Célula ganglionar de la retina

Tipo de célula dentro del ojo
Célula ganglionar de la retina
Diagrama que muestra una sección transversal de las capas de la retina. La zona denominada "capa ganglionar" contiene células ganglionares de la retina.
Identificadores
MallaD012165
Identificación de NeuroLexnifext_17
FMA67765
Términos anatómicos de la neuroanatomía
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Una célula ganglionar de la retina ( RGC ) es un tipo de neurona ubicada cerca de la superficie interna (la capa de células ganglionares ) de la retina del ojo . Recibe información visual de los fotorreceptores a través de dos tipos de neuronas intermedias: células bipolares y células amacrinas de la retina . Las células amacrinas de la retina, en particular las células de campo estrecho, son importantes para crear subunidades funcionales dentro de la capa de células ganglionares y hacer que las células ganglionares puedan observar un pequeño punto que se mueve una pequeña distancia. [1] Las células ganglionares de la retina transmiten colectivamente información visual formadora y no formadora de imágenes desde la retina en forma de potencial de acción a varias regiones del tálamo , el hipotálamo y el mesencéfalo o mesencéfalo .

Las células ganglionares de la retina varían significativamente en términos de tamaño, conexiones y respuestas a la estimulación visual, pero todas comparten la propiedad definitoria de tener un axón largo que se extiende hasta el cerebro. Estos axones forman el nervio óptico , el quiasma óptico y el tracto óptico .

Un pequeño porcentaje de células ganglionares de la retina contribuyen poco o nada a la visión, pero son fotosensibles; sus axones forman el tracto retinohipotalámico y contribuyen a los ritmos circadianos y al reflejo pupilar a la luz , el cambio de tamaño de la pupila.

Función

En la retina humana hay entre 0,7 y 1,5 millones de células ganglionares. [2] Con alrededor de 4,6 millones de células cónicas y 92 millones de células bastón , o 96,6 millones de fotorreceptores por retina, [3] en promedio cada célula ganglionar de la retina recibe información de alrededor de 100 bastones y conos. Sin embargo, estas cifras varían mucho entre individuos y en función de la ubicación de la retina. En la fóvea (centro de la retina), una sola célula ganglionar se comunicará con tan solo cinco fotorreceptores. En la periferia extrema (borde de la retina), una sola célula ganglionar recibirá información de muchos miles de fotorreceptores. [ cita requerida ]

Las células ganglionares de la retina disparan espontáneamente potenciales de acción a una frecuencia basal mientras están en reposo. La excitación de las células ganglionares de la retina produce un aumento de la frecuencia de disparo, mientras que la inhibición produce una disminución de la frecuencia de disparo.

Imagen en falso color de una retina de rata montada en plano observada a través de un microscopio de fluorescencia con un aumento de 50x. Se inyectó un fluoróforo en el nervio óptico, lo que provocó que las células ganglionares de la retina emitieran fluorescencia.

Tipos

Existe una amplia variabilidad en los tipos de células ganglionares entre las distintas especies. En los primates, incluidos los humanos, existen generalmente tres clases de células ganglionares:

  • Ganglio W: pequeño, 40% del total, campos amplios en la retina, excitación por bastones. Detección de movimiento direccional en cualquier parte del campo.
  • Ganglio X: diámetro medio, 55% del total, campo pequeño, visión en color. Respuesta sostenida.
  • Ganglio Y: el más grande, 5 %, campo dendrítico muy amplio; responde a movimientos oculares rápidos o cambios rápidos en la intensidad de la luz. Respuesta transitoria.

Los tipos de ganglios retinianos W, X e Y surgieron de estudios en gatos. [4] [5] Estos tipos fisiológicos están estrechamente relacionados con los respectivos tipos de ganglios retinianos morfológicos , y . [5] : 416  gamma {\estilo de visualización \gamma} β {\estilo de visualización \beta} alfa {\estilo de visualización \alpha}

Según sus proyecciones y funciones, existen al menos cinco clases principales de células ganglionares de la retina:

Tipo P

Las células ganglionares de la retina de tipo P se proyectan a las capas parvocelulares del núcleo geniculado lateral . Estas células se conocen como células ganglionares de la retina enanas, en función del pequeño tamaño de sus árboles dendríticos y cuerpos celulares. Alrededor del 80% de todas las células ganglionares de la retina son células enanas en la vía parvocelular . Reciben entradas de relativamente pocos bastones y conos. Tienen una velocidad de conducción lenta y responden a los cambios de color, pero responden solo débilmente a los cambios de contraste a menos que el cambio sea grande. Tienen campos receptivos centro-entorno simples , donde el centro puede estar ENCENDIDO o APAGADO mientras que el entorno es lo opuesto.

