; Imai, K.; Valenti, G.; Paolucci, F. (2020). "Información sobre el mecanismo de electroquimioluminiscencia de coreactantes que facilita un mejor rendimiento bioanalítico". Nat. Commun . 11 (1): 2668. Bibcode :2020NatCo..11.2668Z. doi :10.1038/s41467-020-16476-2. PMC 7260178 . Número de modelo: PMID  32472057. Número de modelo: S2CID  218977697. 
  61. ^ Forster RJ, Bertoncello P, Keyes TE (2009). "Quimioluminiscencia electrogenerada". Revista anual de química analítica . 2 : 359–85. Bibcode :2009ARAC....2..359F. doi :10.1146/annurev-anchem-060908-155305. PMID  20636067.
  62. ^ Valenti G, Fiorani A, Li H, Sojic N, Paolucci F (2016). "Papel esencial de los materiales de electrodos en aplicaciones de electroquimioluminiscencia". ChemElectroChem . 3 (12): 1990–1997. doi :10.1002/celc.201600602. hdl : 11585/591485 .
  63. ^ Huff, Howard; Riordan, Michael (1 de septiembre de 2007). "Frosch y Derick: cincuenta años después (prólogo)". The Electrochemical Society Interface . 16 (3): 29. doi :10.1149/2.F02073IF. ISSN  1064-8208.
  64. ^ Frosch, CJ; Derick, L (1957). "Protección de superficies y enmascaramiento selectivo durante la difusión en silicio". Revista de la Sociedad Electroquímica . 104 (9): 547. doi :10.1149/1.2428650.
  65. ^ KAHNG, D. (1961). "Dispositivo de superficie de dióxido de silicio y silicio". Memorándum técnico de Bell Laboratories : 583–596. doi :10.1142/9789814503464_0076. ISBN 978-981-02-0209-5.
  66. ^ Lojek, Bo (2007). Historia de la ingeniería de semiconductores . Berlín, Heidelberg: Springer-Verlag Berlin Heidelberg. pág. 321. ISBN 978-3-540-34258-8.
  67. ^ Ligenza, JR; Spitzer, WG (1960). "Los mecanismos de oxidación del silicio en vapor y oxígeno". Revista de Física y Química de Sólidos . 14 : 131–136. Bibcode :1960JPCS...14..131L. doi :10.1016/0022-3697(60)90219-5.
  68. ^ Lojek, Bo (2007). Historia de la ingeniería de semiconductores . Springer Science & Business Media . pág. 120. ISBN. 9783540342588.
  69. ^ Park, Jeho; Nguyen, Hoang Hiep; Woubit, Abdela; Kim, Moonil (2014). "Aplicaciones de los biosensores de tipo transistor de efecto de campo (FET)". Applied Science and Convergence Technology . 23 (2): 61–71. doi : 10.5757/ASCT.2014.23.2.61 . ISSN  2288-6559. S2CID  55557610.
  70. ^ Clark, Leland C. ; Lyons, Champ (1962). "Sistemas de electrodos para la monitorización continua en cirugía cardiovascular". Anales de la Academia de Ciencias de Nueva York . 102 (1): 29–45. Bibcode :1962NYASA.102...29C. doi :10.1111/j.1749-6632.1962.tb13623.x. ISSN  1749-6632. PMID  14021529. S2CID  33342483.
  71. ^ abcd Bergveld, Piet (octubre de 1985). "El impacto de los sensores basados ​​en MOSFET" (PDF) . Sensores y actuadores . 8 (2): 109–127. Bibcode :1985SeAc....8..109B. doi :10.1016/0250-6874(85)87009-8. ISSN  0250-6874. Archivado desde el original (PDF) el 26 de abril de 2021 . Consultado el 9 de octubre de 2019 .
  72. ^ Chris Toumazou; Pantelis Georgiou (diciembre de 2011). "40 años de tecnología ISFET: desde la detección neuronal hasta la secuenciación del ADN". Electronics Letters . 47 : S7–S12. doi :10.1049/el.2011.3231 . Consultado el 13 de mayo de 2016 .
