Receptor nicotínico de acetilcolina

Receptores de acetilcolina llamados así por su unión selectiva a la nicotina.
Acetilcolina
Nicotina

Los receptores nicotínicos de acetilcolina , o nAChR , son polipéptidos receptores que responden al neurotransmisor acetilcolina . Los receptores nicotínicos también responden a fármacos como el agonista nicotina . Se encuentran en el sistema nervioso central y periférico, los músculos y muchos otros tejidos de muchos organismos. En la unión neuromuscular son el receptor principal en el músculo para la comunicación nervio-músculo motor que controla la contracción muscular. En el sistema nervioso periférico : (1) transmiten señales salientes de las células presinápticas a las postsinápticas dentro del sistema nervioso simpático y parasimpático , y (2) son los receptores que se encuentran en el músculo esquelético que reciben la acetilcolina liberada para indicar la contracción muscular. En el sistema inmunológico, los nAChR regulan los procesos inflamatorios y envían señales a través de vías intracelulares distintas. [1] En los insectos , el sistema colinérgico se limita al sistema nervioso central . [2]

Los receptores nicotínicos se consideran receptores colinérgicos , ya que responden a la acetilcolina. Los receptores nicotínicos reciben su nombre de la nicotina , que no estimula los receptores muscarínicos de acetilcolina, sino que se une selectivamente a los receptores nicotínicos. [3] [4] [5] El receptor muscarínico de acetilcolina también recibe su nombre de una sustancia química que se une selectivamente a ese receptor : la muscarina . [6] La acetilcolina en sí se une a los receptores de acetilcolina tanto muscarínicos como nicotínicos. [7]

Como receptores ionotrópicos , los nAChR están directamente vinculados a los canales iónicos. Algunas evidencias sugieren que estos receptores también pueden utilizar segundos mensajeros (como lo hacen los receptores metabotrópicos ) en algunos casos. [8] Los receptores nicotínicos de acetilcolina son los receptores ionotrópicos mejor estudiados. [3]

Dado que los receptores nicotínicos ayudan a transmitir señales salientes para los sistemas simpático y parasimpático, los antagonistas de los receptores nicotínicos, como el hexametonio, interfieren en la transmisión de estas señales. Así, por ejemplo, los antagonistas de los receptores nicotínicos interfieren en el barorreflejo [9] que normalmente corrige los cambios en la presión arterial mediante la estimulación simpática y parasimpática del corazón.

Estructura

Estructura del receptor nicotínico

Los receptores nicotínicos, con una masa molecular de 290 kDa , [10] están formados por cinco subunidades, dispuestas simétricamente alrededor de un poro central . [3] Cada subunidad comprende cuatro dominios transmembrana con los extremos N y C ubicados extracelularmente. Poseen similitudes con los receptores GABA A , los receptores de glicina y los receptores de serotonina tipo 3 (que son todos receptores ionotrópicos), o las proteínas distintivas Cys-loop . [11]

En los vertebrados, los receptores nicotínicos se clasifican en dos subtipos en función de sus principales sitios de expresión: receptores nicotínicos de tipo muscular y receptores nicotínicos de tipo neuronal . En los receptores de tipo muscular, que se encuentran en la unión neuromuscular, los receptores son la forma embrionaria, compuesta por las subunidades α 1 , β 1 , γ y δ en una proporción de 2:1:1:1 ((α 1 ) 2 β 1 γδ), o la forma adulta compuesta por las subunidades α 1 , β 1 , δ y ε en una proporción de 2:1:1:1 ((α 1 ) 2 β 1 δε). [3] [4] [5] [12] Los subtipos neuronales son varias combinaciones homoméricas (todas de un tipo de subunidad) o heteroméricas (al menos una α y una β) de doce subunidades diferentes del receptor nicotínico: α 2 −α 10 y β 2 −β 4 . Los ejemplos de los subtipos neuronales incluyen: (α 4 ) 32 ) 2 , (α 4 ) 22 ) 3 , (α 3 ) 24 ) 3 , α 4 α 6 β 32 ) 2 , (α 7 ) 5 , y muchos otros. Tanto en los receptores de tipo muscular como en los de tipo neuronal, las subunidades son muy similares entre sí, especialmente en las regiones hidrofóbicas . [13]

Varios estudios de microscopía electrónica y cristalografía de rayos X han proporcionado información estructural de muy alta resolución sobre los nAChR musculares y neuronales y sus dominios de unión. [10] [14] [15] [16]

Vinculante

Al igual que con todos los canales iónicos regulados por ligando, la apertura del poro del canal nAChR requiere la unión de un mensajero químico. Se utilizan varios términos diferentes para referirse a las moléculas que se unen a los receptores, como ligando , agonista o transmisor. Además del agonista endógeno acetilcolina , los agonistas del nAChR incluyen nicotina , epibatidina y colina . Los antagonistas nicotínicos que bloquean el receptor incluyen mecamilamina, dihidro-β-eritroidina y hexametonio . [13]

En los nAChR de tipo muscular, los sitios de unión de la acetilcolina se encuentran en la interfaz de las subunidades α y ε o δ. En los nAChR neuronales, el sitio de unión se encuentra en la interfaz de una subunidad α y una β o entre dos subunidades α en el caso de los receptores α 7. El sitio de unión se encuentra en el dominio extracelular cerca del extremo N. [ 4] [17] Cuando un agonista se une al sitio, todas las subunidades presentes experimentan un cambio conformacional y el canal se abre [18] y se abre un poro con un diámetro de aproximadamente 0,65 nm. [4]

Apertura de canal

Los AChR nicotínicos pueden existir en diferentes estados conformacionales interconvertibles. La unión de un agonista estabiliza los estados abierto y desensibilizado . En condiciones fisiológicas normales, el receptor necesita exactamente dos moléculas de ACh para abrirse. [19] La apertura del canal permite que los iones con carga positiva se muevan a través de él; en particular, el sodio ingresa a la célula y el potasio sale. El flujo neto de iones con carga positiva es hacia adentro.

