Fluoróforo

Agentes que emiten luz después de ser excitados por la luz
Una célula humana marcada con fluoróforo .

Un fluoróforo (o fluorocromo , de manera similar a un cromóforo ) es un compuesto químico fluorescente que puede volver a emitir luz al ser excitado por la luz. Los fluoróforos suelen contener varios grupos aromáticos combinados o moléculas planares o cíclicas con varios enlaces π . [1]

Los fluoróforos se utilizan a veces solos, como trazadores en fluidos, como colorante para la tinción de ciertas estructuras, como sustrato de enzimas o como sonda o indicador (cuando su fluorescencia se ve afectada por aspectos ambientales como la polaridad o los iones). De manera más general, se unen covalentemente a macromoléculas y sirven como marcadores (o colorantes, o etiquetas, o reporteros) para reactivos afines o bioactivos ( anticuerpos , péptidos, ácidos nucleicos). Los fluoróforos se utilizan notablemente para teñir tejidos, células o materiales en una variedad de métodos analíticos, como la obtención de imágenes fluorescentes y la espectroscopia .

La fluoresceína , a través de su derivado isotiocianato reactivo con amina , el isotiocianato de fluoresceína (FITC), ha sido uno de los fluoróforos más populares. Desde el etiquetado de anticuerpos, las aplicaciones se han extendido a los ácidos nucleicos gracias a la carboxifluoresceína . Otros fluoróforos históricamente comunes son los derivados de la rodamina (TRITC), la cumarina y la cianina . [2] Las generaciones más nuevas de fluoróforos, muchas de las cuales son patentadas, a menudo funcionan mejor, siendo más fotoestables, más brillantes o menos sensibles al pH que los colorantes tradicionales con excitación y emisión comparables. [3] [4]

Fluorescencia

El fluoróforo absorbe energía luminosa de una longitud de onda específica y reemite luz a una longitud de onda más larga. Las longitudes de onda absorbidas , la eficiencia de transferencia de energía y el tiempo antes de la emisión dependen tanto de la estructura del fluoróforo como de su entorno químico, ya que la molécula en su estado excitado interactúa con las moléculas circundantes. Las longitudes de onda de máxima absorción (≈ excitación) y emisión (por ejemplo, Absorción/Emisión = 485 nm/517 nm) son los términos típicos utilizados para referirse a un fluoróforo determinado, pero puede ser importante considerar todo el espectro. El espectro de longitud de onda de excitación puede ser una banda muy estrecha o más amplia, o puede estar todo más allá de un nivel de corte. El espectro de emisión suele ser más nítido que el espectro de excitación, y es de una longitud de onda más larga y, en consecuencia, de menor energía. Las energías de excitación varían desde el ultravioleta hasta el espectro visible , y las energías de emisión pueden continuar desde la luz visible hasta la región del infrarrojo cercano .

Las principales características de los fluoróforos son:

  • Longitud de onda máxima de excitación y emisión (expresada en nanómetros (nm)): corresponde al pico en los espectros de excitación y emisión (normalmente un pico cada uno).
  • Coeficiente de absorción molar (en mol −1 cm −1 ): vincula la cantidad de luz absorbida, en una longitud de onda dada, con la concentración de fluoróforo en solución.
  • Rendimiento cuántico : eficiencia de la energía transferida de la luz incidente a la fluorescencia emitida (el número de fotones emitidos por fotones absorbidos).
  • Tiempo de vida (en picosegundos): duración del estado excitado de un fluoróforo antes de volver a su estado fundamental. Se refiere al tiempo que tarda una población de fluoróforos excitados en decaer a 1/ e (≈0,368) de la cantidad original.
  • Desplazamiento de Stokes : diferencia entre las longitudes de onda de máxima excitación y máxima emisión.
  • Fracción oscura : proporción de moléculas que no emiten fluorescencia. En el caso de los puntos cuánticos , la microscopía prolongada de moléculas individuales mostró que entre el 20 y el 90 % de todas las partículas nunca emiten fluorescencia. [5] Por otro lado, las nanopartículas de polímero conjugado (Pdots) casi no muestran fracción oscura en su fluorescencia. [6] Las proteínas fluorescentes pueden tener una fracción oscura debido a un plegamiento incorrecto de proteínas o a una formación defectuosa de cromóforos. [7]

