El iGluSnFR, ampliamente utilizado, consiste en una proteína fluorescente verde mejorada permutada circularmente (cpEGFP) fusionada a una proteína de unión al glutamato (GluBP) de una bacteria . [3] Cuando GluBP se une a una molécula de glutamato , cambia su forma, juntando el barril de EGFP , lo que aumenta la fluorescencia. Se incluye un segmento peptídico específico ( PDGFR ) para llevar el sensor al exterior de la membrana celular . [4] En la versión más reciente de Aggarwal et al. (2022), [1] los investigadores introdujeron iGluSnFR en dos dominios de anclaje adicionales, un ancla de glicosilfostidilinositol (GPI) y una forma modificada del dominio citosólico terminal de Stargazin con un ligando PDZ.
Historia
Los primeros sensores de glutamato fluorescentes codificados genéticamente (FLIPE, GluSnFR y SuperGluSnFR) se construyeron uniendo la proteína fluorescente cian (CFP) y la proteína fluorescente amarilla (YFP) a una proteína de unión al glutamato bacteriano (GluBP). [5] [6] La unión del glutamato cambió la distancia entre CFP e YFP, cambiando la eficiencia de la transferencia de energía ( FRET ) entre los dos fluoróforos . [7] [8] Se logró un gran avance en la visualización de la liberación de glutamato con iGluSnFR, un sensor de glutamato de un solo fluoróforo basado en EGFP que produce un aumento de ~5 veces en la fluorescencia. [3] Para medir la transmisión sináptica a altas frecuencias, recientemente se han desarrollado nuevas variantes de iGluSnFR con cinética acelerada. [9] [10]
Referencias
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