Omatidio
Los ojos compuestos de los artrópodos como los insectos , crustáceos y milpiés [1] están compuestos de unidades llamadas omatidios ( sg.: ommatidium ) . Un omatidio contiene un grupo de células fotorreceptoras rodeadas de células de soporte y células pigmentarias. La parte exterior del omatidio está recubierta de una córnea transparente . Cada omatidio está inervado por un haz de axones (que suele constar de 6 a 9 axones , dependiendo del número de rabdómeros) [2] : 162 y proporciona al cerebro un elemento de imagen. El cerebro forma una imagen a partir de estos elementos de imagen independientes. La cantidad de omatidios en el ojo depende del tipo de artrópodo y varía desde tan solo 5 como en el isópodo antártico Glyptonotus antarcticus , [3] o un puñado en el primitivo Zygentoma , hasta alrededor de 30.000 en libélulas Anisoptera más grandes y algunas polillas Sphingidae . [4]
Descripción
Los omatidios tienen una sección transversal típicamente hexagonal y son aproximadamente diez veces más largos que anchos. El diámetro es mayor en la superficie y se estrecha hacia el extremo interior. En la superficie exterior hay una córnea, debajo de la cual hay un pseudocono que enfoca aún más la luz. La córnea y el pseudocono forman el diez por ciento exterior de la longitud del omatidio.
El órgano específico de los omatidios, o unidades oculares, varía entre los diferentes organismos. El ojo compuesto de la mariposa consta de múltiples omatidios, cada uno de los cuales consta de nueve células fotorreceptoras (numeradas de R1 a R9) y células pigmentarias primarias y secundarias. [5] Las mariposas ninfálidas tienen la estructura de omatidio ocular más simple, que consta de ocho células fotorreceptoras (R1 a R8) y una pequeña célula R9 organizada en un nivel diferente. [5] Estas "células R" compactan el omatidio. La porción de las células R en el eje central del omatidio forma colectivamente una guía de luz, un tubo transparente, llamado rabdoma.
Aunque está compuesto por más de 16.000 células, [6] el ojo compuesto de Drosophila es un patrón repetitivo simple de 700 a 750 omatidios, [7] iniciado en el disco imaginal del ojo de la larva. Cada omatidio consta de 14 células vecinas: 8 neuronas fotorreceptoras en el núcleo, 4 células cónicas no neuronales y 2 células pigmentarias primarias. [6] Una red hexagonal de células pigmentarias aísla el núcleo omatidio de los omatidios vecinos para optimizar la cobertura del campo visual, lo que, por lo tanto, afecta la agudeza de la visión de Drosophila . [7]
Rabdómeros
En las moscas verdaderas , el rabdoma se ha separado en siete rabdómeros independientes (en realidad hay ocho, pero los dos rabdómeros centrales responsables de la visión del color se encuentran uno encima del otro), de modo que se forma una pequeña imagen invertida de 7 píxeles en cada omatidio. El ángulo entre rabdómeros adyacentes dentro de un solo omatidio (el ángulo de aceptación ) es similar al ángulo entre omatidios adyacentes (el ángulo interommatidial ), lo que le da al ojo un campo de visión continuo con áreas de superposición entre omatidios vecinos; [2] : 161–2 la ventaja de esta disposición es que se toma una muestra del mismo eje visual de un área más grande del ojo, lo que aumenta la sensibilidad general en un factor de siete, sin aumentar el tamaño del ojo ni reducir su agudeza. Para lograrlo, también se ha tenido que rehacer el cableado del ojo de forma que los haces de axones se tuerzan 180 grados (se reinvierten) y cada rabdómero se une con los de los seis omatidios adyacentes que comparten el mismo eje visual. De este modo, a nivel de la lámina (el primer centro de procesamiento óptico del cerebro de los insectos ), las señales se introducen exactamente de la misma manera que en el caso de un ojo compuesto de aposición normal, pero la imagen se ve realzada. Esta disposición visual se conoce como superposición neuronal . [2] : 163–4
Dado que la imagen del ojo compuesto se crea a partir de los elementos de imagen independientes producidos por los omatidios, es importante que estos reaccionen solo a la parte de la escena que tienen directamente frente a ellos. Para evitar que la luz que entra en ángulo sea detectada por el omatidio en el que entró o por cualquiera de los omatidios vecinos, hay seis células pigmentarias . Las células pigmentarias recubren el exterior de cada omatidio. Cada célula pigmentaria está situada en el vértice de los hexágonos y, por lo tanto, recubre el exterior de tres omatidios. La luz que entra en ángulo pasa a través de la sección transversal delgada de la célula fotorreceptora, con solo una pequeña posibilidad de excitarla, y es absorbida por la célula pigmentaria antes de que pueda entrar en un omatidio vecino. En muchas especies, en situaciones de poca luz, el pigmento se retira, de modo que la luz que entra en el ojo puede ser detectada por cualquiera de los varios omatidios. Esto mejora la detección de la luz, pero reduce la resolución.