El nAChR es un canal catiónico no selectivo, lo que significa que pueden atravesarlo varios iones con carga positiva diferentes. [3] Es permeable a Na + y K + , con algunas combinaciones de subunidades que también son permeables a Ca2 + . [4] [20] [21] La cantidad de sodio y potasio que los canales permiten pasar a través de sus poros (su conductancia ) varía de 50 a 110  pS , y la conductancia depende de la composición de la subunidad específica, así como del ion permeable. [22]

Muchos nAChR neuronales pueden afectar la liberación de otros neurotransmisores. [5] El canal generalmente se abre rápidamente y tiende a permanecer abierto hasta que el agonista se difunde , lo que generalmente demora alrededor de 1 milisegundo . [4] Los AChR pueden abrirse espontáneamente sin ligandos unidos o pueden cerrarse espontáneamente con ligandos unidos, y las mutaciones en el canal pueden cambiar la probabilidad de cualquiera de los eventos. [23] [18] Por lo tanto, la unión de ACh cambia la probabilidad de apertura del poro, que aumenta a medida que se une más ACh.

El nAChR no puede unirse a la ACh cuando se une a cualquiera de las α-neurotoxinas del veneno de serpiente . Estas α - neurotoxinas se unen de forma antagónica, fuerte y no covalente a los nAChR de los músculos esqueléticos y en las neuronas, bloqueando así la acción de la ACh en la membrana postsináptica, inhibiendo el flujo de iones y provocando parálisis y muerte. El nAChR contiene dos sitios de unión para las neurotoxinas del veneno de serpiente. El progreso en el descubrimiento de la dinámica de la acción de unión de estos sitios ha resultado difícil, aunque estudios recientes que utilizan la dinámica del modo normal [24] han ayudado a predecir la naturaleza de los mecanismos de unión de las toxinas de serpiente y de la ACh a los nAChR. Estos estudios han demostrado que un movimiento similar a un giro causado por la unión de la ACh es probablemente responsable de la apertura de los poros, y que una o dos moléculas de α-bungarotoxina (u otra α-neurotoxina de cadena larga) son suficientes para detener este movimiento. Las toxinas parecen bloquear las subunidades vecinas del receptor, inhibiendo la torsión y, por lo tanto, el movimiento de apertura. [25]

Efectos

La activación de los receptores por la nicotina modifica el estado de las neuronas a través de dos mecanismos principales. Por un lado, el movimiento de cationes provoca una despolarización de la membrana plasmática (que se traduce en un potencial postsináptico excitatorio en las neuronas ) dando lugar a la activación de canales iónicos dependientes de voltaje . Por otro lado, la entrada de calcio actúa, ya sea directa o indirectamente, sobre diferentes cascadas intracelulares . Esto conduce, por ejemplo, a la regulación de la actividad de algunos genes o a la liberación de neurotransmisores . [ cita requerida ]

Regulación

Desensibilización

La desensibilización de los receptores mediante ligando fue caracterizada por primera vez por Katz y Thesleff en el receptor nicotínico de acetilcolina. [26]

La exposición prolongada o repetida a un estímulo a menudo da como resultado una disminución de la capacidad de respuesta de ese receptor hacia un estímulo, denominada desensibilización. La función del nAChR puede ser modulada por fosforilación [27] mediante la activación de las quinasas de proteína dependientes del segundo mensajero. Se ha demostrado que la PKA [26] y la PKC [28] , así como las quinasas de tirosina [29] , fosforilan el nAChR, lo que resulta en su desensibilización. Se ha informado que, después de la exposición prolongada del receptor al agonista, el agonista mismo causa un cambio conformacional inducido por el agonista en el receptor, lo que resulta en la desensibilización del receptor. [30]

Los receptores desensibilizados pueden volver a un estado abierto prolongado cuando un agonista se une en presencia de un modulador alostérico positivo, por ejemplo PNU-120,596 . [31] Además, hay evidencia que indica que moléculas chaperonas específicas tienen efectos reguladores sobre estos receptores. [32]

Roles

Las subunidades de los receptores nicotínicos pertenecen a una familia multigénica (16 miembros en humanos) y el ensamblaje de combinaciones de subunidades da como resultado un gran número de receptores diferentes (para más información, consulte la base de datos de canales iónicos controlados por ligando). Estos receptores, con propiedades cinéticas , electrofisiológicas y farmacológicas muy variables , responden a la nicotina de manera diferente, a concentraciones efectivas muy diferentes. Esta diversidad funcional les permite participar en dos tipos principales de neurotransmisión. La transmisión sináptica clásica (transmisión por cableado) implica la liberación de altas concentraciones de neurotransmisor, que actúan sobre receptores inmediatamente vecinos. Por el contrario, la transmisión paracrina (transmisión por volumen) implica neurotransmisores liberados por terminales axónicas , que luego difunden a través del medio extracelular hasta que alcanzan sus receptores, que pueden estar distantes. [33] Los receptores nicotínicos también se pueden encontrar en diferentes ubicaciones sinápticas; por ejemplo, el receptor nicotínico muscular siempre funciona postsinápticamente. Las formas neuronales del receptor se pueden encontrar tanto a nivel postsináptico (involucrado en la neurotransmisión clásica) como presináptico [34] , donde pueden influir en la liberación de múltiples neurotransmisores.