Estas características determinan otras propiedades, como el fotoblanqueo o la fotorresistencia (pérdida de fluorescencia tras la excitación continua con luz). Se deben tener en cuenta otros parámetros, como la polaridad de la molécula de fluoróforo, el tamaño y la forma del fluoróforo (es decir, para el patrón de fluorescencia de polarización ) y otros factores que pueden cambiar el comportamiento de los fluoróforos.

Los fluoróforos también se pueden utilizar para apagar la fluorescencia de otros colorantes fluorescentes o para transmitir su fluorescencia a longitudes de onda aún más largas .

Tamaño (peso molecular)

La mayoría de los fluoróforos son pequeñas moléculas orgánicas de 20 a 100 átomos (200 a 1000 Dalton ; el peso molecular puede ser mayor dependiendo de las modificaciones injertadas y las moléculas conjugadas), pero también hay fluoróforos naturales mucho más grandes que son proteínas : la proteína fluorescente verde (GFP) tiene 27 kDa , y varias ficobiliproteínas (PE, APC...) tienen ≈240 kDa. En 2020, se afirmaba que el fluoróforo más pequeño conocido era el 3-hidroxiisonicotinaldehído , un compuesto de 14 átomos y solo 123 Da. [8]

Las partículas fluorescentes como los puntos cuánticos (de 2 a 10 nm de diámetro y de 100 a 100 000 átomos) también se consideran fluoróforos. [9]

El tamaño del fluoróforo podría obstaculizar estéricamente la molécula marcada y afectar la polaridad de la fluorescencia.

Familias

Fluorescencia de diferentes sustancias bajo luz ultravioleta. El verde es fluoresceína , el rojo es rodamina B , el amarillo es rodamina 6G , el azul es quinina , el violeta es una mezcla de quinina y rodamina 6g. Las soluciones tienen una concentración de aproximadamente 0,001 % en agua.

Las moléculas fluoróforas pueden utilizarse solas o servir como motivo fluorescente de un sistema funcional. En función de la complejidad molecular y los métodos sintéticos, las moléculas fluoróforas pueden clasificarse en cuatro categorías: proteínas y péptidos, compuestos orgánicos pequeños, oligómeros y polímeros sintéticos y sistemas multicomponentes. [10] [11]

Las proteínas fluorescentes GFP, YFP y RFP (verde, amarilla y roja, respectivamente) se pueden unir a otras proteínas específicas para formar una proteína de fusión , sintetizada en las células después de la transfección de un portador de plásmido adecuado .

Los fluoróforos orgánicos no proteicos pertenecen a las siguientes familias químicas principales:

Estos fluoróforos emiten fluorescencia debido a electrones deslocalizados que pueden saltar una banda y estabilizar la energía absorbida. Por ejemplo, el benceno , uno de los hidrocarburos aromáticos más simples, se excita a 254 nm y emite a 300 nm. [12] Esto diferencia a los fluoróforos de los puntos cuánticos, que son nanopartículas semiconductoras fluorescentes .

Se pueden unir a las proteínas a grupos funcionales específicos, como grupos amino ( éster activo , carboxilato , isotiocianato , hidrazina ), grupos carboxilo ( carbodiimida ), tiol ( maleimida , bromuro de acetilo ) y azida orgánica (a través de química clic o de forma no específica ( glutaraldehído )).

Además, pueden estar presentes varios grupos funcionales para alterar sus propiedades, como la solubilidad, o conferir propiedades especiales, como el ácido borónico que se une a los azúcares o múltiples grupos carboxilo para unirse a ciertos cationes. Cuando el colorante contiene un grupo donador de electrones y un grupo aceptor de electrones en extremos opuestos del sistema aromático, este colorante probablemente será sensible a la polaridad del entorno ( solvatocrómico ), por lo que se lo denomina sensible al medio ambiente. A menudo, los colorantes se utilizan dentro de las células, que son impermeables a las moléculas cargadas; como resultado de esto, los grupos carboxilo se convierten en un éster, que es eliminado por esterasas dentro de las células, por ejemplo, fura-2AM y diacetato de fluoresceína.