Matriz simulada de respuestas parvocelulares +ML (verde encendido) (derecha) a un video natural (izquierda). Observe la agudeza espacial relativamente alta y las respuestas temporales sostenidas en esta vía. [7]

Tipo M

Las células ganglionares de la retina de tipo M se proyectan hacia las capas magnocelulares del núcleo geniculado lateral. Estas células se conocen como células ganglionares de la retina parasol , debido al gran tamaño de sus árboles dendríticos y cuerpos celulares. Alrededor del 10% de todas las células ganglionares de la retina son células parasol y forman parte de la vía magnocelular. Reciben señales de un número relativamente elevado de bastones y conos. Tienen una velocidad de conducción rápida y pueden responder a estímulos de bajo contraste, pero no son muy sensibles a los cambios de color. Tienen campos receptivos mucho más grandes que, no obstante, también son de centro-envolvente.

Matriz simulada de respuestas magnocelulares OFF (derecha) a un video natural (izquierda). Nótese que en esta vía hay respuestas temporales más transitorias, en comparación con el tipo P. Esta vía retiniana es en gran medida daltónica. [7]

Tipo K

Las células ganglionares de la retina de tipo BiK se proyectan hacia las capas koniocelulares del núcleo geniculado lateral. Las células ganglionares de la retina de tipo K se han identificado hace relativamente poco tiempo. Koniocelular significa "células tan pequeñas como el polvo"; su pequeño tamaño las hacía difíciles de encontrar. Alrededor del 10% de todas las células ganglionares de la retina son células biestratificadas, y estas células pasan por la vía koniocelular. Reciben entradas de cantidades intermedias de bastones y conos. Pueden estar involucradas en la visión del color. Tienen campos receptivos muy grandes que solo tienen centros (sin alrededores) y siempre están ENCENDIDOS en el cono azul y APAGADOS en los conos rojo y verde.

Matriz simulada de respuestas de +S (azul activado) koniocelulares (derecha) a un video natural (izquierda). Nótese la baja agudeza espacial, que refleja los campos receptivos muy grandes. [7]

Célula ganglionar fotosensible

Las células ganglionares fotosensibles , incluidas, entre otras, las células ganglionares gigantes de la retina, contienen su propio fotopigmento , la melanopsina , que las hace responder directamente a la luz incluso en ausencia de bastones y conos. Se proyectan, entre otras áreas, al núcleo supraquiasmático (SCN) a través del tracto retinohipotalámico para establecer y mantener los ritmos circadianos . Otras células ganglionares de la retina que se proyectan al núcleo geniculado lateral (LGN) incluyen células que hacen conexiones con el núcleo de Edinger-Westphal (EW), para el control del reflejo pupilar a la luz , y las células ganglionares gigantes de la retina .

Fisiología

La mayoría de las células ganglionares maduras pueden disparar potenciales de acción a alta frecuencia debido a su expresión de canales de potasio K v 3 . [8] [9] [10]

Patología

La degeneración de los axones de las células ganglionares de la retina (el nervio óptico ) es un sello distintivo del glaucoma . [11]

Biología del desarrollo

Crecimiento de la retina: el comienzo

Las células ganglionares de la retina (CGR) nacen entre el día embrionario 11 y el día cero posnatal en el ratón y entre la semana 5 y la semana 18 en el útero en el desarrollo humano. [12] [13] [14] En los mamíferos, las CGR se añaden típicamente al principio en el aspecto central dorsal de la copa óptica o primordio ocular. Luego, el crecimiento de las CR se extiende ventral y periféricamente desde allí en un patrón similar a una onda. [15] Este proceso depende de una serie de factores, que van desde factores de señalización como FGF3 y FGF8 hasta la inhibición adecuada de la vía de señalización Notch. Lo más importante es que el dominio bHLH (hélice-bucle-hélice básica) que contiene el factor de transcripción Atoh7 y sus efectores posteriores, como Brn3b e Isl-1, trabajan para promover la supervivencia y la diferenciación de las CGR . [12] La "onda de diferenciación" que impulsa el desarrollo de RGC a través de la retina también está regulada en particular por los factores bHLH Neurog2 y Ascl1 y la señalización FGF/Shh, que se derivan de la periferia. [12] [15] [16]