Subunidades

Se han identificado 17 subunidades del receptor nAChR en vertebrados, que se dividen en subunidades de tipo muscular y de tipo neuronal. Aunque una subunidad/gen α8 está presente en especies aviares como el pollo, no está presente en especies humanas o mamíferas. [35]

Las subunidades del nAChR se han dividido en cuatro subfamilias (I–IV) según las similitudes en la secuencia de proteínas. [36] Además, la subfamilia III se ha dividido en tres tipos.

De tipo neuronalTipo de músculo
IIIIIIIV
α9 , α10α7 , α8123α1 , β1 , δ , γ , ε
α2 , α3 , α4 , α6β2 , β4β3 , α5
  • Genes α: CHRNA1 (músculo), CHRNA2 (neuronal), CHRNA3 , CHRNA4 , CHRNA5 , CHRNA6 , CHRNA7 , CHRNA8 , CHRNA9 , CHRNA10
  • Genes β: CHRNB1 (músculo), CHRNB2 (neuronal), CHRNB3 , CHRNB4
  • Otros genes: CHRND (delta), CHRNE (épsilon), CHRNG (gamma)

Los nAChR neuronales son proteínas transmembrana que forman estructuras pentaméricas ensambladas a partir de una familia de subunidades compuestas de α 2 –α 10 y β 2 –β 4 . [37] Estas subunidades se descubrieron desde mediados de la década de 1980 hasta principios de la década de 1990, cuando se clonaron ADNc para múltiples subunidades de nAChR de cerebros de ratas y pollos, lo que llevó a la identificación de once genes diferentes (doce en pollos) que codifican subunidades neuronales de nAChR; los genes de las subunidades identificados se denominaron α 2 –α 108 solo se encuentra en pollos) y β 2 –β 4 . [38] También se ha descubierto que varias combinaciones de subunidades podrían formar nAChR funcionales que podrían ser activados por acetilcolina y nicotina , y las diferentes combinaciones de subunidades generan subtipos de nAChR con diversas propiedades funcionales y farmacológicas. [39] Cuando se expresan solos, α 7 , α 8 , α 9 y α 10 pueden formar receptores funcionales, pero otras subunidades α requieren la presencia de subunidades β para formar receptores funcionales. [37] En mamíferos, se ha descubierto que las subunidades de nAchR están codificadas por 17 genes, y de estos, nueve genes que codifican subunidades α y tres que codifican subunidades β se expresan en el cerebro. Los nAChR que contienen la subunidad β 2 (β 2 nAChR) y los α 7 nAChR se expresan ampliamente en el cerebro, mientras que otras subunidades de nAChR tienen una expresión más restringida. [40] El ensamblaje pentamérico de nAChR está sujeto a las subunidades que se producen en varios tipos de células, como en el pulmón humano, donde los pentámeros epiteliales y musculares difieren en gran medida. [41]

ARNm5/A3/B4

Un importante grupo de genes nAchR (CHRNA5/A3/B4) contiene los genes que codifican las subunidades α 5 , α3 y β 4 . Los estudios genéticos han identificado polimorfismos de un solo nucleótido (SNP) en el locus cromosómico que codifica estos tres genes nAChR como factores de riesgo para la dependencia de la nicotina , el cáncer de pulmón , la enfermedad pulmonar obstructiva crónica , el alcoholismo y la enfermedad arterial periférica . [37] [42] Los genes de la subunidad nAChR CHRNA5/A3/B4 se encuentran en un grupo compacto en la región cromosómica 15q24–25. Las subunidades del nAChR codificadas por este locus forman los subtipos predominantes de receptores nicotínicos expresados ​​en el sistema nervioso periférico (SNP) y otros sitios clave del sistema nervioso central (SNC) , como la habénula medial , una estructura entre el prosencéfalo límbico y el mesencéfalo involucrada en las principales vías del circuito colinérgico. [37] Investigaciones posteriores de los genes CHRNA5/A3/B4 han revelado que los genes nAChR "neuronales" también se expresan en células no neuronales donde están involucrados en varios procesos fundamentales, como la inflamación. [43] Los genes CHRNA5/A3/B4 se coexpresan en muchos tipos de células y las actividades transcripcionales de las regiones promotoras de los tres genes están reguladas por muchos de los mismos factores de transcripción, lo que demuestra que su agrupamiento puede reflejar el control de la expresión génica. [37]