Las siguientes familias de tintes son grupos de marcas comerciales y no necesariamente comparten similitudes estructurales.

  • Colorante CF (Biotium)
  • Sondas DRAQ y CyTRAK (BioStatus)
  • Cuerpo ( Invitrogen )
  • EverFluor (Biotecnología Setareh)
  • Alexa Fluor (Invitrogen)
  • Bella Fluor (Biotecnología Setareh)
  • Fluoruro de DyLight (Thermo Scientific, Pierce)
  • Atto y Tracy ( Sigma Aldrich )
  • Sondas Fluo ( Interchim )
  • Tintes Abberior (Abberior)
  • Tintes DY y MegaStokes (Dyomics)
  • Colorantes sulfo cy (cyandye)
  • HiLyte Fluor (AnaSpec)
  • Tintes Seta, SeTau y Square (SETA BioMedicals)
  • Colorantes Quasar y Cal Fluor ( Biosearch Technologies )
  • Tintes SureLight ( APC , RPE PerCP , ficobilisomas ) (Columbia Biosciences)
  • APC, APCXL, RPE, BPE (Phyco-Biotech, Greensea, Prozyme, Flogen)
  • Tintes Vio (Miltenyi Biotec)
Núcleos de células endoteliales de la arteria pulmonar bovina teñidos de azul con DAPI , mitocondrias teñidas de rojo con MitoTracker Red CMXRos y F-actina teñida de verde con faloidina Alexa Fluor 488 e imagenadas en un microscopio fluorescente.

Ejemplos de fluoróforos que se encuentran frecuentemente

Colorantes reactivos y conjugados

TeñirEx (nm)En (nm)hombreNotas
Hidroxicoumarina325386331Éster succinimidílico
Aminocumarina350445330Éster succinimidílico
Metoxicumarina360410317Éster succinimidílico
Cascada azul(375);401423596Hidrazida
Azul Pacífico403455406Maleimida
Naranja del Pacífico403551
3-Hidroxiisonicotinaldehído385525123QY 0,15; sensible al pH
Lucifer amarillo425528
Fecha límite de llegada466539294NBD-X
R-ficoeritrina (PE)480;565578240 kilógramos
Conjugados PE-Cy5480;565;650670También conocido como Cychrome, R670, Tri-Color, Quantum Red
Conjugados PE-Cy7480;565;743767
Rojo 613480;565613PE-Rojo de Texas
PerCP49067535 kDaProteína de clorofila peridinina
Verdadero Rojo490.675695Conjugado PerCP-Cy5.5
FluorX494520587(Atención sanitaria de GE)
Fluoresceína495519389FITC; sensible al pH
Cuerpo-Florida503512
Tinte G100498524Adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis.
Tinte G200554575Adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis.
Tinte G300648663Adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis.
Tinte G 400736760Adecuado para el etiquetado de proteínas y la electroforesis.
Ciclo 2489506714Año fiscal 0,12
Cy3(512);550570;(615)767Año fiscal 0,15
Cy3B558572;(620)658Año fiscal 0,67
Año 3,5581594;(640)1102Año fiscal 0,15
Cy5(625);650670792Año fiscal 0,28
Año 5.56756941272Año fiscal 0,23
Cy7743767818Año fiscal 0,28
Tritc547572444Tritc
X-Rodamina570576548XRITC
Lisamina Rodamina B570590
Rojo texano589615625Cloruro de sulfonilo
Aloficocianina (APC)650660104 kilógramos
Conjugados APC-Cy7650;755767Rojo lejano

Abreviaturas:

Colorantes de ácidos nucleicos

TeñirEx (nm)En (nm)hombreNotas
Höchst 33342343483616AT-selectivo
DAPI345455AT-selectivo
Höchst 33258345478624AT-selectivo
SYTOX Azul431480~400ADN
Cromomicina A3445575CG selectivo
Mitramicina445575
YOYO-14915091271
Bromuro de etidio210;285605394en solución acuosa
Gel rojo290;5205951239Sustituto no tóxico del bromuro de etidio
Naranja de acridina503530/640ADN/ARN
SYTOX Verde504523~600ADN
TOTO-1, TO-PRO-1509533Tinción vital, TOTO: dímero de cianina
TO-PRO: Monómero de cianina
Naranja de tiazol510530
CyTRAK Naranja520615-(Bioestado) (excitación roja oscura)
Yoduro de propidio (PI)536617668.4
LDS 751543;590712;607472ADN (543ex/712em), ARN (590ex/607em)
7-AAD5466477-aminoactinomicina D, selectiva de CG
SYTOX Naranja547570~500ADN
TOTO-3, TO-PRO-3642661
DRAQ5600/647697413(Bioestado) (excitación utilizable hasta 488)
DRAQ7599/644694~700(Bioestado) (excitación utilizable hasta 488)

Colorantes de función celular

TeñirEx (nm)En (nm)hombreNotas
Indo-1361/330490/4051010Éster AM, bajo/alto contenido de calcio (Ca 2+ )
Fluo-3506526855Éster AM. pH > 6
Fluo-4491/4945161097Éster AM. pH 7,2
DCFH5055355292'7'Diclorodihidrofluoresceína, forma oxidada
DRH (Departamento de Recursos Humanos)505534346Dihidrorodamina 123, forma oxidada, la luz cataliza la oxidación.
SNARFO548/579587/635pH 6/9

Proteínas fluorescentes

TeñirEx (nm)En (nm)hombreQYESPDNotas
GFP (mutación Y66H)360442
GFP (mutación Y66F)360508
EBFP3804400,180,27monómero
EBFP238344820monómero
Azurita38344715monómero
GFPuv385508
T-Zafiro3995110,602625dímero débil
Azul claro4334750,622736dímero débil
PFCm4334750,401364monómero
mTurquesa24344740,9328monómero
Programa de Educación Continua (ECFP)4344770,153
Cibermascota4354770,511859dímero débil
GFP (mutación Y66W)436485
mKeima-Rojo4406200,243monómero (MBL)
EtiquetaCFP45848029dímero (Evrogen)
AmCyan14584890,7529Tetrámero, (Clontech)
proteína 1 transcutánea m46249254dímero
GFP (mutación S65A)471504
Cian Midoriishi4724950.925dímero (MBL)
GFP de tipo salvaje396.47550826k0,77
GFP (mutación S65C)479507
TurboGFP48250226 mil0,5337dímero, (Evrogen)
EtiquetaGFP48250534monómero (Evrogen)
GFP (mutación S65L)484510
Esmeralda4875090,68390,69dímero débil, (Invitrogen)
GFP (mutación S65T)488511
EGFP48850726k0,6034174dímero débil, (Clontech)
Azami Verde4925050,7441monómero (MBL)
ZsVerde1493505105k0,9140Tetrámero, (Clontech)
EtiquetaYFP50852447monómero (Evrogen)
Programa de Educación Juvenil51452726k0,615160dímero débil, (Clontech)
Topacio51452757monómero
Venus5155280,575315dímero débil
mCitrina5165290,765949monómero
YMascota5175300,778049dímero débil
TurboYFP52553826 mil0,5355,7dímero, (Evrogen)
ZsAmarillo15295390,6513Tetrámero, (Clontech)
Naranja Kusabira5485590,6031monómero (MBL)
mNaranja5485620,69499monómero
Aloficocianina (APC)652657,5105 kDa0,68heterodímero, reticulado [13]
mKO5485590,6031122monómero
Solicitud de presupuesto de Turbo55357426 mil0,6762dímero, (Evrogen)
tdTomate5545810,699598dímero en tándem
Solicitud de propuesta de etiqueta55558450monómero (Evrogen)
Monómero DsRed556586~28k0,13.516monómero, (Clontech)
DsRed2 ("Solicitud de propuesta")563582~110k0,5524(Clontecnología)
mFresa5745960,292615monómero
TurboFP60257460226 mil0,3526dímero, (Evrogen)
Como Rojo2576592~110k0,2113Tetrámero, (Clontech)
Solicitud de presupuesto mRFP1584607~30k0,25monómero, ( laboratorio Tsien )
J-Rojo5846100,208.813dímero
R-ficoeritrina (RPE)565 >498573250 kDa0,84heterotrímero [13]
B-ficoeritrina (BPE)545572240 kDa0,98heterotrímero [13]
Cereza5876100,221696monómero
HcRed1588618~52k0,030.6dímero, (Clontech)
Katusha58863523dímero
P3614662~10.000 kDacomplejo ficobilisoma [13]
Clorofila peridinina (PerCP)48367635 kDatrímero [13]
mKate (EtiquetaFP635)58863515monómero (Evrogen)
TurboFP63558863526 mil0,3422dímero, (Evrogen)
mCiruela59064951,4 k0,104.153
Frambuesa5986250,1513Monómero, fotoblanqueador más rápido que mPlum
mEscarlata5695940,7071277monómero [14]