Crecimiento dentro de la capa de células ganglionares de la retina (fibras ópticas)

Las CGR progenitoras tempranas generalmente extenderán procesos que se conectan a las membranas limitantes internas y externas de la retina con la capa externa adyacente al epitelio pigmentario de la retina y la interna adyacente al futuro humor vítreo. El soma celular tirará hacia el epitelio pigmentario, experimentará una división celular terminal y diferenciación, y luego migrará hacia atrás hacia la membrana limitante interna en un proceso llamado translocación somal . La cinética de la translocación somal de las CGR y los mecanismos subyacentes se entienden mejor en el pez cebra . [17] Las CGR luego extenderán un axón en la capa de células ganglionares de la retina, que es dirigida por el contacto con la laminina . [18] La retracción del proceso apical de las CGR probablemente esté mediada por la señalización Slit-Robo . [12]

Las CGR crecerán a lo largo de los extremos gliales ubicados en la superficie interna (el lado más cercano al futuro humor vítreo). La molécula de adhesión celular neural (N-CAM) mediará esta unión a través de interacciones homofílicas entre moléculas de isoformas similares (A o B). La señalización de hendidura también desempeña un papel, ya que evita que las CGR crezcan en capas más allá de la capa de fibra óptica. [19]

Los axones de las CGR crecerán y se extenderán hacia el disco óptico , por donde salen del ojo. Una vez diferenciados, están bordeados por una región periférica inhibidora y una región central atractiva, promoviendo así la extensión del axón hacia el disco óptico. Los CSPG existen a lo largo del neuroepitelio retiniano (superficie sobre la que se encuentran las CGR) en un gradiente periférico alto-central bajo. [12] Slit también se expresa en un patrón similar, secretado por las células del cristalino. [19] Las moléculas de adhesión, como N-CAM y L1, promoverán el crecimiento centralmente y también ayudarán a fascicular (agrupar) adecuadamente los axones de las CGR. Shh se expresa en un gradiente periférico bajo y central alto, promoviendo la extensión de los axones de las CGR que se proyectan al centro a través de Patched-1, el principal receptor para la señalización mediada por Shh. [20]

Crecimiento hacia y a través del nervio óptico

Las CGR salen de la capa de células ganglionares de la retina a través del disco óptico, lo que requiere un giro de 45°. [12] Esto requiere interacciones complejas con las células gliales del disco óptico que expresarán gradientes locales de Netrina-1, un morfógeno que interactuará con el receptor delecionado en cáncer colorrectal (DCC) en los conos de crecimiento del axón de las CGR. Este morfógeno atrae inicialmente a los axones de las CGR, pero luego, a través de un cambio interno en el cono de crecimiento de las CGR, la netrina-1 se vuelve repulsiva, alejando al axón del disco óptico. [21] Esto está mediado por un mecanismo dependiente de AMPc. Además, también pueden estar involucradas las señales de CSPG y Eph-efrina.

Las células gliales del nervio óptico crecen a lo largo de los extremos de las células gliales. Estas células gliales secretan semaforina 5a y Slit, que son repulsivas, de forma envolvente, y cubren el nervio óptico, lo que garantiza su permanencia en él. El factor de transcripción Vax1 se expresa en el diencéfalo ventral y en las células gliales de la región donde se forma el quiasma, y ​​también puede secretarse para controlar su formación. [22]

Crecimiento en el quiasma óptico

Cuando las CGR se acercan al quiasma óptico, el punto en el que se encuentran los dos nervios ópticos, en el diencéfalo ventral alrededor de los días embrionarios 10-11 en el ratón, tienen que tomar la decisión de cruzar al tracto óptico contralateral o permanecer en el tracto óptico ipsilateral. En el ratón, alrededor del 5% de las CGR, principalmente las que provienen de la región de la medialuna ventrotemporal (VTc) de la retina, permanecerán ipsilaterales, mientras que el 95% restante de las CGR se cruzarán. [12] Esto está controlado en gran medida por el grado de superposición binocular entre los dos campos de visión en ambos ojos. Los ratones no tienen una superposición significativa, mientras que, en los humanos, que sí la tienen, aproximadamente el 50% de las CGR se cruzarán y el otro 50% permanecerá ipsilateral.