ARNm6/ARNm3

CHRNB3 y CHRNA6 también se agrupan en un grupo de genes, ubicado en 8p11. [42] Múltiples estudios han demostrado que los SNPS en CHRNB3–CHRNA6 se han relacionado con la dependencia de la nicotina y el comportamiento de fumar, como dos SNP en CHRNB3, rs6474413 y rs10958726. [42] La variación genética en esta región también muestra influencia en la susceptibilidad al uso de drogas de abuso, incluido el consumo de cocaína y alcohol. [44] Los receptores nicotínicos que contienen subunidades α 6 o β 3 expresadas en regiones cerebrales, especialmente en el área tegmental ventral y la sustancia negra , son importantes para los comportamientos de las drogas debido a su papel en la liberación de dopamina . [45] La variación genética en estos genes puede alterar la sensibilidad a las drogas de abuso de numerosas formas, incluido el cambio de la estructura de aminoácidos de la proteína o causar alteraciones en la regulación transcripcional y traduccional. [44]

ARNm4/ARNm2

Otros genes nAChR bien estudiados incluyen el CHRNA4 y el CHRNB2, que se han asociado como genes de la epilepsia del lóbulo frontal nocturna autosómica dominante (ADNFLE) . [42] [46] Ambas subunidades de nAChR están presentes en el cerebro y la aparición de mutaciones en estas dos subunidades causa un tipo generalizado de epilepsia. Los ejemplos incluyen la mutación de inserción 776ins3 de CHRNA4 que está asociada con convulsiones nocturnas y trastornos psiquiátricos, y la mutación I312M de CHRNB2 que parece causar no solo epilepsia sino también déficits cognitivos muy específicos, como déficits en el aprendizaje y la memoria. [46] [47] Existe una variación genética natural entre estos dos genes y el análisis de polimorfismos de un solo nucleótido (SNP) y otras modificaciones genéticas muestran una mayor variación en el gen CHRNA4 que en el gen CHRNB2, lo que implica que nAChR β 2 , la proteína codificada por CHRNB2, se asocia con más subunidades que α 4 . También se ha informado que CHRNA2 es un tercer candidato para las convulsiones nocturnas del lóbulo frontal. [42] [46]

ARNCh7

Varios estudios han informado de una asociación entre CHRNA7 y endofenotipos de trastornos psiquiátricos y dependencia de la nicotina, lo que contribuye a la relevancia clínica significativa de α 7 y la investigación que se está realizando sobre él. [46] CHRNA7 fue uno de los primeros genes que se consideró que estaba relacionado con la esquizofrenia . Los estudios identificaron varios polimorfismos del promotor CHRNA7 que reducen la actividad transcripcional de los genes que se asocian con la esquizofrenia, lo que es consistente con el hallazgo de niveles reducidos de nAChR a7 en el cerebro de pacientes esquizofrénicos. [46] Se ha descubierto que ambos subtipos de nAChR, α 4 β 2 y α 7 , están significativamente reducidos en estudios post mortem de individuos con esquizofrenia. [48] Además, las tasas de tabaquismo son significativamente más altas en aquellos con esquizofrenia, lo que implica que fumar nicotina puede ser una forma de automedicación. [49]

Variaciones notables

Los receptores nicotínicos son pentámeros de estas subunidades; es decir, cada receptor contiene cinco subunidades. Por lo tanto, existe un inmenso potencial de variación de estas subunidades, algunas de las cuales se encuentran más comúnmente que otras. Los subtipos más ampliamente expresados ​​incluyen (α 1 ) 2 β 1 δε (tipo muscular adulto), (α 3 ) 24 ) 3 (tipo ganglionar), (α 4 ) 22 ) 3 (tipo SNC) y (α 7 ) 5 (otro tipo SNC). [50] A continuación se presenta una comparación:

Tipo receptorUbicaciónEfecto; funcionesAgonistas nicotínicosAntagonistas nicotínicos
Tipo de músculo :
1 ) 2 β 1 δε [50]
o
1 ) 2 β 1 δγ
Unión neuromuscularEPSP , principalmente por aumento de la permeabilidad al Na + y K +
Tipo ganglionar :
3 ) 24 ) 3
ganglios autónomosEPSP , principalmente por aumento de la permeabilidad al Na + y K +
Tipo heteromérico del SNC:
4 ) 22 ) 3
CerebroExcitación postsináptica y presináptica , [50] principalmente por aumento de la permeabilidad al Na + y K + . Subtipo principal implicado en los efectos de mejora de la atención y recompensa de la nicotina, así como en la fisiopatología de la adicción a la nicotina. [52] [53] [54]
Otros tipos del SNC:
3 ) 24 ) 3
CerebroExcitación post y presináptica
Tipo homomérico del SNC:
7 ) 5
CerebroExcitación postsináptica y presináptica , [50] principalmente por aumento de la permeabilidad al Na + , K + y Ca2 + . Subtipo principal implicado en algunos de los efectos cognitivos de la nicotina. [55] Además, la activación de (α7 ) 5 podría mejorar la respuesta de acoplamiento neurovascular en enfermedades neurodegenerativas [56] y la neurogénesis en el accidente cerebrovascular isquémico. [57] También está implicado en los efectos proangiogénicos de la nicotina y acelera la progresión de la enfermedad renal crónica en fumadores. [58] [59] [60]