  73. ^ Bergveld, P. (enero de 1970). "Desarrollo de un dispositivo de estado sólido sensible a iones para mediciones neurofisiológicas". IEEE Transactions on Biomedical Engineering . BME-17 (1): 70–71. doi :10.1109/TBME.1970.4502688. PMID  5441220.
  74. ^ abc Schöning, Michael J.; Poghossian, Arshak (10 de septiembre de 2002). "Avances recientes en transistores de efecto de campo biológicamente sensibles (BioFET)" (PDF) . Analyst . 127 (9): 1137–1151. Bibcode :2002Ana...127.1137S. doi :10.1039/B204444G. ISSN  1364-5528. PMID  12375833.
  75. ^ Departamento de Salud y Servicios Humanos de los Estados Unidos; Administración de Alimentos y Medicamentos; Centro de Evaluación e Investigación de Medicamentos; Centro de Medicina Veterinaria; Oficina de Asuntos Regulatorios, eds. (septiembre de 2004), Guía para la industria: PAT: un marco para el desarrollo, la fabricación y el aseguramiento de la calidad de productos farmacéuticos innovadores (PDF)
  76. ^ Pasco, Neil; Glithero, Nick. Biosensor de lactosa en línea: ¿el primer biosensor industrial viable? "Copia archivada" (PDF) . Archivado desde el original (PDF) el 8 de febrero de 2013 . Consultado el 9 de febrero de 2016 .{{cite web}}: CS1 maint: copia archivada como título ( enlace )(consultado el 30 de enero de 2013).
  77. ^ Kling, Jim (2006). "Trasladar el diagnóstico del laboratorio a la cabecera del paciente". Nat. Biotechnol . 24 (8): 891–893. doi :10.1038/nbt0806-891. PMID  16900120. S2CID  32776079.
  78. ^ Quesada-González, Daniel; Merkoçi, Arben (2018). "Dispositivos basados ​​en nanomateriales para aplicaciones de diagnóstico en el punto de atención". Chemical Society Reviews . 47 (13): 4697–4709. doi :10.1039/C7CS00837F. ISSN  0306-0012. PMID  29770813.
  79. ^ Windmiller, Joshua Ray; Wang, Joseph (2013). "Sensores electroquímicos y biosensores portátiles: una revisión". Electroanálisis . 25 : 29–46. doi :10.1002/elan.201200349.
  80. ^ ab Birkholz, Mario; Glogener, Paul; Glös, Franziska; Basmer, Thomas; Theuer, Lorenz (2016). "Biosensor de funcionamiento continuo y su integración en un implante médico herméticamente sellado". Micromachines . 7 (10): 183. doi : 10.3390/mi7100183 . PMC 6190112 . PMID  30404356. 
  81. ^ Kotanen, Christian N.; Gabriel Moussy, Francisco; Carrara, Sandro; Guiseppi-Elie, Anthony (2012). "Biosensores amperométricos enzimáticos implantables". Biosensores y Bioelectrónica . 35 (1): 14-26. doi :10.1016/j.bios.2012.03.016. PMID  22516142.
  82. ^ Gough, David A.; Kumosa, Lucas S.; Routh, Timothy L.; Lin, Joe T.; Lucisano, Joseph Y. (2010). "Función de un sensor de glucosa tisular implantado durante más de un año en animales". Sci. Transl. Med . 2 (42): 42ra53. doi :10.1126/scitranslmed.3001148. PMC 4528300. PMID  20668297 . 
  83. ^ Mortellaro, Mark; DeHennis, Andrew (2014). "Caracterización del rendimiento de un sistema de monitorización continua de glucosa basado en fluorescencia y abiótico en pacientes con diabetes tipo 1". Biosens. Bioelectron . 61 : 227–231. doi : 10.1016/j.bios.2014.05.022 . PMID  24906080.
  84. ^ Quesada-González, Daniel; Merkoçi, Arben (2016). "Biosensores basados ​​en teléfonos móviles: una tecnología emergente de "diagnóstico y comunicación". Biosensores y bioelectrónica . 92 : 549–562. doi :10.1016/j.bios.2016.10.062. PMID  27836593.