Construyendo el contorno repulsivo del quiasma

Una vez que las CGR alcanzan el quiasma, las células gliales que las sostienen cambiarán de una morfología intrafascicular a radial. Un grupo de células diencefálicas que expresan el antígeno de superficie celular, el antígeno embrionario específico de la etapa (SSEA)-1 y CD44 formarán una forma de V invertida. [23] Establecerán el aspecto posterior del borde del quiasma óptico. Además, la señalización Slit es importante aquí: los proteoglicanos de sulfato de heparina, proteínas en la matriz extracelular, anclarán el morfógeno Slit en puntos específicos en el borde posterior del quiasma. [24] Las CGR comenzarán a expresar Robo, el receptor para Slit, en este punto, facilitando así la repulsión.

CGR proyectadas contralaterales

Los axones de las CGR que viajan hacia el tracto óptico contralateral deben cruzarse. La Shh, expresada a lo largo de la línea media en el diencéfalo ventral, proporciona una señal repulsiva para evitar que las CGR crucen la línea media de manera ectópica. Sin embargo, se genera un agujero en este gradiente, lo que permite que las CGR se crucen.

Las moléculas que median la atracción incluyen NrCAM, que se expresa en las RGC en crecimiento y la glía de la línea media y actúa junto con Sema6D, mediada a través del receptor de plexina-A1. [12] El VEGF-A se libera desde la línea media y dirige a las RGC a tomar una ruta contralateral, mediada por el receptor de neuropilina-1 (NRP1). [25] El AMPc parece ser muy importante en la regulación de la producción de la proteína NRP1, regulando así la respuesta de los conos de crecimiento al gradiente de VEGF-A en el quiasma. [26]

CGR proyectadas ipsilateralmente

El único componente en ratones que se proyecta ipsilateralmente son las CGR de la medialuna ventrotemporal en la retina, y sólo porque expresan el factor de transcripción Zic2. Zic2 promoverá la expresión del receptor de tirosina quinasa EphB1, que, a través de señalización hacia adelante (ver revisión de Xu et al. [27] ) se unirá al ligando efrina B2 expresado por la glía de la línea media y será repelido para alejarse del quiasma. Algunas CGR VTc se proyectarán contralateralmente porque expresan el factor de transcripción Islet-2, que es un regulador negativo de la producción de Zic2. [28]

Shh también desempeña un papel clave en mantener los axones de las CGR ipsilaterales. Shh es expresado por las CGR que se proyectan contralateralmente y las células gliales de la línea media. Boc, o Brother of CDO (relacionado con CAM/regulado a la baja por oncogenes), un correceptor de Shh que influye en la señalización de Shh a través de Ptch1, [29] parece mediar esta repulsión, ya que solo se encuentra en los conos de crecimiento que provienen de las CGR que se proyectan ipsilateralmente. [20]

Otros factores que influyen en el crecimiento de las CGR ipsilaterales incluyen la familia Tenurina, que son proteínas de adhesión transmembrana que utilizan interacciones homofílicas para controlar la guía, y Nogo, que se expresa en la glía radial de la línea media. [30] [31] El receptor Nogo solo se expresa en las CGR VTc. [12]

Finalmente, otros factores de transcripción parecen desempeñar un papel importante en la alteración. Por ejemplo, Foxg1, también llamado factor cerebral 1, y Foxd1, también llamado factor cerebral 2, son factores de transcripción de hélice alada que se expresan en las copas ópticas nasales y temporales y las vesículas ópticas comienzan a evaginarse del tubo neural. Estos factores también se expresan en el diencéfalo ventral, con Foxd1 expresado cerca del quiasma, mientras que Foxg1 se expresa más rostralmente. Parecen desempeñar un papel en la definición de la proyección ipsilateral al alterar la expresión de la producción del receptor Zic2 y EphB1. [12] [32]