Véase también

Referencias

  1. ^ Lu B, Kwan K, Levine YA, Olofsson PS, Yang H, Li J, et al. (agosto de 2014). "La señalización del receptor nicotínico de acetilcolina α7 inhibe la activación del inflamasoma al impedir la liberación de ADN mitocondrial". Medicina molecular . 20 (1): 350–8. doi :10.2119/molmed.2013.00117. PMC  4153835 . PMID  24849809.
  2. ^ Yamamoto I (1999). "De la nicotina a los nicotinoides: 1962 a 1997". Insecticidas nicotinoides y el receptor nicotínico de acetilcolina . págs. 3–27. doi :10.1007/978-4-431-67933-2_1. ISBN 978-4-431-68011-6.
  3. ^ abcdefghijk Purves D, Augustine GJ, Fitzpatrick D, Hall WC, LaMantia AS, McNamara JO, White LE (2008). Neurociencia (4.ª ed.). Sinauer Associates. págs. 122–6. ISBN 978-0-87893-697-7.
  4. ^ abcdef Siegel GJ, Agranoff BW, Fisher SK, Albers RW, Uhler MD (1999). "Fisiología y farmacología del receptor GABA". Neuroquímica básica: aspectos moleculares, celulares y médicos (6.ª ed.). Sociedad Estadounidense de Neuroquímica . Consultado el 1 de octubre de 2008 . {{cite book}}: |website=ignorado ( ayuda )
  5. ^ abc Itier V, Bertrand D (agosto de 2001). "Receptores nicotínicos neuronales: de la estructura proteica a la función". FEBS Letters . 504 (3): 118–25. Bibcode :2001FEBSL.504..118I. doi : 10.1016/s0014-5793(01)02702-8 . PMID  11532443.
  6. ^ Ishii M, Kurachi Y (1 de octubre de 2006). "Receptores muscarínicos de acetilcolina". Current Pharmaceutical Design . 12 (28): 3573–81. doi :10.2174/138161206778522056. PMID  17073660.
  7. ^ Lott EL, Jones EB (2020). "Toxicidad colinérgica". StatPearls. StatPearls Publishing. PMID  30969605.
  8. ^ Kabbani N, Nordman JC, Corgiat BA, Veltri DP, Shehu A, Seymour VA, Adams DJ (diciembre de 2013). "¿Los receptores nicotínicos de acetilcolina están acoplados a las proteínas G?". BioEssays . 35 (12): 1025–34. doi :10.1002/bies.201300082. PMID  24185813. S2CID  9441100.
  9. ^ Henderson CG, Ungar A (abril de 1978). "Efecto de los antagonistas colinérgicos en la transmisión ganglionar simpática de los reflejos vasomotores de los barorreceptores y quimiorreceptores carotídeos del perro". The Journal of Physiology . 277 (1): 379–385. doi : 10.1113/jphysiol.1978.sp012278 . PMC 1282395 . PMID  206690. 
  10. ^ ab Unwin N (marzo de 2005). "Estructura refinada del receptor nicotínico de acetilcolina con una resolución de 4A". Journal of Molecular Biology . 346 (4): 967–89. doi :10.1016/j.jmb.2004.12.031. PMID  15701510.
  11. ^ Cascio M (mayo de 2004). "Estructura y función del receptor de glicina y receptores nicotínicos relacionados". The Journal of Biological Chemistry . 279 (19): 19383–6. doi : 10.1074/jbc.R300035200 . PMID  15023997.
  12. ^ Giniatullin R, Nistri A, Yakel JL (julio de 2005). "Desensibilización de los receptores nicotínicos de acetilcolina: modelado de la señalización colinérgica". Tendencias en neurociencias . 28 (7): 371–8. doi :10.1016/j.tins.2005.04.009. PMID  15979501. S2CID  19114228.
  13. ^ ab Matera, Carlo; Papotto, Claudio; Dallanoce, Clelia; De Amici, Marco (agosto de 2023). "Avances en ligandos selectivos de moléculas pequeñas para receptores nicotínicos de acetilcolina heteroméricos". Investigación farmacológica . 194 : 106813. doi : 10.1016/j.phrs.2023.106813. hdl : 2434/978688 . PMID:  37302724.
  14. ^ Brejc K, van Dijk WJ, Klaassen RV, Schuurmans M, van Der Oost J, Smit AB, Sixma TK (mayo de 2001). "La estructura cristalina de una proteína de unión a ACh revela el dominio de unión al ligando de los receptores nicotínicos". Naturaleza . 411 (6835): 269–76. Código Bib :2001Natur.411..269B. doi :10.1038/35077011. PMID  11357122. S2CID  4415937.
  15. ^ Zouridakis M, Giastas P, Zarkadas E, Chroni-Tzartou D, Bregestovski P, Tzartos SJ (noviembre de 2014). "Estructuras cristalinas de estados libres y unidos a antagonistas del dominio extracelular del receptor nicotínico α9 humano". Nature Structural & Molecular Biology . 21 (11): 976–80. doi :10.1038/nsmb.2900. PMID  25282151. S2CID  30096256.
  16. ^ Morales-Perez CL, Noviello CM, Hibbs RE (octubre de 2016). "Estructura de rayos X del receptor nicotínico α4β2 humano". Nature . 538 (7625): 411–415. Bibcode :2016Natur.538..411M. doi :10.1038/nature19785. PMC 5161573 . PMID  27698419. 