  85. ^ Saharudin Haron Archivado el 5 de marzo de 2016 en Wayback Machine y Asim K. Ray (2006) Biodetección óptica de iones de cadmio y plomo en agua. Ingeniería médica y física , 28 (10). págs. 978–981.
  86. ^ ab "MolluSCAN eye". MolluSCAN eye . CNRS y Universidad de Burdeos. Archivado desde el original el 13 de noviembre de 2016. Consultado el 24 de junio de 2015 .
  87. ^ Lambrianou, Andreas; Demin, Soren; Hall, Elizabeth A. H (2008). Ingeniería de proteínas y biosensores electroquímicos . Avances en ingeniería bioquímica/biotecnología. Vol. 109. págs. 65–96. doi :10.1007/10_2007_080. ISBN 978-3-540-75200-4. Número de identificación personal  17960341.
  88. ^ Ghoshdastider U, Wu R, Trzaskowski B, Mlynarczyk K, Miszta P, Gurusaran M, Viswanathan S, Renugopalakrishnan V, Filipek S (2015). "Nanoencapsulación del dímero de glucosa oxidasa por grafeno". Avances de RSC . 5 (18): 13570–78. doi :10.1039/C4RA16852F.
  89. ^ Daaboul, GG; et al. (2010). "Sensor de imágenes por reflectancia interferométrica basado en LED para el monitoreo dinámico cuantitativo de interacciones biomoleculares". Biosens. Bioelectron . 26 (5): 2221–2227. doi :10.1016/j.bios.2010.09.038. PMID  20980139.
  90. ^ Ahn, S.; Freedman, DS; Massari, P.; Cabodi, M.; Ünlü, MS (2013). "Un enfoque de etiquetado de masas para una mayor sensibilidad de la detección dinámica de citocinas utilizando un biosensor sin etiquetas". Langmuir . 29 (17): 5369–5376. doi :10.1021/la400982h. PMID  23547938.
  91. ^ Reddington, A.; Trueb, JT; Freedman, DS; Tuysuzoglu, A.; Daaboul, GG; Lopez, CA; Karl, WC; Connor, JH; Fawcett, HE; ​​Ünlü, MS (2013). "Un sensor de imágenes de reflectancia interferométrica para diagnósticos virales en el punto de atención". IEEE Transactions on Biomedical Engineering . 60 (12): 3276–3283. doi :10.1109/tbme.2013.2272666. PMC 4041624 . PMID  24271115. 
  92. ^ ab Monroe, MR; Reddington, A.; Collins, AD; Laboda, CD; Cretich, M.; Chiari, M.; Little, FF; Ünlü, MS (2011). "Método multiplexado para calibrar y cuantificar la señal de fluorescencia para IgE específica de alérgeno". Química analítica . 83 (24): 9485–9491. doi :10.1021/ac202212k. PMC 3395232 . PMID  22060132. 
  93. ^ Yurt, A.; Daaboul, GG; Connor, JH; Goldberg, BB; Ünlü, MS (2012). "Detectores de nanopartículas individuales para aplicaciones biológicas". Nanoscale . 4 (3): 715–726. Bibcode :2012Nanos...4..715Y. doi :10.1039/c2nr11562j. PMC 3759154 . PMID  22214976. 
  94. ^ CA Lopez, GG Daaboul, RS Vedula, E. Ozkumur, DA Bergstein, TW Geisbert, H. Fawcett, BB Goldberg, JH Connor y MS Ünlü, "Detección de virus multiplexada sin etiquetas mediante imágenes de reflectancia espectral", Biosensors and Bioelectronics, 2011
  95. ^ Monroe, MR; Daaboul, GG; Tuysuzoglu, A.; Lopez, CA; Little, FF; Ünlü, MS (2013). "Detección de nanopartículas individuales para diagnósticos de proteínas multiplexadas con sensibilidad attomolar en suero y sangre completa sin procesar". Química analítica . 85 (7): 3698–3706. doi :10.1021/ac4000514. PMC 3690328 . PMID  23469929. 