Crecimiento en el tracto óptico

Una vez fuera del quiasma óptico, las CGR se extenderán dorsocaudalmente a lo largo de la superficie diencefálica ventral formando el tracto óptico, que las guiará al colículo superior y al núcleo geniculado lateral en los mamíferos, o al tectum en los vertebrados inferiores. [12] Sema3d parece promover el crecimiento, al menos en el tracto óptico proximal, y los reordenamientos citoesqueléticos a nivel del cono de crecimiento parecen ser significativos. [33]

Mielinización

En la mayoría de los mamíferos, los axones de las células ganglionares de la retina no están mielinizados en el lugar donde pasan a través de la retina. Sin embargo, las partes de los axones que están más allá de la retina sí lo están. Este patrón de mielinización se explica funcionalmente por la opacidad relativamente alta de la mielina: los axones mielinizados que pasan sobre la retina absorberían parte de la luz antes de que llegue a la capa de fotorreceptores, lo que reduciría la calidad de la visión. Existen enfermedades oculares humanas en las que esto, de hecho, sucede. En algunos vertebrados, como el pollo, los axones de las células ganglionares están mielinizados dentro de la retina. [34]

Véase también

Referencias

  1. ^ Masland RH (enero de 2012). "Las tareas de las células amacrinas". Neurociencia visual . 29 (1): 3–9. doi :10.1017/s0952523811000344. PMC  3652807 . PMID  22416289.
  2. ^ Watson AB (junio de 2014). "Una fórmula para la densidad del campo receptivo de las células ganglionares de la retina humana en función de la ubicación del campo visual" (PDF) . Journal of Vision . 14 (7): 15. doi : 10.1167/14.7.15 . PMID  24982468.
  3. ^ Curcio CA, Sloan KR, Kalina RE, Hendrickson AE (febrero de 1990). "Topografía de fotorreceptores humanos" (PDF) . La Revista de Neurología Comparada . 292 (4): 497–523. doi :10.1002/cne.902920402. PMID  2324310. S2CID  24649779.
  4. ^ Christina Enroth-Cugell ; JG Robson (1966). "La sensibilidad al contraste de las células ganglionares de la retina del gato". Revista de fisiología . 187 (3): 517–552. doi :10.1113/jphysiol.1966.sp008107. PMC 1395960 . PMID  16783910. 
  5. ^ ab Boycott, Brian Blundell; Wässle, H. (1974). "Los tipos morfológicos de células ganglionares de la retina del gato doméstico". The Journal of Physiology . 240 (2): 397–419. doi :10.1113/jphysiol.1974.sp010616. PMC 1331022 . PMID  4422168. 
  6. ^ Principios de la ciencia neuronal 4.ª ed. Kandel et al.
  7. ^ abc Schottdorf M, Lee BB (junio de 2021). "Una descripción cuantitativa de las respuestas de las células ganglionares de macacos a escenas naturales: la interacción del tiempo y el espacio". The Journal of Physiology . 599 (12): 3169–3193. doi :10.1113/JP281200. PMC 8998785 . PMID  33913164. S2CID  233448275. 
  8. ^ "Conductancias iónicas que subyacen a la excitabilidad en las células ganglionares de la retina que se activan tónicamente en ratas adultas".
  9. ^ Henne J, Pöttering S, Jeserich G (diciembre de 2000). "Canales de potasio dependientes de voltaje en células ganglionares de la retina de la trucha: un enfoque combinado biofísico, farmacológico y de RT-PCR de una sola célula". Journal of Neuroscience Research . 62 (5): 629–37. doi :10.1002/1097-4547(20001201)62:5<629::AID-JNR2>3.0.CO;2-X. PMID  11104501. S2CID  44513007.
  10. ^ Henne J, Jeserich G (enero de 2004). "La maduración de la actividad de picos en las células ganglionares de la retina de la trucha coincide con la regulación positiva de los canales de potasio relacionados con Kv3.1 y BK". Journal of Neuroscience Research . 75 (1): 44–54. doi :10.1002/jnr.10830. PMID  14689447. S2CID  38851244.