  17. ^ Squire L (2003). Neurociencia fundamental (2.ª ed.). Ámsterdam: Acad. Press. pág. 1426. ISBN 978-0-12-660303-3.
  18. ^ ab Colquhoun D, ​​Sivilotti LG (junio de 2004). "Función y estructura de los receptores de glicina y algunos de sus parientes". Tendencias en neurociencias . 27 (6): 337–44. CiteSeerX 10.1.1.385.3809 . doi :10.1016/j.tins.2004.04.010. PMID  15165738. S2CID  19008547. 
  19. ^ Aidley DJ (1998). La fisiología de las células excitables (4.ª ed.). Cambridge, Reino Unido: Cambridge University Press. ISBN 978-0521574150.OCLC 38067558  .[ página necesaria ]
  20. ^ Beker F, Weber M, Fink RH, Adams DJ (septiembre de 2003). "La activación de los receptores muscarínicos y nicotínicos de ACh moviliza de forma diferencial el Ca2+ en las neuronas ganglionares intracardíacas de la rata". Journal of Neurophysiology . 90 (3): 1956–64. doi :10.1152/jn.01079.2002. PMID  12761283. S2CID  8684707.
  21. ^ Weber M, Motin L, Gaul S, Beker F, Fink RH, Adams DJ (enero de 2005). "Los anestésicos intravenosos inhiben las corrientes mediadas por el receptor nicotínico de acetilcolina y los transitorios de Ca2+ en las neuronas ganglionares intracardíacas de la rata". British Journal of Pharmacology . 144 (1): 98–107. doi :10.1038/sj.bjp.0705942. PMC 1575970 . PMID  15644873. 
  22. ^ Mishina M, Takai T, Imoto K, Noda M, Takahashi T, Numa S, et al. (mayo de 1986). "Distinción molecular entre las formas fetal y adulta del receptor de acetilcolina muscular". Nature . 321 (6068): 406–11. Bibcode :1986Natur.321..406M. doi :10.1038/321406a0. PMID  2423878. S2CID  4356336.
  23. ^ Einav T, Phillips R (abril de 2017). "Análisis Monod-Wyman-Changeux de mutantes de canales iónicos controlados por ligando". The Journal of Physical Chemistry B . 121 (15): 3813–3824. arXiv : 1701.06122 . Código Bibliográfico :2017arXiv170106122E. doi :10.1021/acs.jpcb.6b12672. PMC 5551692 . PMID  28134524. 
  24. ^ Levitt M, Sander C, Stern PS (febrero de 1985). "Dinámica del modo normal de las proteínas: inhibidor de tripsina, crambina, ribonucleasa y lisozima". Journal of Molecular Biology . 181 (3): 423–47. doi :10.1016/0022-2836(85)90230-x. PMID  2580101.
  25. ^ Samson AO, Levitt M (abril de 2008). "Mecanismo de inhibición del receptor de acetilcolina por alfa-neurotoxinas según lo revelado por la dinámica del modo normal". Bioquímica . 47 (13): 4065–70. doi :10.1021/bi702272j. PMC 2750825 . PMID  18327915. 
  26. ^ ab Pitchford S, Day JW, Gordon A, Mochly-Rosen D (noviembre de 1992). "La desensibilización del receptor nicotínico de acetilcolina está regulada por la acumulación extracelular de adenosina inducida por activación". The Journal of Neuroscience . 12 (11): 4540–4. doi :10.1523/JNEUROSCI.12-11-04540.1992. PMC 6576003 . PMID  1331363. 
  27. ^ Huganir RL, Greengard P (febrero de 1983). "La proteína quinasa dependiente de AMPc fosforila el receptor nicotínico de acetilcolina". Actas de la Academia Nacional de Ciencias de los Estados Unidos de América . 80 (4): 1130–4. Bibcode :1983PNAS...80.1130H. doi : 10.1073/pnas.80.4.1130 . PMC 393542 . PMID  6302672. 
  28. ^ Safran A, Sagi-Eisenberg R, Neumann D, Fuchs S (agosto de 1987). "Fosforilación del receptor de acetilcolina por la proteína quinasa C e identificación del sitio de fosforilación dentro de la subunidad delta del receptor". The Journal of Biological Chemistry . 262 (22): 10506–10. doi : 10.1016/S0021-9258(18)60990-1 . PMID  3038884.
  29. ^ Hopfield JF, Tank DW, Greengard P, Huganir RL (diciembre de 1988). "Modulación funcional del receptor nicotínico de acetilcolina por fosforilación de tirosina". Nature . 336 (6200): 677–80. Bibcode :1988Natur.336..677H. doi :10.1038/336677a0. PMID  3200319. S2CID  4239105.
  30. ^ Barrantes FJ (septiembre de 1978). "Cambios del receptor de acetilcolina en su entorno de membrana mediados por agonistas". Journal of Molecular Biology . 124 (1): 1–26. doi :10.1016/0022-2836(78)90144-4. PMID  712829.
  31. ^ Hurst RS, Hajós M, Raggenbass M, Wall TM, Higdon NR, Lawson JA, et al. (abril de 2005). "Un nuevo modulador alostérico positivo del receptor de acetilcolina nicotínico neuronal alfa7: caracterización in vitro e in vivo". The Journal of Neuroscience . 25 (17): 4396–405. doi :10.1523/JNEUROSCI.5269-04.2005. PMC 6725110 . PMID  15858066. 