  96. ^ Daaboul, GG; Yurt, A.; Zhang, X.; Hwang, GM; Goldberg, BB; Ünlü, MS (2010). "Detección y dimensionamiento de alto rendimiento de nanopartículas individuales de bajo índice y virus para la identificación de patógenos". Nano Letters . 10 (11): 4727–4731. Bibcode :2010NanoL..10.4727D. doi :10.1021/nl103210p. PMID  20964282.
  97. ^ Svigelj, Rossella; Zuliani, Iván; Grazioli, Cristian; Dossi, Nicolò; Toniolo, Rosanna (17 de marzo de 2022). "Un aptasensor electroquímico sin etiquetas eficaz basado en nanopartículas de oro para la detección de gluten". Nanomateriales . 12 (6): 987. doi : 10.3390/nano12060987 . PMC 8953296 . PMID  35335800. 
  98. ^ Svigelj, Rossella; Dossi, Nicoló; Pizzolato, Stefania; Toniolo, Rosana; Miranda-Castro, Rebeca; de-los-Santos-Álvarez, Noemí; Lobo-Castañón, María Jesús (1 de octubre de 2020). "Aptámeros truncados como receptores selectivos en un sensor de gluten que respalda la medición directa en un disolvente eutéctico profundo". Biosensores y Bioelectrónica . 165 : 112339. doi : 10.1016/j.bios.2020.112339. hdl : 10651/57640 . ISSN  0956-5663. PMID  32729482. S2CID  219902328.
  99. ^ Svigelj, Rossella; Dossi, Nicolò; Grazioli, Cristian; Toniolo, Rosanna (6 de octubre de 2021). "Biosensor de aptámero-anticuerpo basado en papel para la detección de gluten en un disolvente eutéctico profundo (DES)". Química analítica y bioanalítica . 414 (11): 3341–3348. doi :10.1007/s00216-021-03653-5. ISSN  1618-2650. PMC 8494473 . PMID  34617152. 
  100. ^ Bolognesi, Margherita; Prosa, Mario; Toerker, Michael; Lopez Sanchez, Laura; Wieczorek, Martin; Giacomelli, Caterina; Benvenuti, Emilia; Pellacani, Paola; Elferink, Alexander; Morschhauser, Andreas; Sola, Laura; Damin, Francesco; Chiari, Marcella; Whatton, Mark; Haenni, Etienne (junio de 2023). "Un biosensor óptico miniaturizado totalmente integrado para la detección plasmónica rápida y multiplexada de analitos de alto y bajo peso molecular". Materiales avanzados . 35 (26): e2208719. Código Bibliográfico :2023AdM....3508719B. doi : 10.1002/adma.202208719 . ISSN  0935-9648. Número de modelo: PMID  36932736. Número de modelo: S2CID  257603757.
  101. ^ Justino, Celine IL; Duarte, Armando C.; Rocha-Santos, Teresa AP (diciembre de 2017). "Progresos recientes en biosensores para monitoreo ambiental: una revisión". Sensors (Basilea, Suiza) . 17 (12): 2918. Bibcode :2017Senso..17.2918J. doi : 10.3390 /s17122918 . PMC 5750672. PMID  29244756. 
  102. ^ ab Alhadrami, Hani A. (2018). "Biosensores: clasificaciones, aplicaciones médicas y perspectivas futuras". Biotecnología y bioquímica aplicada . 65 (3): 497–508. doi : 10.1002/bab.1621 . ISSN:  1470-8744. PMID:  29023994. S2CID  : 27115648.
  103. ^ "Una computadora de ADN podría decirte si el agua que bebes está contaminada". New Scientist . Consultado el 16 de marzo de 2022 .
  104. ^ Jung, Jaeyoung K.; Archuleta, Chloé M.; Alam, Khalid K.; Lucks, Julius B. (17 de febrero de 2022). "Programación de biosensores libres de células con circuitos de desplazamiento de cadenas de ADN". Nature Chemical Biology . 18 (4): 385–393. doi :10.1038/s41589-021-00962-9. ISSN  1552-4469. PMC 8964419 . PMID  35177837. 
  105. ^ JG Black, "Principios y exploraciones", edición 5ª.
  106. ^ Hanahan, Douglas; Weinberg, Robert A. (2011). "Características del cáncer: la próxima generación". Cell . 144 (5): 646–74. doi : 10.1016/j.cell.2011.02.013 . PMID  21376230.