  11. ^ Jadeja RN, Thounaojam MC, Martin PM (2020). "Implicaciones del metabolismo de NAD+ en el envejecimiento de la retina y la degeneración retiniana". Medicina oxidativa y longevidad celular . 2020 : 2692794. doi : 10.1155/2020/2692794 . PMC 7238357. PMID  32454935 . 
  12. ^ abcdefghijk Erskine L, Herrera E (1 de enero de 2014). "Conectando la retina al cerebro". ASN Neuro . 6 (6): 175909141456210. doi :10.1177/1759091414562107. PMC 4720220 . PMID  25504540. 
  13. ^ Petros TJ, Rebsam A, Mason CA (1 de enero de 2008). "Crecimiento del axón retiniano en el quiasma óptico: cruzar o no cruzar". Revisión anual de neurociencia . 31 : 295–315. doi :10.1146/annurev.neuro.31.060407.125609. PMID  18558857.
  14. ^ Pacal M, Bremner R (mayo de 2014). "Inducción del programa de diferenciación de células ganglionares en progenitores de la retina humana antes de la salida del ciclo celular". Dinámica del desarrollo . 243 (5): 712–29. doi : 10.1002/dvdy.24103 . PMID  24339342. S2CID  4133348.
  15. ^ ab Hufnagel RB, Le TT, Riesenberg AL, Brown NL (abril de 2010). "Neurog2 controla la vanguardia de la neurogénesis en la retina de los mamíferos". Biología del desarrollo . 340 (2): 490–503. doi :10.1016/j.ydbio.2010.02.002. PMC 2854206 . PMID  20144606. 
  16. ^ Lo Giudice Q, Leleu M, La Manno G, Fabre PJ (septiembre de 2019). "Lógica transcripcional unicelular de la especificación del destino celular y la guía axonal en neuronas retinianas de nacimiento temprano". Desarrollo . 146 (17): dev178103. doi : 10.1242/dev.178103 . PMID  31399471.
  17. ^ Icha J, Kunath C, Rocha-Martins M, Norden C (octubre de 2016). "Los modos independientes de translocación de células ganglionares garantizan la laminación correcta de la retina del pez cebra". The Journal of Cell Biology . 215 (2): 259–275. doi :10.1083/jcb.201604095. PMC 5084647 . PMID  27810916. 
  18. ^ Randlett O, Poggi L, Zolessi FR, Harris WA (abril de 2011). "La emergencia orientada de los axones desde las células ganglionares de la retina está dirigida por el contacto con la laminina in vivo". Neuron . 70 (2): 266–80. doi :10.1016/j.neuron.2011.03.013. PMC 3087191 . PMID  21521613. 
  19. ^ ab Thompson H, Andrews W, Parnavelas JG, Erskine L (noviembre de 2009). "Robo2 es necesario para la guía axonal intrarretiniana mediada por hendidura". Biología del desarrollo . 335 (2): 418–26. doi :10.1016/j.ydbio.2009.09.034. PMC 2814049 . PMID  19782674. 
  20. ^ ab Sánchez-Camacho C, Bovolenta P (noviembre de 2008). "La señalización autónoma y no autónoma de Shh media el crecimiento y la guía in vivo de los axones de las células ganglionares de la retina del ratón". Desarrollo . 135 (21): 3531–41. doi :10.1242/dev.023663. PMID  18832395.
  21. ^ Höpker VH, Shewan D, Tessier-Lavigne M, Poo M, Holt C (septiembre de 1999). "La atracción del cono de crecimiento hacia la netrina-1 se convierte en repulsión por la laminina-1". Nature . 401 (6748): 69–73. Bibcode :1999Natur.401...69H. doi :10.1038/43441. PMID  10485706. S2CID  205033254.
  22. ^ Kim N, Min KW, Kang KH, Lee EJ, Kim HT, Moon K, et al. (septiembre de 2014). "Regulación del crecimiento del axón de la retina por la proteína homeodominio Vax1 secretada". eLife . 3 : e02671. doi : 10.7554/eLife.02671 . PMC 4178304 . PMID  25201875. 