Abreviaturas:

Aplicaciones

Los fluoróforos tienen particular importancia en el campo de la bioquímica y los estudios de proteínas , por ejemplo, en inmunofluorescencia , análisis de células, [15] inmunohistoquímica , [3] [16] y sensores de moléculas pequeñas . [17] [18]

Usos fuera de las ciencias de la vida

Tinte marino fluorescente

Los colorantes fluorescentes encuentran un amplio uso en la industria, recibiendo el nombre de "colores neón", como por ejemplo:

Véase también

Referencias

  1. ^ Juan Carlos Stockert, Alfonso Blázquez-Castro (2017). "Capítulo 3 Colorantes y Fluorocromos". Microscopía de fluorescencia en ciencias de la vida . Bentham Science Publishers. pp. 61–95. ISBN 978-1-68108-519-7. Recuperado el 24 de diciembre de 2017 .
  2. ^ Rietdorf J (2005). Técnicas microscópicas. Avances en ingeniería bioquímica/biotecnología. Berlín: Springer. pp. 246–9. ISBN 3-540-23698-8. Recuperado el 13 de diciembre de 2008 .
  3. ^ ab Tsien RY; Waggoner A (1995). "Fluoróforos para microscopía confocal". En Pawley JB (ed.). Manual de microscopía confocal biológica . Nueva York: Plenum Press. págs. 267–74. ISBN 0-306-44826-2. Recuperado el 13 de diciembre de 2008 .
  4. ^ Lakowicz, JR (2006). Principios de espectroscopia de fluorescencia (3.ª ed.). Springer. pág. 954. ISBN 978-0-387-31278-1.
  5. ^ Pons T, Medintz IL, Farrell D, Wang X, Grimes AF, English DS, Berti L, Mattoussi H (2011). "Los estudios de colocalización de moléculas individuales arrojan luz sobre la idea de puntos cuánticos individuales totalmente emisores versus oscuros". Small . 7 (14): 2101–2108. doi :10.1002/smll.201100802. PMID  21710484.
  6. ^ Koner AL, Krndija D, Hou Q, Sherratt DJ, Howarth M (2013). "Las nanopartículas de polímero conjugado con terminación hidroxi tienen una fracción brillante cercana a la unidad y revelan la dependencia del colesterol de los nanodominios de IGF1R". ACS Nano . 7 (2): 1137–1144. doi : 10.1021/nn3042122 . PMC 3584654 . PMID  23330847. 
  7. ^ Garcia-Parajo MF, Segers-Nolten GM, Veerman JA, Greve J, van Hulst NF (2000). "Dinámica en tiempo real impulsada por la luz de la emisión de fluorescencia en moléculas de proteína fluorescente verde individuales". PNAS . 97 (13): 7237–7242. Bibcode :2000PNAS...97.7237G. doi : 10.1073/pnas.97.13.7237 . PMC 16529 . PMID  10860989. 
  8. ^ Cozens, Tom (16 de diciembre de 2020). "Una molécula fluorescente rompe el récord de tamaño de los tintes que emiten luz verde". chemistryworld.com . Consultado el 3 de diciembre de 2021 .
  9. ^ Li Z, Zhao X, Huang C, Gong X (2019). "Avances recientes en la fabricación ecológica de concentradores solares luminiscentes utilizando puntos cuánticos no tóxicos como fluoróforos". J. Mater. Chem. C . 7 (40): 12373–12387. doi :10.1039/C9TC03520F. S2CID  203003761.