El tamaño de los omatidios varía según la especie, pero oscila entre 5 y 50 micrómetros. Los rabdomos que contienen pueden tener una sección transversal de al menos 1,x micrómetros; en algunos estudios interespecies, se asigna la categoría de "pequeños" a aquellos de menos de 2 micrómetros. [8] Una matriz de microlentes puede considerarse una analogía biomimética elemental de los omatidios.
Mecanismo de determinación ocular
La determinación del destino de las células de la retina depende de la señalización posicional célula-célula que activa las vías de transducción de señales, en lugar del linaje celular. La señal célula-célula que se libera de los fotorreceptores R8 (células retinianas ya diferenciadas) de cada omatidio es recibida por las células retinianas progenitoras vecinas, estimulando su incorporación a los omatidios en desarrollo. Las células retinianas indiferenciadas seleccionan sus destinos celulares apropiados en función de su posición con respecto a sus vecinas diferenciadas. La señal local, Growth Factor Spitz, activa la vía de transducción de señales del receptor del factor de crecimiento epidérmico (EGFR) e inicia una cascada de eventos que darán como resultado la transcripción de genes involucrados en la determinación del destino celular. [9] Este proceso conduce a la inducción de destinos celulares, comenzando por las neuronas fotorreceptoras R8 y progresa al reclutamiento secuencial de células vecinas indiferenciadas. Las primeras siete células vecinas reciben señalización R8 para diferenciarse como neuronas fotorreceptoras, seguidas por el reclutamiento de las cuatro células cónicas no neuronales.
Véase también
Referencias
- ^ Müller CH, Sombke A, Rosenberg J (diciembre de 2007). "La estructura fina de los ojos de algunos milpiés erizados (Penicillata, Diplopoda): apoyo adicional a la homología de los omatidios mandibulados". Estructura y desarrollo de los artrópodos . 36 (4): 463–76. doi :10.1016/j.asd.2007.09.002. PMID 18089122.
- ^ abc Land MF, Nilsson DE (2012). Animal Eyes (Segunda edición). Oxford University Press. ISBN 978-0-19-958114-6.
- ^ Meyer-Rochow VB (1982). "El ojo dividido del isópodo Glyptonotus antarcticus: efectos de la adaptación unilateral a la oscuridad y la elevación de la temperatura". Actas de la Royal Society de Londres . B215 (1201): 433–450. Código Bibliográfico :1982RSPSB.215..433M. doi :10.1098/rspb.1982.0052. S2CID 85297324.
- ^ Common IF (1990). Polillas de Australia . Brill. pág. 15. ISBN 978-90-04-09227-3.
- ^ ab Briscoe AD (junio de 2008). "Reconstrucción del ojo ancestral de la mariposa: enfoque en las opsinas". The Journal of Experimental Biology . 211 (Pt 11): 1805–13. doi : 10.1242/jeb.013045 . PMID 18490396.
- ^ ab Cagan R (2009). Principios de la diferenciación ocular de Drosophila . Temas actuales en biología del desarrollo. Vol. 89. Elsevier. págs. 115–35. doi :10.1016/s0070-2153(09)89005-4. ISBN 9780123749024. PMC 2890271 . PMID 19737644.
- ^ ab Cagan RL, Ready DF (diciembre de 1989). "La aparición del orden en la retina pupal de Drosophila". Biología del desarrollo . 136 (2): 346–62. doi :10.1016/0012-1606(89)90261-3. PMID 2511048.
- ^ Land MF (1997). "Agudeza visual en insectos". Revista Anual de Entomología . 42 : 147–77. doi :10.1146/annurev.ento.42.1.147. PMID 15012311. S2CID 10924209.
- ^ Li X, Carthew RW (diciembre de 2005). "Un microARN media la señalización del receptor de EGF y promueve la diferenciación de fotorreceptores en el ojo de Drosophila". Cell . 123 (7): 1267–77. doi : 10.1016/j.cell.2005.10.040 . PMID 16377567.