  32. ^ Sadigh-Eteghad S, Majdi A, Talebi M, Mahmoudi J, Babri S (mayo de 2015). "Regulación de los receptores nicotínicos de acetilcolina en la enfermedad de Alzheimer: un posible papel de las chaperonas". Revista Europea de Farmacología . 755 : 34–41. doi :10.1016/j.ejphar.2015.02.047. PMID  25771456. S2CID  31929001.
  33. ^ Picciotto MR, Higley MJ, Mineur YS (octubre de 2012). "La acetilcolina como neuromodulador: la señalización colinérgica moldea la función y el comportamiento del sistema nervioso". Neuron . 76 (1): 116–29. doi :10.1016/j.neuron.2012.08.036. PMC 3466476 . PMID  23040810. 
  34. ^ Wonnacott S (febrero de 1997). "Receptores nicotínicos de ACh presinápticos". Tendencias en neurociencias . 20 (2): 92–8. doi :10.1016/S0166-2236(96)10073-4. PMID  9023878. S2CID  42215860.
  35. ^ Graham A, Court JA, Martin-Ruiz CM, Jaros E, Perry R, ​​Volsen SG, et al. (2002). "Localización inmunohistoquímica de las subunidades del receptor nicotínico de acetilcolina en el cerebelo humano". Neurociencia . 113 (3): 493–507. doi :10.1016/S0306-4522(02)00223-3. PMID  12150770. S2CID  39839166.
  36. ^ Le Novère N, Changeux JP (febrero de 1995). "Evolución molecular del receptor nicotínico de acetilcolina: un ejemplo de familia multigénica en células excitables". Journal of Molecular Evolution . 40 (2): 155–72. Bibcode :1995JMolE..40..155L. doi :10.1007/BF00167110. PMID  7699721. S2CID  2040912.
  37. ^ abcde Improgo MR, Scofield MD, Tapper AR, Gardner PD (octubre de 2010). "El grupo de genes del receptor nicotínico de acetilcolina CHRNA5/A3/B4: papel dual en la adicción a la nicotina y el cáncer de pulmón". Progress in Neurobiology . 92 (2): 212–26. doi :10.1016/j.pneurobio.2010.05.003. PMC 2939268 . PMID  20685379. 
  38. ^ Tammimäki A, Horton WJ, Stitzel JA (octubre de 2011). "Avances recientes en la manipulación genética y la biología del receptor nicotínico de acetilcolina". Farmacología bioquímica . 82 (8): 808–19. doi :10.1016/j.bcp.2011.06.014. PMC 3162071 . PMID  21704022. 
  39. ^ Graham A, Court JA, Martin-Ruiz CM, Jaros E, Perry R, ​​Volsen SG, et al. (septiembre de 2002). "Localización inmunohistoquímica de las subunidades del receptor nicotínico de acetilcolina en el cerebelo humano". Neurociencia . 113 (3): 493–507. doi :10.1016/S0306-4522(02)00223-3. PMID  12150770. S2CID  39839166.
  40. ^ Changeux JP (junio de 2010). "Adicción a la nicotina y receptores nicotínicos: lecciones de ratones modificados genéticamente". Nature Reviews. Neuroscience . 11 (6): 389–401. doi :10.1038/nrn2849. PMID  20485364. S2CID  661315.
  41. ^ Diabasana, Z; Perotin, JM; Belgacemi, R; Ancel, J; Mulette, P; Delepine, G; Gosset, P; Maskos, U; Polette, M; Deslée, G; Dormoy, V (2020). "Atlas de subunidades del receptor nicotínico en el pulmón humano adulto". Int. J. Mol. Sci . 21 (20): 7446. doi : 10.3390/ijms21207446 . PMC 7588933. PMID  33050277 . 
  42. ^ abcde Greenbaum L, Lerer B (octubre de 2009). "Contribución diferencial de la variación genética en múltiples receptores colinérgicos nicotínicos cerebrales a la dependencia de la nicotina: progreso reciente y nuevas preguntas abiertas". Psiquiatría molecular . 14 (10): 912–45. doi : 10.1038/mp.2009.59 . PMID  19564872.
  43. ^ Gahring LC, Rogers SW (enero de 2006). "Expresión y función del receptor nicotínico de acetilcolina neuronal en células no neuronales". The AAPS Journal . 7 (4): E885-94. doi :10.1208/aapsj070486. PMC 2750958 . PMID  16594641. 
  44. ^ ab Kamens HM, Corley RP, Richmond PA, Darlington TM, Dowell R, Hopfer CJ, et al. (septiembre de 2016). "Evidencia de asociación entre variantes de baja frecuencia en CHRNA6/CHRNB3 y dependencia antisocial de drogas". Genética del comportamiento . 46 (5): 693–704. doi :10.1007/s10519-016-9792-4. PMC 4975622 . PMID  27085880. 
  45. ^ Grady SR, Salminen O, Laverty DC, Whiteaker P, McIntosh JM, Collins AC, Marks MJ (octubre de 2007). "Los subtipos de receptores nicotínicos de acetilcolina en terminales dopaminérgicas del cuerpo estriado del ratón". Farmacología bioquímica . 74 (8): 1235–46. doi :10.1016/j.bcp.2007.07.032. PMC 2735219 . PMID  17825262. 
  46. ^ abcde Steinlein OK, Bertrand D (noviembre de 2008). "Receptores nicotínicos de acetilcolina neuronales: del análisis genético a las enfermedades neurológicas". Farmacología bioquímica . 76 (10): 1175–83. doi :10.1016/j.bcp.2008.07.012. PMID  18691557.