  23. ^ Sretavan DW, Feng L, Puré E, Reichardt LF (mayo de 1994). "Las neuronas embrionarias del quiasma óptico en desarrollo expresan L1 y CD44, moléculas de la superficie celular con efectos opuestos en el crecimiento del axón retiniano". Neuron . 12 (5): 957–75. doi :10.1016/0896-6273(94)90307-7. PMC 2711898 . PMID  7514428. 
  24. ^ Wright KM, Lyon KA, Leung H, Leahy DJ, Ma L, Ginty DD (diciembre de 2012). "El distroglicano organiza la localización de las señales de guía axonal y la búsqueda de rutas axónicas". Neuron . 76 (5): 931–44. doi :10.1016/j.neuron.2012.10.009. PMC 3526105 . PMID  23217742. 
  25. ^ Erskine L, Reijntjes S, Pratt T, Denti L, Schwarz Q, Vieira JM, et al. (junio de 2011). "La señalización del VEGF a través de la neuropilina 1 guía el cruce axonal comisural en el quiasma óptico". Neuron . 70 (5): 951–65. doi :10.1016/j.neuron.2011.02.052. PMC 3114076 . PMID  21658587. 
  26. ^ Dell AL, Fried-Cassorla E, Xu H, Raper JA (julio de 2013). "La expresión de neuropilina1 inducida por AMPc promueve el cruce de axones retinianos en el quiasma óptico del pez cebra". The Journal of Neuroscience . 33 (27): 11076–88. doi :10.1523/JNEUROSCI.0197-13.2013. PMC 3719991 . PMID  23825413. 
  27. ^ Xu NJ, Henkemeyer M (febrero de 2012). "Señalización inversa de efrina en la guía axonal y la sinaptogénesis". Seminarios en biología celular y del desarrollo . 23 (1): 58–64. doi :10.1016/j.semcdb.2011.10.024. PMC 3288821 . PMID  22044884. 
  28. ^ Pak W, Hindges R, Lim YS, Pfaff SL, O'Leary DD (noviembre de 2004). "Magnitud de la visión binocular controlada por la represión de un programa genético que especifica la lateralidad de la búsqueda de rutas axónicas en la retina por parte de los islotes 2". Cell . 119 (4): 567–78. doi : 10.1016/j.cell.2004.10.026 . PMID  15537545. S2CID  16663526.
  29. ^ Allen BL, Song JY, Izzi L, Althaus IW, Kang JS, Charron F, et al. (junio de 2011). "Roles superpuestos y requerimiento colectivo de los correceptores GAS1, CDO y BOC en la función de la vía SHH". Developmental Cell . 20 (6): 775–87. doi :10.1016/j.devcel.2011.04.018. PMC 3121104 . PMID  21664576. 
  30. ^ Wang J, Chan CK, Taylor JS, Chan SO (junio de 2008). "Localización de Nogo y su receptor en la vía óptica de embriones de ratón". Journal of Neuroscience Research . 86 (8): 1721–33. doi :10.1002/jnr.21626. PMID  18214994. S2CID  25123173.
  31. ^ Kenzelmann D, Chiquet-Ehrismann R, Leachman NT, Tucker RP (marzo de 2008). "La teneurina-1 se expresa en regiones interconectadas del cerebro en desarrollo y se procesa in vivo". BMC Developmental Biology . 8 : 30. doi : 10.1186/1471-213X-8-30 . PMC 2289808 . PMID  18366734. 
  32. ^ Herrera E, Marcus R, Li S, Williams SE, Erskine L, Lai E, Mason C (noviembre de 2004). "Foxd1 es necesaria para la formación adecuada del quiasma óptico". Desarrollo . 131 (22): 5727–39. doi : 10.1242/dev.01431 . PMID  15509772.
  33. ^ Sakai JA, Halloran MC (marzo de 2006). "La semaforina 3D guía la lateralidad de las proyecciones de las células ganglionares de la retina en el pez cebra". Desarrollo . 133 (6): 1035–44. doi :10.1242/dev.02272. PMID  16467361.
  34. ^ Villegas GM (julio de 1960). "Estudio de la retina de vertebrados mediante microscopía electrónica". The Journal of General Physiology . 43(6)Suppl (6): 15–43. doi :10.1085/jgp.43.6.15. PMC 2195075 . PMID  13842313. 
  • Diagrama en mit.edu
  • Descripción general y diagramas en webexhibits.org
  • Página wiki de Neuronbank sobre las RGC
  • Búsqueda NIF: células ganglionares de la retina a través del marco de información sobre neurociencia
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