  107. ^ ab Atay, Seda; Pişkin, Kevser; Yılmaz, Fatma; Çakır, Canan; Yavuz, Handán; Denizli, Adil (2016). "Biosensores basados ​​en microbalanza de cristal de cuarzo para detectar células de cáncer de mama altamente metastásicas a través de sus receptores de transferrina". Anal. Métodos . 8 (1): 153–61. doi :10.1039/c5ay02898a.
  108. ^ Nordqvist, Christian. "Cáncer de mama Cáncer / Oncología Salud de la mujer / Ginecología Cáncer de mama: causas, síntomas y tratamientos". Medical News Today. Np, 5 de mayo de 2016. Web.
  109. ^ Khanmohammadi, Akbar; Aghaie, Ali; Vahedi, Ensieh; Qazvini, Ali; Ghanei, Mostafa; Afkhami, Abbas; Hajian, Ali; Bagheri, Hasan (2020). "Biosensores electroquímicos para la detección de biomarcadores de cáncer de pulmón: una revisión". Talanta . 206 : 120251. doi : 10.1016/j.talanta.2019.120251 . PMID  31514848.
  110. ^ "Mascarillas faciales que permiten diagnosticar COVID-19". medicalxpress.com . Consultado el 11 de julio de 2021 .
  111. ^ Nguyen, Peter Q.; Soenksen, Luis R.; Donghia, Nina M.; Angenent-Mari, Nicolaas M.; de Puig, Helena; Huang, aliado; Lee, rosa; Slomović, Shimyn; Galbersanini, Tommaso; Lansberry, Geoffrey; Sallum, Hani M.; Zhao, Evan M.; Niemi, James B.; Collins, James J. (28 de junio de 2021). "Materiales portátiles con sensores de biología sintética integrados para la detección de biomoléculas". Biotecnología de la Naturaleza . 39 (11): 1366-1374. doi : 10.1038/s41587-021-00950-3 . hdl : 1721.1/131278 . ISSN  1546-1696. Número de modelo: PMID  34183860. Número de modelo: S2CID  235673261.
  112. ^ Más completo, Carl W.; Padayatti, Pío S.; Abderrahim, Hadi; Adamiak, Lisa; Alagar, Nolan; Ananthapadmanabhan, Nagaraj; Baek, Jihye; Chinni, Sarat; Choi, Chulmin; Delaney, Kevin J.; Dubielzig, rico; Frkanec, Julie; García, Chris; Gardner, Calvino; Gebhardt, Daniel; Geiser, Tim; Gutiérrez, Zacarías; Salón, Drew A.; Hodges, Andrew P.; Hou, Guangyuan; Jainista, Sonal; Jones, Teresa; Lobatón, Raymond; Majzik, Zsolt; Marte, Allen; Mohán, Prateek; Mola, Pablo; Mudondo, Pablo; Mullinix, James; Nguyen, Thuan; Ollinger, Federico; Orr, Sara; Ouyang, Yuxuan; Pan, Pablo; Parque, Namseok; Porras, David; Prabhu, Keshav; Reese, Cassandra; Ruel, Travers; Sauerbrey, Trevor; Sawyer, Jaymie R.; Sinha, Prem; Tu, Jacky; Venkatesh, AG; VijayKumar, Sushmitha; Zheng, Le; Jin, Sungho; Tour, James M .; Church, George M.; Mola, Paul W.; Merriman, Barry (1 de febrero de 2022). "Sensores de electrónica molecular en un chip semiconductor escalable: una plataforma para la medición de la cinética de unión y la actividad enzimática de moléculas individuales". Actas de la Academia Nacional de Ciencias . 119 (5). Bibcode :2022PNAS..11912812F. doi : 10.1073/pnas.2112812119 . ISSN  0027-8424. PMC 8812571 . Número de modelo:  PMID35074874. 
  113. ^ Yu, tú; Li, Jiahong; Salomón, Samuel A.; Min, Jihong; Tu, Jiaobing; Guo, Wei; Xu, Changhao; Canción, Yu; Gao, Wei (1 de junio de 2022). "Interfaz hombre-máquina suave totalmente impresa para detección fisicoquímica robótica". Robótica científica . 7 (67): eabn0495. doi : 10.1126/scirobotics.abn0495. ISSN  2470-9476. PMC 9302713 . PMID  35648844. 