  47. ^ Bertrand D, Elmslie F, Hughes E, Trounce J, Sander T, Bertrand S, Steinlein OK (diciembre de 2005). "La mutación I312M de CHRNB2 está asociada con la epilepsia y con déficits de memoria específicos". Neurobiología de la enfermedad . 20 (3): 799–804. doi :10.1016/j.nbd.2005.05.013. PMID  15964197. S2CID  29811931.
  48. ^ Breese CR, Lee MJ, Adams CE, Sullivan B, Logel J, Gillen KM, et al. (octubre de 2000). "Regulación anormal de los receptores nicotínicos de alta afinidad en sujetos con esquizofrenia". Neuropsicofarmacología . 23 (4): 351–64. doi : 10.1016/S0893-133X(00)00121-4 . PMID  10989262.
  49. ^ McLean SL, Grayson B, Idris NF, Lesage AS, Pemberton DJ, Mackie C, Neill JC (abril de 2011). "La activación de los receptores nicotínicos α7 mejora los déficits inducidos por fenciclidina en tareas cognitivas en ratas: implicaciones para la terapia de la disfunción cognitiva en la esquizofrenia". Neuropsicofarmacología europea . 21 (4): 333–43. doi :10.1016/j.euroneuro.2010.06.003. hdl : 10454/8464 . PMID  20630711. S2CID  41306366.
  50. ^ abcd Rang HP (2003). Farmacología (5.ª ed.). Edimburgo: Churchill Livingstone. ISBN 978-0-443-07145-4.[ página necesaria ]
  51. ^ de Neurosci.pharm - MBC 3320 Acetilcolina Archivado el 27 de diciembre de 2007 en Wayback Machine.
  52. ^ Sarter M (agosto de 2015). "Objetivos cognitivos conductuales para la mejora colinérgica". Current Opinion in Behavioral Sciences . 4 : 22–26. doi :10.1016/j.cobeha.2015.01.004. PMC 5466806 . PMID  28607947. 
  53. ^ Wu J, Gao M, Shen JX, Shi WX, Oster AM, Gutkin BS (octubre de 2013). "Control cortical de la función del VTA e influencia en la recompensa de la nicotina". Farmacología bioquímica . 86 (8): 1173–80. doi :10.1016/j.bcp.2013.07.013. PMID  23933294.
  54. ^ "Nicotina: actividad biológica". Guía de farmacología de la IUPHAR/BPS . Unión Internacional de Farmacología Básica y Clínica . Consultado el 7 de febrero de 2016 . K es como sigue; α 2 β 4 = 9900 nM [5], α 3 β 2 = 14 nM [1], α 3 β 4 = 187 nM [1], α 4 β 2 = 1 nM [4,6]. Debido a la heterogeneidad de los canales de nACh, no hemos marcado un objetivo farmacológico primario para la nicotina, aunque se informa que α 4 β 2 es el subtipo predominante de alta afinidad en el cerebro que media la adicción a la nicotina [2-3].
  55. ^ Levin ED (mayo de 2012). "Receptores nicotínicos α7 y cognición". Current Drug Targets . 13 (5): 602–6. doi :10.2174/138945012800398937. PMID  22300026.
  56. ^ Sadigh-Eteghad S, Mahmoudi J, Babri S, Talebi M (noviembre de 2015). "Efecto de la activación del receptor nicotínico de acetilcolina alfa-7 en el deterioro de la memoria de reconocimiento inducido por beta-amiloide. Posible papel de la función neurovascular". Acta Cirurgica Brasileira . 30 (11): 736–42. doi : 10.1590/S0102-865020150110000003 . PMID  26647792.
  57. ^ Wang J, Lu Z, Fu X, Zhang D, Yu L, Li N, et al. (mayo de 2017). "La vía de señalización del receptor nicotínico alfa-7 participa en la neurogénesis inducida por neuronas ChAT-positivas en la zona subventricular". Translational Stroke Research . 8 (5): 484–493. doi :10.1007/s12975-017-0541-7. PMC 5704989 . PMID  28551702. 
  58. ^ Lee J, Cooke JP (noviembre de 2012). "Nicotina y angiogénesis patológica". Ciencias de la vida . 91 (21–22): 1058–64. doi :10.1016/j.lfs.2012.06.032. PMC 3695741 . PMID  22796717. 
  59. ^ Jain G, Jaimes EA (octubre de 2013). "Señalización de nicotina y progresión de la enfermedad renal crónica en fumadores". Farmacología bioquímica . 86 (8): 1215–23. doi :10.1016/j.bcp.2013.07.014. PMC 3838879 . PMID  23892062. 
  60. ^ Mihalak KB, Carroll FI, Luetje CW (septiembre de 2006). "La vareniclina es un agonista parcial de los receptores nicotínicos neuronales alfa4beta2 y un agonista completo de los receptores nicotínicos neuronales alfa7". Farmacología molecular . 70 (3): 801–5. doi :10.1124/mol.106.025130. PMID  16766716. S2CID  14562170.
  • Medios relacionados con Receptores nicotínicos de acetilcolina en Wikimedia Commons
  • Posición espacial calculada del receptor nicotínico de acetilcolina en la bicapa lipídica
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