  10. ^ Liu, J.; Liu, C.; He, W. (2013), "Fluoróforos y sus aplicaciones como sondas moleculares en células vivas", Curr. Org. Chem. , 17 (6): 564–579, doi :10.2174/1385272811317060003
  11. ^ Juan Carlos Stockert, Alfonso Blázquez-Castro (2017). "Capítulo 4 Etiquetas fluorescentes". Microscopía de fluorescencia en ciencias de la vida . Bentham Science Publishers. págs. 96–134. ISBN 978-1-68108-519-7. Recuperado el 24 de diciembre de 2017 .
  12. ^ Omlc.ogi.edu
  13. ^ abcde Biociencias de Columbia
  14. ^ Bindels, Daphne S.; Haarbosch, Lindsay; van Weeren, Laura; Postma, Marten; Wiese, Katrin E.; Mastop, Marieke; Aumonier, Sylvain; San Gotardo, Guillaume; Royant, Antoine; Hink, Mark A.; Gadella, Theodorus WJ (enero de 2017). "mScarlet: una proteína fluorescente roja monomérica brillante para imágenes celulares". Métodos de la naturaleza . 14 (1): 53–56. doi :10.1038/nmeth.4074. ISSN  1548-7105. PMID  27869816. S2CID  3539874.
  15. ^ Sirbu, Dumitru; Luli, Saimir; Leslie, Jack; Oakley, Fiona; Benniston, Andrew C. (2019). "Imágenes ópticas in vivo mejoradas de la respuesta inflamatoria a la lesión hepática aguda en ratones C57BL/6 utilizando un tinte BODIPY de infrarrojo cercano altamente brillante". ChemMedChem . 14 (10): 995–999. doi :10.1002/cmdc.201900181. ISSN  1860-7187. PMID  30920173. S2CID  85544665.
  16. ^ Taki, Masayasu (2013). "Capítulo 5. Imágenes y detección de cadmio en células". En Astrid Sigel; Helmut Sigel; Roland KO Sigel (eds.). Cadmio: de la toxicología a la esencialidad . Iones metálicos en las ciencias de la vida. Vol. 11. Springer. págs. 99–115. doi :10.1007/978-94-007-5179-8_5. PMID  23430772.
  17. ^ Sirbu, Dumitru; Butcher, John B.; Waddell, Paul G.; Andras, Peter; Benniston, Andrew C. (18 de septiembre de 2017). "Tintes acoplados a estado de transferencia de carga y estado excitados localmente como sondas de activación de neuronas ópticamente sensibles" (PDF) . Química - Una revista europea . 23 (58): 14639–14649. doi :10.1002/chem.201703366. ISSN  0947-6539. PMID  28833695.
  18. ^ Jiang, Xiqian; Wang, Lingfei; Carroll, Shaina L.; Chen, Jianwei; Wang, Meng C.; Wang, Jin (20 de agosto de 2018). "Desafíos y oportunidades para las sondas fluorescentes de moléculas pequeñas en aplicaciones de biología redox". Antioxidantes y señalización redox . 29 (6): 518–540. doi :10.1089/ars.2017.7491. ISSN  1523-0864. PMC 6056262 . PMID  29320869. 
  • La base de datos de colorantes fluorescentes
  • Tabla de fluorocromos
  • El Manual de Sondas Moleculares: un recurso integral sobre la tecnología de fluorescencia y sus aplicaciones.
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