  114. ^ S. Zeng; Baillargeat, Dominique; Ho, Ho-Pui; Yong, Ken-Tye; et al. (2014). "Nanomaterials improved surface plasmon resonance for biological and chemical sensing applications" (PDF) . Chemical Society Reviews . 43 (10): 3426–3452. doi :10.1039/C3CS60479A. hdl :10356/102043. PMID  24549396. Archivado desde el original (PDF) el 6 de enero de 2016 . Consultado el 14 de septiembre de 2015 .
  115. ^ Krupin, O.; Wang, C.; Berini, P. (2016). "Biosensor plasmónico óptico para la detección de leucemia". SPIE Newsroom (22 de enero de 2016). doi :10.1117/2.1201512.006268.
  116. ^ Damborský, Pavel; Švitel, Juraj; Katrlík, Jaroslav (30 de junio de 2016). "Biosensores ópticos". Ensayos de Bioquímica . 60 (1): 91-100. doi :10.1042/EBC20150010. ISSN  0071-1365. PMC 4986466 . PMID  27365039. 
  117. ^ Homola J (2003). "Presente y futuro de los biosensores de resonancia de plasmones de superficie". Anal. Bioanal. Chem . 377 (3): 528–539. doi :10.1007/s00216-003-2101-0. PMID  12879189. S2CID  14370505.
  118. ^ Hiep, HM; et al. (2007). "Un inmunosensor basado en resonancia de plasmón superficial localizado para la detección de caseína en leche". Sci. Technol. Adv. Mater . 8 (4): 331–338. Bibcode :2007STAdM...8..331M. doi : 10.1016/j.stam.2006.12.010 .
  119. ^ Fan, F.; et al. (2008). "Nuevos biosensores codificados genéticamente que utilizan luciferasa de luciérnaga". ACS Chem. Biol . 3 (6): 346–51. doi :10.1021/cb8000414. PMID  18570354.
  120. ^ Urban, Gerald A (2009). "Microbiosensores y nanobiosensores: estado del arte y tendencias". Meas. Sci. Technol . 20 (1): 012001. Bibcode :2009MeScT..20a2001U. doi :10.1088/0957-0233/20/1/012001. S2CID  116936804.
  121. ^ Iqbal, M.; Gleeson, MA; Spaugh, B.; Tybor, F.; Gunn, WG; Hochberg, M.; Baehr-Jones, T.; Bailey, RC; Gunn, LC (2010). "Matrices de biosensores sin etiquetas basadas en resonadores de anillo de silicio e instrumentación de escaneo óptico de alta velocidad". IEEE Journal of Selected Topics in Quantum Electronics . 16 (3): 654–661. Bibcode :2010IJSTQ..16..654I. doi :10.1109/jstqe.2009.2032510. S2CID  41944216.
  122. ^ J. Witzens; M. Hochberg (2011). "Detección óptica de la agregación inducida por moléculas diana de nanopartículas mediante resonadores de alta calidad". Opt. Express . 19 (8): 7034–7061. Bibcode :2011OExpr..19.7034W. doi : 10.1364/oe.19.007034 . PMID  21503017.
  123. ^ "El sensor de la UCSB detecta explosivos mediante microfluidos y podría reemplazar al Rover en el aeropuerto (vídeo)". Soluciones microfluídicas. 8 de diciembre de 2012. Archivado desde el original el 4 de julio de 2014.
  124. ^ "Wasp Hound". Science Central. Archivado desde el original el 16 de julio de 2011. Consultado el 23 de febrero de 2011 .
  125. ^ Huang, Yishun; Xu, Wanlin; Liu, Guoyuan; Tian, ​​Leilei (2017). "Un hidrogel de ADN puro con capacidad catalítica estable producido mediante amplificación por círculo rodante en un solo paso". Chemical Communications . 53 (21): 3038–3041. doi :10.1039/C7CC00636E. ISSN  1359-7345. PMID  28239729.
  126. ^ Tinnefeld, Philip; Acuna, Guillermo P.; Wei, Qingshan; Ozcan, Aydogan; Ozcan, Aydogan; Ozcan, Aydogan; Vietz, Carolin; Lalkens, Birka; Trofymchuk, Kateryna; Close, Cindy M.; Inan, Hakan (15 de abril de 2019). "Nanoherramientas de origami de ADN para biodetección de moléculas individuales y microscopía de superresolución". Congreso de biofotónica: Congreso de óptica en las ciencias de la vida 2019 (BODA, BRAIN, NTM, OMA, OMP) (2019), artículo AW5E.5 . Sociedad Óptica de América: AW5E.5. doi :10.1364/OMA.2019.AW5E.5. ISBN 978-1-943580-54-5.S2CID210753045  .
  127. ^ Selnihhin, Denis; Sparvath, Steffen Møller; Preus, Søren; Birkedal, Victoria; Andersen, Ebbe Sloth (26 de junio de 2018). "Baliza de origami de ADN multifluoróforo como plataforma de biodetección". ACS Nano . 12 (6): 5699–5708. doi : 10.1021/acsnano.8b01510. ISSN  1936-086X. PMID  29763544. S2CID  206719944.
  128. ^ "Los científicos extrajeron ADN animal de la nada por primera vez". Noticias de ciencia . 18 de enero de 2022 . Consultado el 29 de enero de 2022 .
  129. ^ "Los químicos utilizan el ADN para construir la antena más pequeña del mundo". Universidad de Montreal . Consultado el 19 de enero de 2022 .
  130. ^ Harroun, Scott G.; Lauzon, Dominic; Ebert, Maximilian CCJC; Desrosiers, Arnaud; Wang, Xiaomeng; Vallée-Bélisle, Alexis (enero de 2022). "Monitoreo de cambios conformacionales de proteínas usando nanoantenas fluorescentes". Nature Methods . 19 (1): 71–80. doi : 10.1038/s41592-021-01355-5 . ISSN  1548-7105. PMID  34969985. S2CID  245593311.
  131. ^ Khayamian, Mohammad Ali; Parizi, Mohammad Salemizadeh; Ghaderinia, Mohammadreza; Abadijoo, Hamed; Vanaei, Shohreh; Simaee, Hossein; Abdolhosseini, Saeed; Shalileh, Shahriar; Faramarzpour, Mahsa; Naeini, Vahid Fadaei; Hoseinpour, París; Shojaeian, Fatemeh; Abbasvandi, Fereshteh; Abdolahad, Mohammad (2021). "Un biosensor impedimétrico basado en grafeno sin etiquetas para el seguimiento en tiempo real de la tormenta de citocinas en el suero sanguíneo; adecuado para la detección de pacientes con COVID-19". Avances de RSC . 11 (55): 34503–34515. Código Bib : 2021RSCAD..1134503K. doi :10.1039/D1RA04298J. PMC 9042719. PMID 35494759  . 
  132. ^ Kumar, Neelotpala; Towers, Dalton; Myers, Samantha; Galvin, Cooper; Kireev, Dmitry; Ellington, Andrew D.; Akinwande, Deji (13 de septiembre de 2023). "Biosensor de efecto de campo de grafeno para la detección concurrente y específica del SARS-CoV-2 y la gripe". ACS Nano . 17 (18): 18629–18640. doi :10.1021/acsnano.3c07707. ISSN  1936-0851. PMID  37703454.

Bibliografía

  • Frieder Scheller y Florian Schubert (1989). Biosensores . Akademie-Verlag, Berlín. ISBN 978-3-05-500659-3.
  • Massimo Grattarola y Giuseppe Massobrio (1998). Manual de bioelectrónica: MOSFET, biosensores y neuronas . McGraw-Hill, Nueva York. ISBN 978-0070031746.
  • Rascando la superficie de los biosensores: una visión instantánea que analiza cómo la química de la superficie permite que los biosensores de silicio poroso cumplan su promesa de la Royal Society of Chemistry
Obtenido de "https://es.wikipedia.org/w/index.php?title=Biosensor&oldid=1247284631"